Memoire Online - Pathologies de l’appareil génital chez la brebis

Les vaginites simples sont dues à l'action de germes saprophytes (streptocoques, colibacilles...). Elles résultent d'une manipulation non hygiénique lors de l'accouchement, d'examens vaginaux, de saillies ou d'inséminations artificielles. Les symptômes sont souvent locaux. L'exploration vaginale est douloureuse. La muqueuse est congestionnée et peut présenter, dans les cas les plus anciens, des granulations translucides correspondant à des amas lymphocytaires (Hanzen, 2016).

Les kystes des conduits de Gartner (vestiges des conduits mésonéphrotiques) doivent être distingués des kystes des glandes de Bartholin (glandes vestibulaires). Les premiers sont localisés sur le plancher vaginal, les seconds dans le vestibule vulvaire (Hanzen, 2016).

Le prolapsus vaginal se rencontre chez diverses espèces animales. Il est particulièrement connu chez la vache et la brebis. Il se manifeste dans la deuxième moitié de la gestation et surtout dans les semaines et jours qui précèdent le part.

Chez la brebis, le prolapsus vaginal survient au moment du part. Il est fréquemment conditionné par la non dilatation du col. Les efforts expulsifs sont incessants et ils finissent par libérer le vagin de ses attaches pelviennes. Dans cette espèce, l'accident est aussi fréquemment associé à certaines maladies de gestation telle la paraplégie ante-partum et la toxémie de gestation sans que soit connue la cause précise de cette relation (Dérivaux et Ectors, 1980).

Le vaginisme désigne un état morbide caractérisé par une hyperesthésie souvent douloureuse de la vulve et du vagin. Elle entraîne une contracture réflexe et spasmodique du sphincter vulvaire gênant et empêchant la saillie. Elle résulte d'une pathologie vaginale ou peut parfois être d'origine idiopathique (Hanzen, 2016).

Le pneumovagin est une accumulation d'air dans le vagin résultant d'une déformation acquise de la vulve et du vagin due au relâchement des muscles et des ligaments. La vulve et le vagin se trouvent ainsi inclinés vers la cavité pelvienne et prennent une position de plus en plus horizontale. De plus, Le manque de tonicité des lèvres vulvaires primaire ou secondaire à des lésions résultant d'un accouchement dystocique entraîne leur manque de coaptation et l'entrée d'air dans le vagin.

L'urovagin suit généralement le pneumovagin car le vagin devient distendu et prend de plus en plus une orientation oblique de l'arrière vers l'avant et plonge dans la cavité abdominale. Il en résulte une accumulation d'urine dans la portion antérieure du vagin (Hanzen, 2016).

L'agénésie de l'un ou des deux ovaires n'est observée que très rarement chez les mammifères domestiques et les ruminants. Des cas d'anomalies du développement rénal peuvent accompagner l'agénésie latérale ou bilatérale de l'ovaire (Donald, 1994).

Lors de l'agénésie bilatérale, les organes génitaux sont complètement absents. Dans les cas ou ils sont présents, ils sont alors très réduits dus à un développement incomplet. Cette anomalie de développement est très souvent d'origine génétique liée à un gène récessif en rapport avec le sexe femelle (Arthur et al., 1992).

L'hypoplasie a été définie comme étant « un développement ovarien incomplet où l'ovaire affecté ou une partie de l'ovaire seulement ne porte aucun follicule » (Lagerlöf et Boyd, 1953). L'hypoplasie est habituellement bilatérale, mais elle varie considérablement dans sa symétrie et sa sévérité selon l'espèce et l'individu. Cette dernière est très souvent accompagnée de l'infantilisme, ce qui justifie la taille réduite de l'ensemble du tractus génital.

Parfois confondus avec de vrais kystes ovariens, le terme de kyste para ovarien est utilisé vaguement comme référence à une variété de structures kystiques localisées au voisinage de l'ovaire. De tels kystes peuvent provenir des reliquats des conduits mésonéphrotiques ou paramésonéphrotiques. Les kystes para ovariens sont de taille et de forme variable, sphérique ou ovale. Leur diamètre peut atteindre ou dépasser 10cm dans certains cas (Jubb et Palmer, 1993).

