Conclusion
30
CONCLUSION
Notre étude a porté sur la recherche des
anomalies génitales les plus fréquentes qui causent des
problèmes d'infertilité chez la brebis.
Au terme de cette étude, les résultats obtenus
par l'examen macroscopique des tractus génitaux après abattage
ont permis de révéler sur 269 cas examinés :
- Une faible fréquence de matrices gestantes (9.67%).
- Une fréquence très élevée de
matrices normales (86%). - Une faible fréquence d'anomalies
génitales (14%).
Parmi les matrices présentant des anomalies, on a une
fréquence de 76.47% d'affections utérines, une fréquence
de 2.94% d'affections ovariennes.
Le faible taux d'anomalies recensées dans cette
étude prouve que ce n'est pas la cause primordiale d'infertilité
chez la brebis. Cependant, la fertilité de cette espèce
dépend bien de plusieurs facteurs qu'il convient de maitriser, citons :
l'importance de la pathologie, la conduite d'élevage, la maitrise du
cycle de la femelle et la technicité.
Références
bibliographiques
31
RÉFÉRENCES BIBLIOGRAPHIQUES
1. Abdul-kareem, K.F., Al-Mayah, A.A.S., Dawood, K.,
2007. Abnormalities of reproductive organs in ewes: a prospective
histopathological study. Basrah Journal of Veterinary Research,
97-109.
2. Alosta, R.A., Vaughan, L., Collins, J.D., 1998.
An abattoir survey of ovine reproductive tracts in Ireland September
1998, Theriogenology 50(3), 457- 464.
3. Altman, J., 1962. Growth Biology.
Handbooks, volume 1, Federation of American Societies for Experimental Biology,
Washington, 608p.
4. Arthur, G.H., 1975. Analysis of
reproductive function of the ewe based on post mortem examination.
Vetarinary Record 96 (12), 261-266.
5. Arthur, G.H., Noakes, D.E., Pearson, H.,
1992. Veterinary reproduction and obstetrics, 6th edition, Baillerie
Tindall, London, 641p.
6. Baril, G., Cognie, Y., Freitas, V.J.F., Maurel,
M.C., Mermillod, P., 1998. Maitrise du moment de l'ovulation et
aptitude au développement de l'embryon chez les ruminants. Rencontres
autour des Recherches sur les Ruminants, Paris, France, pp. 57-62.
7. Barone, R., 1978. Anatomie
comparée des mammifères domestiques. Tome 3 Splanchnologie.
Edition Vigot. 951p.
8. Barone, R., 1990. Anatomie
comparée des mammifères domestiques, Tome 4, Splanchnologie II,
Vigot, Paris, France, 896p.
9. Baudet, A., 2017. Diagnostic de gestation
chez la brebis : dosage des protéines associées à la
gestation dans le lait par méthode ELISA IDEXX. Thèse de doctorat
vétérinaire. VetAgro Sup, Campus vétérinaire de
Lyon, Université de Lyon, 138p.
10. Benchaib, F., 2007. Étude
comparative, descriptive et diagnostique de la pathologie génitale chez
la femelle des petits ruminants. Thèse de doctorat en biologie de la
reproduction. Université d'Oran, 163p.
11. Bencherif, S., 2011. L'élevage
pastoral et la céréaliculture dans la steppe algérienne
Évolution et possibilités de développement. Thèse
de doctorat. Institut des Sciences et Industries du Vivant et de
l'Environnement, Agro Paris Tech, 294p.
12. Bloom, W., Fawcett, D.W., 1975. A
Textbook of Histology, 10th edition. W. B. Saunders, Philadelphia, 1033p.
13. Bonnes, G., Desclaude, J., Gadoud, R., Drogoul,
C., le loc'h, A., Montmeas, L., 1988. Reproduction des
mammifères d'élevage. INRA collection. Edition Foucher, Paris,
240p.
14. Buergelt, C.D., 1997. Color atlas of
reproductive pathology of domestic animals. Mosby-Year Book, St. Louis, USA,
219p.
15. Caldwell, B.V., Tillison, S.A., Brock, W.A.,
Speroff, L., 1972. The effects of exogenous progesterone and
oestradiol on prostaglandin F levels in ovariectomized ewes. Prostaglandins
1(3), pp. 217-228.
32
16. Castonguay, F., 2018. La reproduction chez
les ovins. Université Laval, faculté des sciences de
l'agriculture et de l'alimentation, Québec, Canada, 145p.
17. Dawood, K.E., 2010. Pathological
abnormalities of the reproductive tracts of ewes in Basra, Veterinary
Record 166 (7), 205-207.
18. Dérivaux, J., 1971. Reproduction
chez les animaux domestiques : Physiologie, volume 1. Edition Derouaux, France,
157p.
19. Dérivaux, J., Ectors, F., 1980.
Rappels physiologiques, hormones de la reproduction,
propriétés biologiques, cinétique des modifications
hormonales au cours du cycle oestral, relation hypothalamo-hypophyso ovarienne,
chapitre 2. In : Physiopathologie de la gestation et
obstétrique vétérinaire. Éditions du Point
Vétérinaire, France, pp.15-22.
