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Dans le domaine de la virologie la culture cellulaire a
été un moyen qui a permis de
comprendre plusieurs phénomènes sur la
pathogénicité des virus.
En effet la culture du virus de la rubéole sur les
cellules BHK21 a permis la production de
l'hémagglutinine rubéolique.
Pour produire l'hémagglutinine rubéolique il faut
d'abord réussir:
? Le procédé de stérilisation du local et
du matériel par des règles de conduite
strictes dans les salles de culture.
? Le procédé de préparation des
réactifs utilisant la culture des cellules BHK21.
? Le procédé de culture des cellules en masse.
? Le procédé de récolte et d'extraction de
l'hémagglutinine rubéolique.
? Le titrage de l'hémagglutinine rubéolique par la
technique d'hémagglutination.
Le lot d'hémagglutinine rubéolique produit a
été validé par le test ELISA indirect IgG.
Les résultats obtenus après le test ELISA
indirect sont positifs selon les critères et les conditions
standardisées.
A l'heure actuelle d'autres travaux de recherche sont en
cours de réalisation au Laboratoire d'Immunotechnologie et
Réactifs Biologiques. Ces travaux sont basés sur
l'amélioration de la qualité de l'hémagglutinine produite,
utilisée pour le diagnostic et la production d'un Kit pour le diagnostic
de cette maladie.
L'objectif de ces travaux est de contribuer au
développement d'un Kit local pour éviter l'importation des Kits
commercialisés destinés au diagnostic de la maladie de la
rubéole.
Jusqu'à maintenant les résultats de ces travaux
sont prometteurs et laissent à espérer un progrès meilleur
dans ce domaine.
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·
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Site internet
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www.larousse.fr
?
www.microbe-edu.org
AnHexes
Annexe 1: Préparation des milieux de culture
Préparation de la solution de Tryptose
phosphate
Dans 500 ml d'eau distillée, ajouter 29,5g Tryptose
phosphate (DIFCO)
Porter le volume à 1 L
Visser légèrement le flacon
Autoclaver à 120°C pendant 15 min
Laisser le flacon refroidir jusqu'au lendemain
Garder à température ambiante
Préparation de l'antibiotique
(Pénicilline-Streptomycine)
Pénicilline .5.000.000 UI
Streptomycine .2,5g Filtration avec 100 ml d'eau
distillée Utilisation de 2 ml dans 1L de milieu
Préparation du milieu de culture DMEM
0%
Dans un flacon de 1L de DMEM ajouter :
50 ml Tryptose phosphate
2 ml pénicilline-streptomycine
Faire le contrôle de stérilité sur Bouillon
Trypto-caséine soja
Thioglycolate
Gélose Sabouraud
Préparation du milieu de culture DMEM
2%
Dans un flacon de 1L de DMEM ajouter:
50 ml Tryptose phosphate
2 ml pénicilline-streptomycine
20 ml de SVF
Faire le contrôle de stérilité sur Bouillon
Trypto-caséine soja
Thioglycolate
Gélose Sabouraud
Préparation du milieu de culture DMEM
5%
Dans un flacon de 1L de DMEM ajouter:
100 ml Tryptose phosphate
2 ml pénicilline-streptomycine
50 ml de SVF
Faire le contrôle de stérilité sur Bouillon
Trypto-caséine soja
Thioglycolate
Gélose Sabouraud
Préparation du milieu de culture DMEM
10%
Dans un flacon de 1L de DMEM ajouter :
100 ml Tryptose phosphate
2 ml pénicilline-streptomycine
100 ml de SVF
Faire le contrôle de stérilité sur Bouillon
Trypto-caséine soja
Thioglycolate
Gélose Sabouraud
Préparation de milieu de conservation et
conservation des cellules BHK21
Les composants du milieu de conservation sont mis dans un tube de
50ml comme suit:
DMEM .25ml
SVF .5ml
Solution d'Albumine bovine (10%) 2,5ml
Saccharose (10%) .2,5ml
L'Albumine bovine et le saccharose sont préparés
d'avance. Nous avons mélangé 1g de Saccharose et d'Albumine
bovine chacun dans un tube de 10ml d'eau distillée.
Faire le contrôle de stérilité sur Bouillon
Trypto-caséine soja
Thioglycolate
Gélose Sabouraud
Les cellules BHK21 destinées à la conservation
sont traitées par la solution de trypsine avec le milieu DMEM 5% SVF et
repartis dans des tubes de 50ml. Ces tubes sont ensuite mis dans la
centrifugeuse à 800 rpm à 4°C pendant 3 min. Le surnageant
est jeté. Le culot est reparti dans le milieu de conservation sans DMSO;
soit environ 3,6 ml, puis 0,4 ml de DMSO sont ajoutés lors de la
conservation. La solution est mélangée puis repartie dans des
ampoules à raison de 1 ml dans chaque ampoule.