Le kyste ovarien est depuis longtemps reconnu comme une cause majeure d'infertilité chez les ruminants. On le désigne sous différentes appellations : dégénérescence kystique ovarienne, follicule kystique ou kyste folliculaire. Divers facteurs sont impliqués dans l'apparition des kystes : l'âge, la saison, la production laitière, la génétique et d'autres plus spécifique comme la nutrition, le postpartum, les infections utérines ou le stress. Elles sont dues à des perturbations du cycle ovarien ou à un dysfonctionnement de l'axe hypothalamo-hypophyso-ovarien (Smith, 2002).

L'oophorite ou inflammation de l'ovaire est plutôt rare. Elle fait le plus souvent suite à une métrite. Plus rarement, la contamination à A. pyogenes est d'origine hématogène (Hanzen, 2016).

Il s'agit d'un défaut de développement de l'utérus. Cette anomalie, bien qu'assez courante chez les bovins, est au contraire très rare chez l'espèce ovine. L'atrésie représente environ 20% des pathologies dépistées chez les agnelles (Smith, 1998).

L'aplasie totale est extrêmement rare à l'exception de certains cas de free martinisme et d'hermaphrodisme. La plupart des cas recensés, présentent l'aplasie d'un segment au niveau d'une seule corne ou bien plus rarement, les deux cornes en même temps (Einarsson et Gustafsson, 1970).

Cette pathologie se traduit par l'absence congénitale d'une corne de l'utérus. Souvent, une petite portion cornuelle est tout de même présente. Bien que cette anomalie provoque une réduction de la fertilité chez la femelle, elle n'empêche tout de même pas la gestation chez la vache et la brebis (Mc Entee, 1990).

Cette malformation congénitale est observée particulièrement chez l'espèce ovine. Gustafsson et Holmberg (1966) ont rapporté un cas d'utérus unicorne sur 502 utérus de brebis étudiés.

Anomalie congénitale d'origine génétique qui survient suite à la fusion incomplète de la partie postérieure des canaux de Müller au cours du développement foetale. Cette pathologie rare se manifeste par l'apparition d'un double vagin et d'un double col et chacun s'ouvre séparément de leur coté dans une corne utérine, « utérus didelphe » (Mc Entee, 1990 ; Buergelt, 1997).

La métrite est l'inflammation de l'une des tuniques de l'utérus. L'endométrite est l'inflammation de l'endomètre. Quant au pyromètre, c'est l'accumulation de pus dans la cavité utérine.

La plupart des infections utérines démarrent au niveau de l'endomètre et sont associées à l'accouplement, la gestation, l'involution utérine en période du postpartum, mais également aux avortements (Arthur et Noakes, 1992 ; Mc Entee, 1990 ; Kiran et Erer, 1995).

L'endométrite représente la lésion la plus fréquente au niveau de l'utérus des brebis. Elle se présente soit sous forme aigue (métrite) soit sous forme chronique (séro-hémorragique ou suppurée).

L'endométrite aigue succède généralement aux inflammations cervico-vaginales, comme elle peut aussi être secondaire à un avortement ou une mise-bas (Arthur et Noakes, 1992 ; Mc Entee, 1990 ; Kiran et Erer, 1995).

Le pyomètre est défini comme une accumulation de pus dans la cavité utérine. Des écoulements vaginaux purulents intermittents peuvent êtres observés (Arthur, 1975).

Cette infection se produit soit suite à l'accouplement ou bien après la période de parturition. La plus part des cas de pyomètre post coitum enregistrés en élevage sont dus à Tritrichomonas fetus, tandis que le pyomètre du post partum est généralement causé par Actinomyces pyogenes (Corynebacterium pyogenes) (Olson et al., 1984 ; Mc Entee, 1990).

La mort foetale peut survenir durant différents stades de la gestation. Elle est dans la plupart du temps suivie d'une expulsion du foetus non viable. Cependant dans certains cas, le foetus n'est pas expulsé en dehors de la cavité utérine, ce qui conduit à l'apparition de pathologies telles que la momification ou la macération. Il peut se produire également une transformation emphysémateuse du foetus.

La momification consiste en la transformation aseptique du foetus. Les liquides allantoïdiens et amniotiques se résorbent. Le placenta se désengrène et s'accole au foetus. Les muscles se rétractent et on observe une lyse de la peau ainsi que la transformation du foetus en une masse brunâtre et gluante. Cette affection présente des étiologies multiples et encore peu étudiées (Hanzen, 2004).

La macération est quant à elle plus rare comparée à la momification. Elle est surtout observée chez l'espèce bovine. Elle est définie comme une digestion bactérienne du foetus et se caractérise pas l'imprégnation liquidienne lente des tissus ce qui conduit à leur ramollissement et dissolution (Jubb, 1985).