20. Donald, H.P., 1949. The inheritance of a
tail abnormality associated with urogenital disorders in pigs. Journal of
Agricultural Science 39 (2), 164-173.
21. Einarsson, S., Gustafsson, B., 1970.
Developmental Abnormalities of Female Sexual Organs in Swine. A post
mortem examination of 1000 gilts. Acta Veterinaria Scandinavica 11,
427-442.
22. Emady, M., Noakes, D.E., Arthur, G.H., 1975.
Analysis of reproductive function in the ewe based on postmortem
examination. Veterinary Record. 96 (12), 261-266.
23. Erickson, G.F., 1978. Normal ovarian
function. Clinical Obstetrics and Gynecology 21 (1), 31-52.
24. Flint, A.P.F., Sheldrick, E.L., 1983.
Evidence for a systemic role for ovarian oxytocin receptor in the
choice between cyclicity and gestation in ruminants. Journal of
Reproduction and Fertility 67 (1), 215-225.
25. François, C., 2008. Pathologies
de la reproduction des ovins et des caprins. Thèse en vue de l'obtention
du diplôme de Docteur vétérinaire. École
vétérinaire de Maisons-Alfort.
https://theses.vet-alfort.fr/Th
multimedia/repro ovicap/femelle/index.html (Consulté
le
10/05/2021).
26. Gordon, I., 1997. Controlled
reproduction in sheep and Goats, volume 2. CAB International, Eastbourne,
United Kingdom, 450p.
27. Gustafsson, B., Holmberg, O., 1966.
Post-mortemundersokning av konsorgan fran tackor med speciell hansyn
till forekomst av missbildningar. Svensk Veterinar Tidnisk 18,
6432.
28. Hamadou, I., Moula, N., Mani, M., Issa, M.,
Antoine-Moussiaux, N., Farnir, F., Leroy, P., Marichatou, H., 2015.
Contribution à l'étude des caractéristiques du
cycle oestral chez la brebis et les caractéristiques spermatiques chez
le bélier de race Koundoum, au Niger. Revue de Médecine
Vétérinaire 166 (3), 113-115.
29. Hanzen, C., 2004. Pathologies du tractus
génital femelle. Aspects cliniques et thérapeutiques des
infections utérines chez les ruminants. Cours 2e année
Doctorat. Faculté de Médecine Vétérinaire. Service
d'obstétrique et de pathologie de la reproduction des ruminants,
équidés et porcs. Université de Liège, Belgique.
30.
33
Hanzen, C., Drion, P., Beckers, JF., Dérivaux,
J., Ectors, F., 2005. Physiologie de la Reproduction animale, Tome 1
(de 3), université de Liège, Belgique, 187p.
31. Hanzen, C., 2009. Les pathologies de la
gestation chez les ruminants. Faculté de médecine
vétérinaire, université de Liège, Belgique.
32. Hanzen, C., 2016. Pathologies du tractus
génital femelle des ruminants. Faculté de médecine
vétérinaire, université de Liège, Belgique, pp.
1-8.
33. Henderson, D.C., Robinson, J.J., 2007.
The Reproductive Cycle and its Manipulation. In: Diseases of
Sheep, 4th Edition, pp.43-53.
34. Jubb, K.V.F., Kennedy, P.C., Palmer N., 1985.
The female genital system. In: Pathology of domestic animal,
volume 3, 3rd edition, Academic press, New York, pp. 305377.
35. Kanis, J.A., 1994. Osteoporosis and its
consequences. In: Osteoporosis. Blackwell Science, Oxford, England,
pp. 1-21.
36. Khammar, F., Moumène, A., Seboussi, R.,
Bister, J., 2013. Traitements à base de progestagènes ou
de mélatonine combinés à l'effet bélier chez la
brebis Ouled-Djellal au printemps. Revue d'élevage et de
médecine vétérinaire des pays tropicaux 67(1),
41-47.
37. Khiati, B., 2013. Étude des
performances reproductives de la brebis de race Rembi. Thèse de doctorat
en biologie, université d'Oran, 188p.
38. Kiran, M.M., Erer, H., Ciftçi, M.K.,
Hatipoglu F., 1995. A survey of pathological conditions on the genital
tract of ewes: II. uterus, cervix, and vagina. Veteriner Bilimleri Dergisi.
11, 119-129.
39. Lagerlöf, N., Boyd, H., 1953.
Ovarian hypoplasia ad other abnormalities conditions in the sexual
organs of Swedich highland breed. Results of postmortem examination of over
6000 cows. Cornell Vet 43(1), 64-79.
40. Long, S.E., 1980. Some pathological
conditions of the reproductive tract of the ewe. The Veterinary Record
106(8), 175-177.
41. Marcum, JB., 1974. The Freemartin
Syndrome. Animal Breeding Abstracts 42, 227-242.
42. Mc Entee, K., 1990. Pathology of
domestic mammals. Academic Press INC, New York, 401p.
43. Mimoune, N., 2016. Étude
histopathologique des kystes ovariens chez la vache en Algérie.