Ces ampoules sont mises à : - 20°C pour une heure
- 40°C pour une journée
-70°C pendant une nuit et -170°C dans l'azote
liquide.
La conservation des cellules est une étape essentielle
dans la culture cellulaire. Les cellules conservées sont
utilisées en cas de besoin.
Annexe 2: Préparation de milieu pour contrôle de
stérilité
Préparation de milieu Thioglycolate
Dans 500 ml d'eau distillée ajouter 15g Thioglycolate
(Scharlau)
Faire une agitation par l'agitateur magnétique
jusqu'à homogénéisation du milieu
Visser légèrement le flacon
Autoclaver à 120°C pendant 15 min
Laisser le flacon refroidir jusqu'au lendemain
Garder à température ambiante
Préparation du milieu Bouillon
Trypto-caséine soja
Dans 500 ml d'eau distillée ajouter 15g Bouillon
Trypto-caséine soja (BIOKAR)
Faire une agitation par l'agitateur magnétique
jusqu'à homogénéisation du milieu
Visser légèrement le flacon
Autoclaver à 120°C pendant 15 min
Laisser le flacon refroidir jusqu'au lendemain
Garder à température ambiante
Annexe 3: Préparation des Tampons pour extraction de
l'HA
rubéolique
Préparation de Tampon Glycine 1M
Glycine .75,07g/L
Eau distillée qsp 1000 ml
Ajuster le pH à 10 avec NaOH N
Préparation de la solution Tween 80 à 1,25%
Tween 80 1,25g
PBS qsp 100ml
Annexe 4: Préparation des Tampons pour le titrage de
l'HA
rubéolique
Préparation de Tampon de lavage GGB
Barbital 0,58g/L
Gélatine 0,60g/L
Barbital sodique .0,38g/L
Glucose 10g/L
NaCl 8,50g/L
CaCl2 anhydre 0,02g/L
MgSO4 7H2O 0,12g/L
H2O qsp 1000 ml
Conservation à +4°C
Ajouter l'Albumine bovine avant l'emploi
.4g/L
Ajuster le pH à 7,4 -7,6 Stérilisation par
filtration
Préparation de Tampon Tacetal Tampon Acide:
NaCl 8,7g/L
Na2HPO4 (12H2O) 15,75g/L
NaH2PO4 anhydre 24, 34g/L
H2O qsp 1000 ml Filtrer sur 0,45 um et 0,22 um Garder à
+4°C
pH 5,8
Tampon Alcalin:
NaCl .7,02g/L
BO3H3 3,09g/L
NaOH N 24 ml
Albumine bovine 4,0g/L
H2O qsp 1000 ml Filtrer sur 0,45 um et 0,22 um Garder à
+4°C
pH 9,0
Préparation de Tampon Tacetal
Mélanger un volume de Tampon Acide avec un volume de
Tampon Alcalin
Régler le pH à 6,2
Garder à +4°C
Annexe 5: Préparation et fonction des Tampons ELISA
Tampon Phosphate ? Solution 1:
KH2PO4 1M 136g
H2O qsp 1L ? Solution 2:
K2HPO4 1M .174g
H2O qsp 1L
Ajouter sous pH-mètre la solution 1 à la solution 2
jusqu'à atteindre pH 7,4
Tampon PBS
? PBS (0,15 M NaCl + 0,01 M Tampon Phosphate 7,4)
-NaCl .87,6g
H2O qsp .1L
-Tampon Phosphate 10ml
H2O qsp ..1L ? PBS Tween 20 à 0,1%
Tween 20 1ml
PBS qsp 1L
? PBS Tween 20 Gélatine 0,5%
-Gélatine (sigma) 0,5%
-5g de Gélatine dissoute par chauffage dans 100ml d'eau
distillée
-Gélatine 5% 10ml
-PBS Tween 20 qsp .100ml
Tampon Citrate 1M
? Citrate de sodium 1M (C6H5Na3O72H2O)
C6H5Na3O72H2O 294,10 g
H2O qsp .1L
? Acide citrique 1N C(OH) (COOH) (CH2COOH) 2H2O
C(OH) (COOH) (CH2COOH) 2H2O ..210,14g
H2O qsp 1L
Ajouter sous pH-mètre la solution d'Acide citrique 1N
à la solution 1M de Citrate de sodium jusqu'à obtenir un pH 5
Tampon Carbonate/Bicarbonate ? Solution 1:
NaHCO3 1M .84,01g
H2O qsp .1L
? Solution 2:
Na2CO3 1M .105,99g
H2O qsp .1L
Ajouter sous pH-mètre la solution 1 à la solution 2
jusqu'à obtenir pH 9,6
Solution Substrat chromogène
OPD 5 mg
H2O2 30% 10ul
Tampon Citrate pH 5 0,1 M 10ml
Fonction des Tampons pour le test ELISA
? Tampon de saturation PBS-Tween-Gélatine
5%
Le Tampon de saturation PBS-Tween-Gélatine 5% est un
Tampon de saturation utilisé dans le test ELISA indirect pour occuper
les sites qui sont restés vides après fixation de l'Ag
rubéolique au fond des puits de la plaque ELISA. Il est utilisé
aussi pour diluer les sérums à tester et le Conjugué anti
IgG humain couplé à l'enzyme peroxydase.