Totalement différent des deux affections précédentes, l'emphysème foetal est quant à lui définit comme étant une décomposition gazeuse du foetus, il se caractérise par un oedème sous-cutané généralisé et la boursouflure du foetus.

Cette affection se présente sous forme d'une inflammation infectieuse ou non du col de l'utérus. Elle peut être aigue ou bien chronique. Dans la plupart des cas, elle fait suite aux manipulations obstétricales lors de dystocies faites dans le non respect des mesures d'hygiène. La cervicite peut se compliquer en évoluant de façon ascendante pour provoquer des métrites plus au moins graves (Hanzen, 2009).

Cette étude porte sur le diagnostic en post mortem des pathologies de l'appareil génital chez la brebis. L'échantillon des matrices analysées a été collecté au niveau de l'abattoir des Eucalyptus, dans la wilaya d'Alger, durant une période de 3 mois, allant du 1^er avril au 30 juin 2021. Outre le diagnostic des pathologies, ce travail a également pour objectif le dénombrement et l'estimation de la fréquence des différentes affections. Ces dernières ont un impact direct sur le rendement des élevages en Algérie et induisent d'importantes pertes économiques chaque année.

En effet, ces pertes sont la conséquence de la réduction du rendement laitier et viandeux. Ce dernier est lié à l'allongement de l'intervalle vêlage-vêlage, à la reforme prématurée des femelles, à l'abattage des femelles gestantes du à un mauvais diagnostic de gestation voire carrément l'absence de l'examen de gestation en ante mortem dans certains abattoirs.

Néanmoins, il y a lieu de souligner qu'au niveau de l'abattoir des Eucalyptus, la majorité des cas de gestation rencontrés étaient en début de conception (moins de 2 mois) et nous pouvons considérer que ces animaux n'ont pu être diagnostiqués comme étant gestants en raison de la taille réduite du foetus. Ceci témoigne du sérieux des vétérinaires inspecteurs de cet abattoir dans leur travail et de leur compétence.

En prenant en compte toutes ces conditions, nous visons à travers notre enquête à :

Le choix de l'abattoir des Eucalyptus comme source pour nos prélèvements, a été motivé d'une part, par le grand nombre d'animaux abattus de manière journalière à son niveau, notamment les brebis, qui sont la population ciblée par notre étude, et d'autre part, par le nombre important de fonctionnaires et professionnels du domaine travaillant au sein de cet établissement, qui nous ont été d'une très grande aide dans nos recherches. Il faut noter également la proximité de cet abattoir par rapport à l'université des sciences et technologies de Bab Ezzouar (USTHB), ainsi qu'à l'école nationale supérieure vétérinaire (ENSV) au sein de laquelle se trouve le laboratoire d'histologie et anatomopathologie ou nous avons effectué notre pratique.

L'origine des cheptels d'où proviennent les femelles admises à l'abattoir pour divers motifs d'abattage était inconnue. C'est pour cela que nous n'avons pas pu recueillir les antécédents, commémoratifs et autres informations nécessaires à leur identification.

Pour l'examen macroscopique en post mortem, nous avons procéder de manière systématique en commençant par une inspection visuelle des matrices complètes, suivie d'une palpation des différentes parties de l'appareil génital en allant du col utérin (cervix) et remontant progressivement vers le corps, les cornes, les oviductes et enfin les ovaires.

Étant donné la manière dont les matrices ont étés sectionnées au niveau du vagin par le personnel de l'abattoir, nous étions obligés de nous en tenir qu'au traitement des anomalies du tractus génital « interne » dans notre étude. Les tractus génitaux incomplets ont eux étés recalés.

Une fois gantés, et à l'aide d'un bistouri, nous avons commencé par effectuer une importante incision longitudinale en partant du vagin pour pouvoir examiner l'intérieur du cervix, du corps et enfin des cornes utérines. La muqueuse de l'utérus ainsi que les trompes sont alors examinées avec une grande attention. Les divers anomalies qu'on a pu rencontrer ont toutes étaient notées dans un registre, et des photos ont également été prises à l'aide d'un Smartphone.

L'examen macroscopique des utéri a consisté en une inspection et palpation, puis incision franche des corps, des cornes et cols utérins.

L'examen de ces divers segments utérins est effectué dans le but de détecter des anomalies telles que : l'endométrite, le pyromètre, la salpingite, l'utérus unicorne, l'utérus didelphe, l'atrophie de l'endomètre, l'hyperplasie, l'hydromètre, la métrite, ainsi que certains cas rares de tumeurs etc.

