à‰tude de l'efficacité biologique du metarhizium acridum (driver et milner) j.f. bischoff, rehner et humber sur les populations de bactrocera dorsalis (hendel) et de ceratitis capitata (wiedemann) au laboratoire.

• Dédicaces
  
• Remerciements
  
• Liste des Figures
  
• Liste des cartes
  
• Liste des photos
  
• Sigles et abréviations
  
• Table des matières
  
• Résumé
  
• Abstract
  
• Introduction
  
  • a. Objectif Général
    
  • b. Objectifs spécifiques
    
  • 1.1. La mangue en Afrique de l'Ouest
    
  • 1.2. Généralités sur les mouches des fruits en Afrique
    
  • 1.3. Description des espèces à l'étude
    
    • 1.3.1- Ceratitis (Ceratitis) capitata (Wiedemann, 1824)
      
      • 1.3.1.1 Position systématique
        
      • 1.3.1.2 Historique
        
      • 1.3.1.3 Description morphologique
        
      • 1.3.1.4. Cycle biologique de Ceratitis capitata
        
      • 1.3.1.5. Distribution géographique
        
      • 1.3.1.6 Plantes hôtes
        
      • 1.3.1.7. Importance économique
        
    • 1.3.2. Bactrocera dorsalis (Hendel, 1912) ex invadens
      
      • 1.3.2.1 Position systématique
        
      • 1.3.2.2 Historique
        
      • 1.3.2.4. Distribution géographique
        
      • 1.3.2.5. Biologie et écologie
        
      • 1.3.2.6. Plantes hôtes
        
      • 1.3.2.7 Importance économique
        
  • 1.4. LA LUTTE
    
    • 1.4.1. Les méthodes de lutte préventive
      
      • 1.4.1.1. La prophylaxie
        
      • 1.4.1.2. L'assainissement du verger
        
      • 1.4.1.3. L'ensachage des fruits
        
      • 1.4.1.4. La récolte précoce
        
      • 1.4.1.5. Les plantes pièges et attractifs alimentaires
        
    • 1.4.3 Technique d'annihilation des mâles (MAT)
      
    • 1.4.4. Les stations d'appâts : traitement par tâche
      
    • 1.4.5. La lutte biologique
      
      • 1.4.5.1 Utilisation des parasitoïdes
        
      • 1.4.5.2. Les prédateurs
        
      • 1.4.5.3. Les agents pathogènes
        
      • 1.4.5.4. La Technique de l'Insecte Stérile (TIS)
        
    • 1.4.6. Traitements post-récolte
      
      • 1.4.6.1. Effet des traitements à la chaleur
        
      • 1.4.6.2. Traitement aux micro-ondes
        
      • 1.4.6.3. Traitement par irradiation
        
    • 1.4.7. La lutte intégrée
      
  • 1.5. Metarhizium acridum
    
    • 1.5.1. Modes d'infection du Metarhizium acridum
      
    • 1.5.2. Fixation, germination et pénétration du champignon sur l'hôte
      
      • 1.5.2.1. Fixation : interactions hydrophobes
        
      • 1.5.2.2. Germination et pénétration fongique
        
    • 1.5.3. Les réponses immunitaires de l'hôte
      
      • 1.5.3.1. La réponse humorale
        
      • 1.5.3.2. La réponse immunitaire cellulaire
        
    • 1.5.4. La sporulation
      
• Chapitre II : Matériels et méthodes
  
  • 2.1. Conditions expérimentales
    
  • 2.2. Matériel
    
    • 2.2.1. Matériel de préparation, d'inoculation, de comptage des conidies
      
    • 2.2.1. Matériel d'élevage
      
    • 2.2.3. Matériel d'observation
      
    • 2.3.1. Metarhizium acridum
      
    • 2.3.2. La mouche
      
      • 2.3.2.1. Ceratitis capitata (Wiedemann)
        
      • 2.3.2.2. Bactrocera dorsalis (Hendel)
        
  • 2.3. La méthodologie
    
    • 2.3.1. Test de viabilité des spores du Metarhizium acridum
      
      • 2.3.1.1. Préparation du milieu de culture
        
      • 2.3.1.2. Préparation de l'inoculant fongique
        
      • 2.3.1.4. Test de germination
        
    • 2.3.2. Test de quantification du nombre de spores collectée par mouche
      
    • 2.3.3. Tests préliminaires de la pathogénicité des spores du Metarhizium acridum (Maximum challenge tests)
      
      • 2.3.3.1. Effet du Metarhizium acridum sur les adultes de Ceratitis capitata
        
      • 2.3.3.2. Effet du Metarhizium acridum sur les adultes de Bactrocera dorsalis
        
      • 2.3.3.3.Conception expérimentale
        
      • 2.3.3.4. Procédure expérimentale
        
      • 2.3.5.1. Transmission horizontale chez Bactrocera dorsalis (Hendel)
        
      • 2.3.5.2. Transmission horizontale chez Ceratitis capitata (Hendel)
        
    • 2.3.6. Effet du Metarhizium acridum sur les larves de Ceratitis capitata et de Bactrocera dorsalis
      
      • 2.3.6.1. Ceratitis capitata
        
      • 2.3.6.2. Bactrocera dorsalis
        
    • 2.3.7. Analyse des données
      
• Chapitre III : Résultats
  
  • 3.1. Test de viabilité des spores du Metarhizium acridum
    
  • 3.2. Test de quantification du nombre conidies collectées par mouche
    
  • 3.3. Maximum challenge test de l'effet du Green Muscle sur Ceratitis capitata (Wiedemann)
    
  • 3.4. Transmission horizontale
    
    • 3.4.1. Transfert des conidies des mâles vers les femelles des mouches adultes de Bactrocera dorsalis et de Ceratitis capitata
      
  • 4.2. Transfert des conidies des femelles vers les mâles
    
  • 4.3. Test de sporulation
    
• Chapitre IV. Discussion
  
• Conclusion générale
  
• Bibliographie