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Caractérisation biochimique et applications potentielles des glucosidases et de la a-galactosidase du suc digestif de la larve de rhynchophorus palmarum (curculionidae)

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par Assoi Yapi Désiré Patrice YAPI
Université ABOBO-ADJAMà‰ Abidjan - Doctorat 2008
  

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INTRODUCTION

Les glycosidases sont des biocatalyseurs de réactions biochimiques au sein des organismes vivants. Elles sont utilisées en biotechnologie pour catalyser les réactions de dépolymérisation des macromolécules et de synthèse à cause de leur spécificité et de leur efficacité (Potus et Drapon, 1997). Les glycosidases thermophiles et/ou thermostables sont devenues des enzymes pouvant donner une nouvelle dimension à la biocatalyse. Ainsi, leur utilisation a permis de réduire le risque de contamination en industrie laitière, notamment lors de la dégradation du lactose, et en alimentation animale au cours de l'hydrolyse des fibres (Bauer et al., 1996). En effet, une catalyse à haute température permet de détruire les microorganismes présents dans ces aliments. En industrie papetière, les xylanases thermophiles de Thermotoga sont utilisées pour hydrolyser le xylane afin de permettre la libération du tanin et de la lignine responsables de la coloration du papier. L'intervention de ces enzymes va donc permettre d'éviter l'emploi de l'acide chlorhydrique dans le blanchiment du papier et par conséquent d'éviter la pollution de l'environnement (Saul et al., 1995 ; Chen et al., 1997). Les enzymes thermophiles sont utilisées pour réduire la viscosité des polymères naturels. L'hémicellulase de T. neapolitina est capable de diminuer la viscosité d'une solution de galactomanane. Elles sont aussi utilisées dans la clarification des jus de fruits (Bauer et al., 1996). Ces glycosidases sont donc très importantes en biotechnologie. Mais, la plupart d'entre elles, distribuées dans le commerce, ne sont pas très stables et possèdent de larges spécificités.

La réaction de transglycosylation est une réaction de synthèse au cours de laquelle un ou plusieurs monomère(s) d'un substrat (donneur) est (sont) transféré (s) sur une molécule nucléophile (acceptrice) pour synthétiser un néoglycosyle conjugué (néoglycoconjugué). Elle peut se faire par divers procédés. Il y a :

-les procédés chimiques qui exigent des dispositions rigoureuses de protection et de déprotection (Kohki et al., 1995) ;

-la méthode chimio-enzymatique qui parait être le meilleur procédé car elle permet l'élimination des inconvénients dûs aux procédés chimiques et d'augmenter la quantité des substances néoformées (néoglycoconjugués);

-enfin, l'approche enzymatique qui est de plus en plus valorisée (Toone et al., 1989 ; Cote et Tao, 1990 ; Ishikawa et al., 1993) car elle permet de remédier à tous les problèmes