Après l'examen macroscopique externe, vient l'examen interne des utéri. On procède à la dissection de l'appareil génital en utilisant un ciseau, on commence à découper graduellement à partir du vagin jusqu'au cornes utérines. Une fois l'intérieur du tractus génital visible, nous procédons à l'examen soigneux de la muqueuse utérine et on prend note de toute lésion inflammatoire visible comme l'oedème, la congestion ou bien la présence de foyers hémorragiques. Il est tout aussi important de rechercher la présence d'exsudats et infiltrats inflammatoires et identifier leur nature (séreuse, muqueuse, séro-muqueux, fibrineuse, purulente, ou bien hémorragique).

L'examen des ovaires par inspection et palpation est automatiquement suivi d'une incision longitudinale à l'aide d'un bistouri. L'incision permet d'extérioriser le contenu de l'ovaire et éventuellement les follicules kystiques ou les corps jaune. Elle permet également d'apprécier la taille des follicules ovariens, d'identifier approximativement le stade de développement et d'apprécier le niveau d'adhérence des structures ovariennes au parenchyme ovigère.

Les anomalies les plus recherchées au niveau de l'ovaire sont : l'hypoplasie et l'aplasie ovarienne, les kystes ovariens et para ovariens, les ovarites, mais aussi les tumeurs ovariennes.

Sur 269 matrices de brebis récoltées, des prélèvements ont été effectués sur les corps utérins, les ovaires et les salpinx des matrices lésées mais également sur quelques matrices saines. L'étude histologique de nos échantillons a été réalisée au niveau du laboratoire d'anatomopathologie de l'école nationale supérieure vétérinaire (ENSV).

Afin d'effectuer l'observation microscopique indispensable à notre étude, il est nécessaire de monter une lame histologique de bonne qualité et observable au microscope sans

difficultés. Ceci n'est possible que par la bonne exécution de « la technique histologique classique » qui permet le traitement adéquat des échantillons en préservant les divers fragments des parois ovariennes et utérines prélevées.

La technique d'histologie classique consiste, d'une manière générale, en la fixation de l'échantillon, son inclusion à la paraffine, la réalisation de fines coupes et la coloration.

Notre prélèvement doit avoir été préalablement fait de manière propre et délicate afin de ne pas causer la désorganisation tissulaire des différentes couches histologiques.

Cette étape est très importante. Elle a pour but la conservation des structures tissulaires dans un état aussi proche que possible de l'état in vivo, et ce par l'inhibition de toutes activités mitotiques et enzymatiques ainsi que les attaques bactériennes qui peuvent mener très rapidement vers une dégradation cellulaire et dénaturation de l'échantillon.

Les fixateurs les plus utilisés en pratique sont le Formol et le liquide de Bouin. On immerge notre prélèvement dans un grand volume de formol 10%. La durée de fixation varie selon le volume du prélèvement (Figure A2a).

On prépare d'abord une pièce d'échantillon en coupant délicatement notre fragment préalablement fixé de façon à obtenir une couche de 2 mm d'épaisseur environ. On place cette couche préparée dans une cassette en plastique numérotée au crayon noir pour identifier le prélèvement.

La déshydratation se déroule par l'immersion de nos cassettes dans une série de bains d'alcool à concentrations croissantes (de l'alcool dilué à 50° jusqu'à l'alcool absolu à 100°) (Figure A2b).

L'éclaircissement ou bien l'imprégnation consiste à éliminer les traces d'alcool absolu par immersion des cassettes dans un bain de toluène (Figure A2b). Ces deux étapes ont pour but de préparer notre échantillon à son inclusion dans la paraffine en chassant l'eau intra cellulaire étant donné que la paraffine est hydrophobe. Ces étapes durent 24 heures.

Le prélèvement va baigner dans de la paraffine (résine blanche opaque) fondue, chauffée à 56° dans une étuve pendant 4 heures. La paraffine va alors infiltrer toutes les cellules de notre échantillon (Figure A2c). Cette étape est réalisée au niveau d'un automate de paraffine, aussi appelé appareil d'enrobage de paraffine.

Après 4 heures d'inclusion, la paraffine liquide est coulée dans un petit moule en métal appelé « barres de Leuckart ». On y place notre échantillon et après toute une nuit de refroidissement au congélateur, on obtient enfin « un bloc de paraffine » dur avec le prélèvement à l'intérieur, prêt à être utilisé (Figures A2d et A2e).