? Tampon de lavage PBS-Tween (phosphate buffered
saline-Tween)
Le Tampon de lavage PBS-Tween est utilisé pour faire le
lavage après chaque étape du test ELISA.
? Tampon Carbonate/Bicarbonate (0,1M, pH=9,6)
Le Tampon Carbonate/Bicarbonate est utilisé pour
effectuer les différentes dilutions de l'Ag rubéolique dans
l'étape de sensibilisation de la plaque.
? Substrat chromogène OPD
(Orto-Phénylène Diamine)
Le Substrat chromogène OPD est une solution
révélatrice du complexe immun (Ac-Ag). Suite à la
rencontre du Substrat chromogène OPD avec l'enzyme peroxydase
fixé déjà sur le Conjugué anti IgG humain
couplé à l'enzyme peroxydase, il va y avoir une réaction
de dégradation et apparition de couleur orangée.
? Pour les résultats faux positifs il y a virage vers la
couleur jaune.
? Le Conjugué anti IgG humain
Le Conjugué anti IgG humain (SIGMA A-6029, LOT
84117381) est couplé a l'enzyme peroxydase. Ce Conjugue ne peut se fixer
que sur le complexe immun (Ac-Ag).
La révélation du complexe immun (Ac-Ag) se fait
grâce à l'enzyme peroxydase au contact avec le Substrat
chromogène OPD.
? Solution d'arrêt (acide sulfurique
112SO4 4N)
L'acide sulfurique 112SO4 4N permet l'arrêt de la
réaction ELISA.
|
Résumé: La culture cellulaire a
été introduite dans les années 1920 et s'est grandement
étendue au
cours des années 1940. Cette discipline est devenue
importante dans divers domaines comme le domaine de virologie. La culture de
certains virus a permis de résoudre plusieurs problèmes comme le
diagnostic des maladies causées par ces virus.
L'objectif de notre projet de fin d'études consiste
à maitriser la technique de culture cellulaire pour cultiver le virus de
la rubéole sur la cellule BHK21. La culture de ce virus va nous
permettre ensuite de réaliser le diagnostic de la maladie de la
rubéole.
Les cellules BHK21 ont été infectées par
le virus de la rubéole afin de produire l'hémagglutinine
rubéolique. Cette étape va nous permettre d'assurer les autres
étapes du procédé de la préparation d'un Kit de
sérodiagnostic de la rubéole.
Pour le lot d'HA produit nous avons pratiqué la
technique d'hémagglutination pour connaitre le titre de
l'hémagglutinine rubéolique. Cette technique a donné un
titre compris entre 512 et 1024 UHA. Ce titre est considéré comme
élevé. La deuxième technique était le test ELISA.
Ce test nous a permis de valider l'hémagglutinine rubéolique et
de connaitre la dilution la plus élevée de l'antigène qui
est de 1/100 avec une dilution de 1/50 pour le sérum. Avec ces dilutions
nous avons trouvé une bonne concordance entre le Kit local et le Kit
commercial moyennant des sérums de malade à titres
préétablis par le service de Virologie clinique à
L'institut Pasteur de Tunis.
|
Abstract: Cell culture was introduced in the
1920's and was greatly expanded in the 1940's.
This discipline became increasingly important in various
fields such as the field of virology. Culture of certain viruses allowed to
solve several problems such as the diagnosis of diseases caused by these
viruses.
The aim of our final studies project is to study end master
the technique of cell culture to grow rubella virus on BHK21 cell. The culture
of this virus will then allow us to make the diagnosis of the rubella
disease.
BHK21 cells were infected with rubella virus to produce
rubella hemagglutinin. This step will allow us to ensure the further process
steps for preparing a kit rubella serodiagnosis.
For the produced batch of HA we practiced the technique of
hemagglutination to know the titer of the hemagglutinin rubella. This technique
gave a titer between 512 and 1024 UHA. This titer is considered high. The
second technique was the ELISA test. This test allowed us to validate the
hemagglutinin rubella and to know the higher dilution of the antigen which is
1/100 and 1/50 of serum. With these dilutions we found good agreement between
the local Kit and the commercial kit through infected serums of predetermined
titer by the Pasteur Institute of Tunis's Clinical Virology department.
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