causés par les méthodes chimiques. Elle a consisté d'abord en l'utilisation de glycosyltranférases qui catalysent les transferts régiospécifiques et stéréospécifiques d'un monosaccharide à partir d'un substrat donneur (nucléotide glycosyle) vers un substrat accepteur. Contrairement à certaines enzymes, l'action des transférases est moins dépendante des conditions de la réaction. La spécificité et la sélectivité pour le substrat accepteur et les hauts rendements sont aussi des avantages pour ces catalyseurs. De telles applications nécessitent l'utilisation de substrats abondants et peu coûteux tels que le saccharose et l'amidon. Cependant, les glycosyltransférases qui peuvent utiliser les sucres simples comme donneurs sont limitées et il existe seulement quelques glycosyltransférases commerciales actuellement disponibles (Playne et Crittenden, 1996). Pour éviter ces problèmes, les glycosidases sont souvent préférées aux glycosyltransférases car, en plus de leur activité hydrolytique réversible, elles catalysent des réactions de transfert de glycosyles à des accepteurs autre que l'eau. Les avantages techniques de ces enzymes sont multiples. Elles savent comme les autres enzymes reconnaître les formes énantiomériques de molécules complexes et permettent de mettre au point de nouvelles voies de synthèse chirale industriellement compétitives (Cote et Tao, 1990 ; Ishikawa et al., 1993). Leur régiosélectivité permet également de supprimer de nombreuses étapes de protection/déprotection requises par les procédés chimiques. Le gain de productivité et de qualité est considérable, de même que la réduction des quantités de produits secondaires et de déchets, souvent toxiques, qu'il faut finalement éliminer à grands frais. Grâce à leur chémo-, régio- et énantio-spécificité, les enzymes donnent la possibilité d'améliorer à la fois la productivité, le bilan énergétique environnemental (Salvatore et al., 2001). C'est pourquoi, ces dernières années, la biocatalyse s'est vue totalement modernisée par des techniques sophistiquées de « criblage » et d'évolution dirigée des protéines. Celles-ci permettent de modifier les enzymes naturelles, dont les ressources sont extrêmement diverses, de manière à les adapter très précisément aux procédés industriels. En chimie industrielle, une croissance accélérée de la biocatalyse est observée, tout particulièrement dans des domaines comme la synthèse de produits pour la pharmacie (Ajisaka et al., 1987) et pour la cosmétique (Baldo et Roger, 2002). Aussi, ces enzymes sont-elles largement utilisées pour les préparations d'une grande variété de transglycosides. Dans la lutte contre le diabète, la recherche d'inhibiteurs de l'á-glucosidase représente une nouvelle approche dans la thérapeutique de cette maladie. Ainsi, en inhibant de façon compétitive et réversible les á-glucosidases intestinales, l'acarbose synthétisé réduit l'absorption digestive des carbohydrates (Hilmar, 1995). L'acarbose a donc la possibilité de ralentir ou de prévenir la survenue des complications

diabétiques. Ajisaka et al. (1987) ont synthétisé à partir du D-fructose à l'aide de la â-Dgalactosidase de la bactérie Escherichia coli, l'allolactose et le lactulose. Le lactulose est un disaccharide utilisé dans le traitement d'encéphalopathies, de la constipation et des salmonelloses. La galatosylation du D-xylose par une â-D-galactosidase donne un mélange de disaccharides â(1-4), â(1-3), â(1-2)-galactosyl-xylose (Aragon et al., 1996). Ces produits peuvent être utilisés pour l'évaluation de l'activité de la lactase intestinale in vitro, ce qui donne lieu à une nouvelle méthode de diagnostic de déficience en lactase. De plus, il est important de noter que ce procédé enzymatique est moins cher et moins risqué qu'une synthèse chimique de galacto-oligosaccharides impliquant sept étapes réactionnelles (RiveraSagredo et al., 1992). Malgré ces avantages, les rendements obtenus restent toujours faibles en milieu aqueux puisque les réactions catalysées par les glycosidases se déroulent toujours dans le sens de l'hydrolyse. Pour améliorer l'activité de transglycosylation des glycosidases, des dispositifs expérimentaux peuvent être envisagés comme par exemple, l'utilisation des systèmes réactionnels constitués de milieux aqueux-organiques (Finch et Yoon, 1997 ; Becker et Khul, 1999) comportant des concentrations élevées de l'accepteur de glycosyles autre que l'eau (Vulfson et al., 1990). L'utilisation des solvants organiques non aqueux n'ayant aucun effet de dénaturation sur l'enzyme permet d'améliorer le rendement de la transglycosylation. Par ailleurs, les rendements dépendent aussi de la nature et de l'origine de l'enzyme utilisée (Leparoux et al., 1994 ; Yoon et Ajisaka, 1996).

L'objectif général de ce travail a été de rechercher une nouvelle source originale de glycosidases avec des activités de transglycosylation élevées, une spécificité très stricte du résidu glycosyle douée d'une bonne stabilité. La source enzymatique retenue pour ce travail est la larve de Rhynchophorus palmarum. En effet, à cause de son équipement enzymatique, la larve de cet insecte est capable d'infester et de détruire rapidement le palmier Elaeis guineensis (Weissling et al., 1994). Les objectifs spécifiques ont consisté à faire l'inventaire des activités glycosidasiques, à déterminer les conditions optimales d'hydrolyse, à purifier à homogénéité électrophorétique les enzymes responsables de fortes activités hydrolytiques, à caractériser et à évaluer les potentialités transglycosidasiques de ces glycosidases.

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