Cette étape consiste en le passage du bloc de paraffine contenant la pièce histologique dans un microtome, afin d'obtenir des coupes fines de 2 à 5 ìm qui seront disposées en une série régulière sous forme de ruban.

Pour la réalisation des coupes nous avons utilisés un microtome de type « Leica », constitué :

- D'un rasoir soutenu par le porte-rasoir qui est maintenu par des vis de serrage qui ont

comme rôle le réglage de l'angle d'inclinaison du rasoir, en tenant compte du biseau,

Une fois cette étape de microtomie terminée, la préparation des lames histologiques comporte alors 3 étapes :

Cette étape consiste à éliminer la paraffine, c'est-à-dire le milieu d'inclusion, en plaçant les lames sur une plaque chauffante de 45° à 60°C pendant 15 minutes, afin d'éliminer la paraffine périphérique.

A pour but l'élimination de la paraffine intracellulaire, en immergeant les lames dans une série de bains d'alcool à concentrations décroissantes, en partant d'un alcool à 100° jusqu'à l'alcool à 50°, puis on finit par un dernier lavage à l'eau distillée.

Une fois notre lame déparaffinée et réhydratée, elle est prête pour l'étape de la coloration proprement dite.

Cette étape a pour but de mettre en évidence les différents constituants tissulaires (noyau, membrane plasmique, cytoplasme) et ce, en accentuant les contrastes entre ces divers éléments, ce qui permettra une parfaite observation au microscope optique.

Pour notre étude nous avons opté pour une coloration à l'Hémalun Éosine (HE) qui a pour principe de colorer le noyau cellulaire par une laque aluminique basique, l'Hémalun (en violet foncé) et le cytoplasme par un seul colorant acide, l'Éosine (en rose pâle) (mode opératoire en Annexe 1 et figure A3).

Le montage consiste à mettre par-dessus la coupe étalée sur une lame une autre lamelle et les coller l'une à l'autre à l'aide d'une résine synthétique spéciale de type « Eukit ». La lame histologique est enfin prête pour l'observation au microscope optique.

Les éléments histologiques recherchés lors de l'observation microscopique

Les éléments auxquels nous nous intéressons lors de l'examen histologique sont :

? Dans l'ovaire : les parois des follicules ovariens et corps jaunes. On prête une

? La granulosa : si elle est bien présente ou absente, et le nombre de ses couches

? La thèque interne : la forme et le type de ses cellules et sa disposition par rapport à la

- La présence de possibles changements vasculaires au niveau du stroma utérin.

Les données ont été présentées en pourcentage et l'analyse a été réalisée à l'aide de STATISTICA (Version 10, Stat Soft France, 2003). Les différences dans les pourcentages des différentes pathologies ont été évaluées par le test du Chi deux. Le niveau de signification a été fixé à P<0,05.

D'après la figure 4, nous constatons que sur les 269 tractus génitaux examinées, 26 matrices étaient gravides soit (9,67%), et 243 (90,33%) non gravides.

Sur ces derniers, 209 (86%) tractus n'ont présenté aucune anomalie visible après examen, que ce soit au niveau des ovaires, des oviductes ou bien des utéri.

Sur le reste des 34 matrices soit (14%), nous avons pu noter différents types de lésions que nous décrierons ci-dessous.

Figure 4. Résultats de l'étude macroscopique des tractus génitaux de brebis en post-mortem.

Figure 5. Deux matrices gravides (Aspects interne et externe) (Photos personnelles).

Figure 6. Deux cas de gestation gémellaire à différents stades de développement (Photos personnelles).

Les lésions macroscopiques que nous avons pu rencontrer sur l'utérus sont essentiellement des lésions de la muqueuse utérine en cas d'infections (congestion, nécrose, présence d'adhérences avec des sécrétions anormales dans la cavité utérine) (Figure 10), une déchirure de la paroi utérine avec des traces d'adhérences et du tissu cicatriciel, des cas de malformations : utérus unicorne, utérus atrophié dans un cas de free martinisme, un prolapsus (Figure 12) et une malformation cervicale. Nous avons également noté trois cas de salpingite (Figure 13) ainsi qu'une cervicite (Figure 11). Il est important de noter que certaines de ces lésions peuvent êtres présentes sur une même matrice à la fois.

