Caractérisation biochimique et applications potentielles des glucosidases et de la a-galactosidase du suc digestif de la larve de rhynchophorus palmarum (curculionidae)

• RESUME
  
• INTRODUCTION
  
• Chapitre 1
  
  • I-Généralités sur le charançon
    
  • 3- Dommages causés
    
  • II-Glycosidases
    
  • 1-1-1-Inversion de configuration anomérique
    
  • 1-1-2-Rétention de configuration anomérique
    
  • 1-1-3-Quelques cas particuliers
    
  • 2-Réactions de synthèse
    
  • 3-1-1-Amylases
    
  • 3-1-2-alpha-Glucosidases
    
  • 3-2-Enzymes cellulolytiques
    
  • 3-2-2-beta-Glucosidases
    
  • 3-3-Enzymes hémicellulolytiques
    
  • 3-3-1-Xylanases, laminarinases et lichenases
    
  • 3-3-2-beta-Galactosidases
    
  • 3-3-3-beta-Xylosidases
    
  • 3-4-beta-Fructosidases
    
  • 4-1-1-Applications médicales
    
  • 4-1-2-Applications pharmaceutiques
    
  • 4-1-3-Applications nutritionnelles
    
  • 4-1-4-Applications en industrie agroalimentaire
    
  • 4-2-Enzymes amylolytiques
    
  • 4-2-2-Amélioration de la solubilité de l'amidon
    
  • 4-3-Enzymes cellulolytiques et hémicellulolytiques
    
• Chapitre 2
  
  • I- Matériel
    
  • 2-Origine du matériel biologique
    
  • II- Méthodes
    
  • 2-1-1- Préparation de la solution de DNS
    
  • 2-1-2- Technique de dosage
    
  • 2-2- Dosage de l'activité oligosaccharidasique
    
  • 2-2-1- Préparation du réactif glucose oxydase-péroxydase
    
  • 2-2-2- Technique de dosage
    
  • 2-3- Dosage de l'activité pNP-glycosidasique
    
  • 2-4- Dosage des protéines
    
  • 2-4-1-1- Réactif utilisés
    
  • 2-4-1-2- Technique de dosage
    
  • 2-5-2- Fractionnement au sulfate d'ammonium
    
  • 2-6-Détermination des propriétés moléculaires
    
  • 2-6-2- Détermination des masses moléculaires par électrophorèse
    
  • 2-7- Influence du pH sur les activités glycosidasiques
    
  • 2-7-2-Détermination de la stabilité au pH
    
  • 2-7-3-Influence de la force ionique
    
  • 2-8-Influence de la température sur les activités glycosidasiques
    
  • 2-8-2-Inactivation thermique
    
  • 2-8-3-Dénaturation thermique
    
  • 2-9-Détermination de quelques paramètres cinétiques
    
  • 2-10-Actions des agents chimiques sur l'activité hydrolytique
    
  • 2-11-Réactions de transglycosylation
    
  • 2-11-2-Analyse chromatographe des produits de transglycosylation
    
  • 2-11-3-Calcul du pourcentage de transglycosylation
    
  • X-O-H
    
• Chapitre 3
  
  • 1-Résultats
    
  • 1-1-1-Activités exo-glycosidasiques
    
  • 1-1-2-Activités endo-glycosidasiques
    
  • 1-2-2-Activités â-exo-glycosidasiques
    
  • 1-2-3-Activités endo-glycosidasiques
    
  • 2-Discussion
    
• Conclusion
  
  • 1-Résultats
    
  • 1-1-2- Fractionnement au sulfate d'ammonium
    
  • 1-3-Masses moléculaires de l'á-glucosidase
    
  • 1-4-Influence du pH sur l'activité de l'á-glucosidase
    
  • 1-4-2-Stabilité au pH
    
  • 1-4-3-Influence de la force ionique du tampon
    
  • 1-5-Influence de la température sur l'á-glucosidase
    
  • 1-5-2- Inactivation thermique
    
  • 1-5-3-Dénaturation thermique
    
  • 1-5-4-Conservation au froid
    
  • 1-6-Spécificité de substrat
    
  • 1-6-2-Activité sur les oligosaccharides et polysaccharides
    
  • 1-7-Paramètres cinétiques
    
  • 1-8-Action des agents chimiques
    
  • 1-9-Réactions de transglucosylation catalysées par l'á-glucosidase
    
  • 1-9-2-Influence du temps d'incubation
    
• Conclusion
  
  • 1-Résultats
    
  • 1-1-2-Fractionnement au sulfate d'ammonium
    
  • 1-5- Influence de la température sur la â-glucosidase
    
  • 1-5-2-Inactivation thermique
    
  • 1-5-3-Dénaturation thermique
    
  • 1-5-4-Conservation au froid
    
  • 1-6-Spécificité du substrat
    
  • 1-6-2-Activité sur les oligosaccharides et polysaccharides
    
  • 1-8-Action des agents chimiques
    
  • 1-9-3-Influence de la concentration de l'accepteur
    
  • 1-9-4-Influence de la concentration du donneur
    
  • 2-Discussion
    
• Conclusion