Thèse de doctorat es sciences soutenue publiquement à l'Institut
National Vétérinaire, université Saad Dahleb, Blida1,
Algérie, pp.60-90.
44. Moghaddam, A., Gooraninejad, S., 2007.
Abattoir survey of gross abnormalities of the ovine genital tracts in
Iran November 2007. Small Ruminant Research 73(1), 259-261.
45. Molitch, M.E., 1995. Neuroendocrinology.
In: Endocrinology and Metabolism, 3rd edition. McGraw-Hill,
New York, pp. 221-288.
46. Niar, A., 2005. Maitrise de la
reproduction chez la brebis de race algérienne. Thèse de doctorat
d'état en reproduction animale. Université d'Oran.
47.
34
Olson, J.D., Ball, L., Mortimer, R.G., 1984.
Therapy of Postpartum Uterine Infections. The bovine proceedings
17, 85-88.
48. Palmieri, C., Schiavi, E., Della Salda, L., 2011.
Congenital and acquired pathology of ovary and tubular genital organs
in ewes: A review. Theriogenology 75(3), 393-410.
49. Regassa, F., Mengesha, D., Dargie, M., Tolosa, T.,
2003. Abattoir evidence on association between uterine and ovarian
abnormalities in Ethiopian highland ewes. Animal Reproduction Science
111(2-4), 384-390.
50. Smith, K.C., Parkibson, T.J., Pearson, G.R., Long,
S.E., 1996. Short Report: Ovarian Fusion in Sheep. Journal of
anatomy 189(1), 199-204.
51. Smith K.C., Long S.E., Parkinson T.J., 1998.
Abattoir survey of congenital reproductive abnormalities in ewes.
Veterinary Record 143(25), 679-685.
52. Smith, K.C., Long, S.E., 1999. Abattoir
survey of congenital reproductive abnormalities in ewes. The Veterinary
record 143(25), 679-685.
53. Smith B., 2002. Large animal internal
medicine, 3rd edition. Mosby editor, Saint Louis, 1735p.
54. Vaillancourt, D., Lefèvre, R., 2003.
La gestion de la reproduction chez les petits ruminants : le
contrôle du cycle oestral. Le médecin
vétérinaire du Québec 33 (1-2), 43-49.
55. Vaissaire, JP., 1977. Sexualité et
reproduction des mammifères domestiques et de laboratoires, Maloine,
Paris, France, 457p.
56. Vallet, J.L., Lamming, G.E., Batten, M., 1990.
Control of endometrian oxytocin receptor and uterine response to
oxytocin by progesterone and oestradiol in the ewe. Journal of Reproduction
and Fertility 90(2), 625-634.
57. Zebiri, ME., Djamaï, A., 2007.
L'activité sexuelle de la brebis. Mémoire de fin d'études
en sciences vétérinaires en vue de l'obtention du diplôme
de Docteur Vétérinaire. Université Frères Mentouri,
Département vétérinaire El Khroub, Constantine,
Algérie.
https://www.memoireonline.com/05/08/1135/m
l-activite-sexuelle-de-la-brebis0.html#toc0 (Consulté le
20/05/2021).
35
LISTE DES TABLEAUX
Tableau 1. Les différentes dimensions
de l'ovaire chez la brebis 2
Tableau 2. Nombre et fréquences
d'utéri présentant les différentes lésions
macroscopiques 21
Tableau 3. Nombre et fréquences des
lésions observées sur les oviductes 22
36
LISTE DES FIGURES
Figure 1. Système reproducteur de la
brebis .. 4
Figure 2. L'axe hypothalamo-hypophyso-gonadique
femelle 7
Figure 3. Diagramme représentatif des
changements hormonaux durant le cycle oestral
de la brebis .. 8
Figure 4. Résultats de l'étude
macroscopique des tractus génitaux de brebis en post-
mortem 19
Figure 5. Deux matrices gravides (Aspects
interne et externe) .. 20
Figure 6. Deux cas de gestation
gémellaire à différents stades de développement
20
Figure 7. Utérus normal non gravide .
20
Figure 8. Utérus normal avec
présence de follicules sur l'ovaire .. 20
Figure 9. Utérus avec un cervix normal .
20
Figure 10. Aspect macroscopique d'une infection
utérine . 22
Figure 11. Cervicite 22
Figure 12. Prolapsus utérin . 22
Figure 13. Salpingites . 23
Figure 14. Kyste para-ovarien 23
Figure 15. Ovaire portant un corps jaune et des
follicules . 23
Figure 16. Coupes d'utéri montrant
différents aspects d'infections utérines . 24
Figure 17. Coupe d'ovaires montrant la structure
normale du follicule et du corps jaune
ainsi que celle d'un kyste ovarien. 25
Figure 18. Coupe de cervix atteints de cervicite
26
Figure 19. Coupe au niveau d'un oviducte normal
(19a) et pathologique (19b) 26
Figure A2. Photos personnelles
représentant les étapes de préparation des coupes
histologiques . 38
Figure A3. Photos personnelles
représentant les étapes de la coloration des lames .. 39
|
|