Les fréquences avec lesquelles ces lésions ont été isolées sur les matrices examinées sont regroupées dans le tableau 2:

Tableau 2. Nombre et fréquences d'utéri présentant les différentes lésions macroscopiques.

Lésions		Nombre	%
Infections utérines		19	76,47
Rupture utérine		4
Prolapsus		2
Cervicite		1
Anomalies congénitales	Utérus unicorne	1	8,82
	Malformation cervicale	1
	Free martinisme (utérus atrophié)	1

Le tableau 2 montre que les lésions utérines ont été relevées avec une fréquence assez élevée (76,47%) tandis que les anomalies congénitales présentent une fréquence bien plus basse (8,82%) (P<0.0001). Les infections utérines représentent les pathologies les plus fréquentes au niveau de l'utérus avec un taux de 55,88% (19 cas), suivies par la rupture utérine avec 11,77% (4 cas), le prolapsus avec un taux de 5,88% (2 cas) et enfin la cervicite avec le taux le plus bas qui est de 2,94% (1 cas).

Les anomalies congénitales ont été relevées avec un taux de 8,82%. Elles sont réparties avec un même taux de 2,94% sur : 1 cas d'utérus unicorne, 1 cas de malformation cervicale et 1 cas de Free Martinisme.

Figure 10. Aspect macroscopique d'une infection utérine (Photos Figure 11. Cervicite (Photo

Figure 12. Prolapsus utérin (Photo personnelle). 1.2. Anomalies relevées sur les oviductes

Dans le tableau suivant, on a noté les différentes lésions observées sur les oviductes examinés :

Lésion	Nombre*	Pourcentage
Salpingite	3	8.82%
Kyste para-ovarien (Kyste de l'oviducte)	1	2,92%

La salpingite a été relevée avec un taux plus élevé (8.82%) par rapport au kyste para ovarien, lequel a un taux de (2,92%) (P<0.05).

Figure 14. Kyste para-ovarien (Photo personnelle). 1.3. Anomalies relevées sur les ovaires

L'examen méticuleux des ovaires des 269 appareils génitaux de notre étude a révélé la présence d'un seul cas d'ovaire kystique avec un taux de (2,94%), d'un diamètre dépassant 17mm.

Figure 15. Ovaire portant un corps jaune et des follicules (Photos personnelles).

Dans notre étude, nous avons effectué l'examen histologique au microscope optique des lames obtenues après préparation des échantillons. Après examen, nous avons pu reconnaitre les structures normales des parenchymes des différentes parties constituant la matrice (ovaires, oviductes, utérus et cervix). Comme nous avons également pu observer certaines structures pathologiques de ces tissus et les comparer avec les tissus sains.

Coupe de l'utérus montrant : (a) Muqueuses utérines normales (G×400), (b) destruction complète de la muqueuse utérine (c) Infection utérine avec dégénérescence des glandes et vascularite (G×400), (d) infection utérine avec un épithélium de surface abrasé par endroits, infiltré de cellules inflammatoires avec une coloration jaune par endroits indiquant une infiltration par le pus (G×100), (e) infection utérine chronique avec destruction des glandes (G×400), (f) infection utérine chronique avec une destruction massive de la muqueuse utérine et les glandes presque non reconnaissables (G×400).

Figure 16. Coupes d'utéri montrant différents aspects d'infections utérines
(photos personnelles).

Une muqueuse utérine saine (Figure 16a) ne montre aucun signe d'inflammation (présence de cellules inflammatoires, fibrose, congestion). Les glandes et les vaisseaux sanguins sont bien délimités et bien visibles avec une lumière claire. Lors d'une infection utérine (Figures 16b, 16c, 16d, 16e et 16f) et en fonction du stade de l'infection, la muqueuse utérine est envahie par les cellules inflammatoires qui entourent les glandes. Ces dernières, commencent à dégénérer et finissent par ne plus être visibles à des stades très avancés de l'infection (stades chroniques). Au stade chronique de l'inflammation, on décèle également des traces de fibrose. L'épithélium de surface apparait abrasé dans quelques zones et semble coloré en jaune par endroits, ce qui est un signe d'une infiltration par le pus (Figure 16d).

Coupes d'ovaires montrant : (a) (G×100), (b) (G×400) des parties de follicules ovariens normaux avec des couches multiples de la granulosa, (c) corps jaune normal avec les grandes et les petites cellules lutéales entremêlées et d'aspect compact (G×400), (d) kyste ovarien folliculaire.

