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Contribution à l'étude du système lipolytique d'un animal primitif marin: le crabe vert

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par Heykel Trabelsi
Ecole nationale d'ingénieurs de Sfax Tunisie - Diplome national d'ingénieur en biologie 2006
  

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2- Cinétique enzymatique de la lipolyse

Contrairement à la plupart des enzymes qui agissent en phase aqueuse, les lipases agissent en milieu hétérogène, à l'interface lipide/eau, où elles s'y adsorbent. Il en résulte que les propriétés biochimiques de ces enzymes dépendent autant de la "qualité" de cette interface que des paramètres plus classiques tels que le pH ou la force ionique.

Les activités catalytiques des lipases sont étroitement dépendantes de la pression de surface en présence d'agents tensioactifs tels que les sels biliaires et certaines protéines alimentaires. Cette modulation peut s'exercer soit sur l'étape d'adsorption de l'enzyme à l'interface soit sur l'étape de catalyse interfaciale (figure 2).

L'enzymologie conventionnelle, basée sur le modèle de Michaelis et Menten, ne peut pas être directement appliquée dans le cas des réactions qui se déroulent en milieu hétérogène. C'est pourquoi, après avoir examiné le mode d'action de plusieurs lipases, une enzymologie interfaciale a été développée par Verger et de Haas (Verger & de Haas, 1973).

E* E*S P

E*

Kd Kp

E

Emulsion d'huile

Interface huile/eau

Figure 2 : Modèle cinétique interfaciale. La réaction enzymatique est décomposée en deux étapes (Verger & de Haas, 1973) :

1- La première est l'adsorption de l'enzyme (E) à l'interface huile-eau (E*). Cette réaction partielle est régie par deux constantes de vitesse Kp et Kd, représentant respectivement la pénétration de l'enzyme à l'interface et la désorption de l'enzyme.

2- La deuxième résulte de la formation d'un complexe enzyme-substrat (E*S), ayant la dimension d'une concentration surfacique (mole/m2). Le modèle de Michaelis-Menten est alors établi dans un plan.

Le critère de l'activation interfaciale n'est pas relié obligatoirement à la présence du volet. Il n'est ni nécessaire ni suffisant pour définir une estérase comme une lipase (Ferrato et al., 1997). Actuellement, il est admis que le critère expérimental le plus sûr pour discriminer une lipase d'une estérase est la capacité d'hydrolyser les triacylglycérols à chaînes longues.

Sayari et al., (2001) ont montré que la lipase de Staphylococcus aureus NCTC 8530 (SAL1) est une vraie lipase malgré qu'elle n'hydrolyse pas une émulsion d'huile d'olive. En effet cet enzyme possède un pouvoir de pénétration lui permettant de s'adsorber et de dégrader la dicaprine déposée sous forme de couches monomoleculaires à 35 mN.m-1. Les mêmes auteurs ont conclu que les films monomoléculaires peuvent être utilisés comme critère pour différencier les lipases qui sont incapables d'hydrolyser les triacylglycérols à chaînes longues, des estérases.

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