Figure 17. Coupe d'ovaires montrant la structure normale du follicule et du corps jaune

Sur les figure 17a et 17b, nous pouvons observer deux coupes de follicules ovariens normaux contenant du liquide folliculaire et présentant une granulosa compacte en plusieurs couches séparées de la thèque interne par une lame basale, ainsi qu'une thèque externe vers la périphérie du follicule.

En revanche sur la figure 17d, à la différence du follicule normal, le kyste ovarien folliculaire est un follicule qui n'a pas ovulé et qui présente une disparition graduelle des couches de la granulosa à des stades avancés. La lame basale disparait progressivement et les cellules de la granulosa se mêlent aux cellules de la thèque interne. Ces dernières sont gonflées, et perdent leur arrangement caractéristique parallèle à la lame basale.

Sur la figure 17c, on peut observer la coupe d'un corps jaune normal présentant des grandes et des petites cellules lutéales entremêlées et serrées les unes aux autres.

Coupes de cervix atteints d'une cervicite : (a) cervicite (G×40), (b),(c) cervicite avec présence de cellules inflammatoires, absence d'épithélium de surface et absence de glandes (G×400).

Les figures 18a, 18b et 18c présentent des coupes au niveau du col de l'utérus. On constate que ces cols sont atteints d'une cervicite en raison d'une forte infiltration de la muqueuse par les cellules inflammatoires (cellules en violet foncé), l'épithélium de surface est quasi absent et les glandes sont dégénérées.

Figure 19. Coupe au niveau d'un oviducte normal (19a) et pathologique (19b) (Photos

La figure 19a montre l'aspect microscopique d'un oviducte normal et la figure 19b celui d'un oviducte pathologique.

L'objectif de l'étude macroscopique effectuée sur les matrices de brebis récupérées au niveau de l'abattoir des Eucalyptus à Alger est la mise en évidence d'anomalies macroscopiques de l'appareil génital qui pourrait être à l'origine de l'infertilité chez la brebis. Après cette étude, nous avons pu mettre en évidence la fréquence des anomalies macroscopiques dans les matrices des brebis abattues au niveau de cet abattoir ainsi que la fréquence des femelles gestantes et ce sur une durée limitée de 3 mois.

Sur 269 matrices examinées, 26 étaient gravides soit 9.67%. Les foetus étaient tous âgés de moins de 2 mois. Ceci ne peut être attribué à un manque de sérieux des vétérinaires de l'abattoir des Eucalyptus mais plutôt à la difficulté en terme de temps et de matériel de poser un diagnostic de gestation dans un abattoir lorsque la brebis est en début de gestation.

La majeure partie des matrices examinées étaient d'apparence normale. Toutefois, une fréquence de 14% d'anomalie a été observée que ce soit sur l'utérus, l'oviducte ou les ovaires. Cette fréquence est plus faible par rapport à celle rapportée par Niar (2005) chez la race Rembi qui est 25%. Elle est également faible par rapport à celle rapportée par Khammar et al. (2013) chez la race El Awrassi qui est de 22.86% et très faible à celle rapportée par Moghaddam et Gooraninejad (2007) qui a atteint un taux de 92%. La fréquence basse d'anomalies que nous avons relevées pourrait être due soit à la taille réduite de notre échantillon soit à une amélioration des conditions d'élevage dans les fermes.

La fréquence des anomalies congénitales est de 8.82%. Trois cas seulement de malformation ont été rencontrés à savoir :

Pour le free martinisme, il est fréquemment décrit chez les bovins. En revanche, il est considéré comme rare chez les ovins, la fréquence habituellement indiquée est de l'ordre de 1% (Marcum, 1974). Dans notre étude, sa fréquence est de 2.94%.

Dans notre étude, les pathologies utérines ont été observées avec une proportion assez forte de 76,47%. Cette proportion est bien plus élevée comparée à celle rapportée par Moghaddam et Gooraninejad (2007) qui est de 20,1%, et elle très proche de celle rapportée par Abdul et al. (2007) qui est de 70%.

En ce basant sur l'existence de divers signes d'inflammation au niveau des utéri comme la congestion, la présence d'un contenu anormal au niveau des cornes utérines, la présence de taches hémorragiques ou toute autre coloration anormale, nous avons pu mettre en place un diagnostic d'infections utérines assez fiable mais sans différencier entre endométrite et métrite.

L'infection utérine a été notée dans cette étude sur 19 tractus, soit un taux de 55,88%. Histologiquement, les muqueuses utérines étaient à différents stades de l'inflammation : certaines matrices n'étaient qu'au début de l'inflammation avec une muqueuse envahie par les cellules inflammatoires, des glandes en début de dégénérescence. On a également noté des traces d'infiltration par le pus. D'autres utéri présentaient des muqueuses complètement détruites, à un stade chronique de l'inflammation, où les glandes sont à peine reconnaissables

au microscope avec des traces de fibrose. Ces résultats sont souvent la conséquence d'une mauvaise hygiène durant la parturition et le post-partum.

Quatre (04) cas de rupture utérine ont également été observés avec un taux de 11,77%, deux (2) prolapsus utérins avec un taux de 5,88% et enfin, un (01) cas de cervicite (2,94%). Dans certains cas, ces pathologies en été rencontrées en concomitance avec l'infection utérine. Ceci s'explique par le fait que les agents infectieux du vagin peuvent passer dans le cervix et l'utérus et provoquer une cervicite et une endométrite.

L'examen minutieux des ovaires des 269 appareils génitaux des brebis faisant l'objet de notre étude a révélé la présence d'un seul cas de kyste ovarien. Ce dernier est parmi les lésions les plus faiblement notées dans notre travail avec une fréquence de 2,94%, un taux quasi similaire à celui signalé par Alostra et al. (1998), Smith et al. (1999) et Dawood et al. (2010) qui est de 0,19 à 2% ainsi que celui de Moghaddam et Gooraninejad (2007) qui est de 0,01 à 2,4%. Gustafsson et Holmberg (1966) ont, quant à eux, rapporté une fréquence de 0,6% de kystes ovariens suite à l'examen post-mortem de 502 organes génitaux de l'espèce ovine.

On constate donc une cohérence entre les résultats signalés dans notre travail et les résultats des études effectués auparavant retrouvés dans la bibliographie. Toutefois, on peut justifier la subtile divergence qui a pu être notée à divers facteurs épidémiologiques qui diffèrent d'une région à une autre, le nombre d'animaux constituant la population étudiée (importance de l'échantillon) ainsi que le moment de la réalisation de l'étude et les critères de diagnostic variables choisis par les différents auteurs.

Par contre, si l'on compare la fréquence de notre étude effectuée sur l'espèce ovine par rapport à celle notée chez l'espèce bovine, on trouvera que la fréquence des anomalies du tractus génital en général chez les bovins est bien plus élevée avec un taux de 60,20% (Mimoune, 2016).

Idem pour la fréquence plus particulièrement des anomalies ovariennes chez l'espèce bovine, qui est tout aussi élevée avec une fréquence de 18,2% (Mimoune, 2016) par rapport à celle de la brebis avec une fréquence de 10%.

On constate donc que la pathologie du kyste ovarien est caractéristique de l'espèce bovine, et plus rarement rencontrée chez la brebis.

L'observation microscopique des coupes d'ovaire nous a permis de voir la structure normale du follicule ovarien et celle du corps jaune et de les différentier d'un kyste ovarien. En effet, le kyste ovarien chez la brebis se définie comme toute structure folliculaire anovulatoire dépassant 17mm de diamètre, persistant sur l'ovaire au moins 10 jours en absence d'une structure lutéale. Il est caractérisé par une disparition graduelle des cellules de la granulosa, sachant que les cellules restantes préservent leur apparence morphologique. Les cellules thécales sont hypertrophiées, perdant leur arrangement caractéristique parallèle à la lame basale (Mimoune, 2016). A travers l'examen histologique, nous avons pu connaitre le type qui est folliculaire.

La fréquence des anomalies de l'oviducte est de 11.76%. Trois cas de salpingite ont été rencontrés soit 8.82% des anomalies. Il est relativement élevé par rapport au taux de salpingites annoncé par Benchaïb (2007) qui est de 0.41% chez la brebis. Ces cas sont généralement associés avec des endométrites ce qui peut témoigner de l'infection ascendante de l'oviducte.

Un cas de kyste para ovarien a également été repéré au niveau de l'oviducte avec un taux de 2.92%.

Les kystes para ovariens sont des structures kystiques qui se produisent au niveau du ligament large près des ovaires et de l'utérus. Ces kystes peuvent causer par compression, une sténose de la lumière de l'oviducte quand ils sont très larges (Mimoune, 2016).

Pathologies de l’appareil génital chez la brebis

Chapitre II. Pathologies du tractus génital de la brebis