2. Préparation des touffes de Gracilaria
gracilis
Des touffes de Gracilaria gracilis en bon état
ont été collectées dans les peuplements naturels. La
collecte des touffes été effectuée manuellement au mois de
Mars 2019 de la lagune de Bizerte (37°22'33"N ; 9°91'63"E). Le site
de collecte est aussi celle de culture. La zone de collecte est
caractérisée par une profondeur variant de 0.5 à 1 m, une
salinité de 35 psu et une température de 17°C. Les algues
ont été transportées dans des bacs en plastiques
fermés pour éviter le séchage des thalles et de conserver
un environnement similaire à celui de la lagune afin de minimiser le
stress des thalles. Par la suite, les échantillons ont été
entreposés dans un bac contenant de l'eau de mer au laboratoire de
l'INSTM (Annexe 1.A), par la suite, débarrassées de leurs
éventuels épiphytes (Ulves, etc.) et épifaunes
(anémones, polychètes, étoiles de mer, mollusques,
amphipodes et isopodes) (Annexes 1.B et 2). Elles ont été
rincées à l'eau de mer et acclimatées pendant une semaine
dans des bacs en plastiques remplis avec de l'eau de mer ayant des
paramètres physicochimiques (O2 dissous, température et
salinité) similaires à celles de la lagune de Bizerte au moment
de la collecte. En prenant soin de bien immergés les thalles. Des
touffes de G. gracilis en bon état (Annexe1.C) ont
été sélectionnées ; c'est-à-dire ayant des
stades de développement similaires, de mêmes couleurs
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et ayant des longueurs et des ramifications similaires avec le
même degré de pigmentation. Les thalles blanchâtres ont
été éliminés. Par la suite, elles ont
été bien débarrassées de leurs épiphytes et
épifaune.
3. Modalité de culture
Les touffes nettoyées, triées et
sélectionnées (Annexe 1.D) ont été essuyées
par un papier absorbant avant d'être pesées à l'aide d'une
balance ayant une précision de 0,1 g ; 96 touffes de 100 #177; 2 g ont
été attachées sur 3 cordes (C1, et C3) par un fil
tressé (Annexe 3). Par la suite, les cordes ont été
immergées dans des bacs en plastique contenant 2 m3 d'eau de
mer filtrée et enrichie avec de l'ammonium et du nitrate en attendant
leur transfert vers le site de culture. Un suivi journalier des
paramètres physico-chimiques (oxygène dissous, température
et salinité) a été effectué quotidiennement pour
chaque bac et suivi un renouvèlement total de la quantité d'eau
de chaque bac suivi d'un ajout de 70 mg/l du nitrate et de 32 mg/l d'ammonium.
Les bacs ont été munis par un système d'aération
permettant, aussi, de faciliter l'absorption des éléments
nutritifs grâce à un brassage continu (Annexe 4).
Pour le mode de culture, nous avons opté pour
l'utilisation d'un cordage tendu sur le substrat entre trois piquets de fer
(Figure 8). Les cordes restent à 50 cm de la surface de l'eau même
à marée basse. Chaque touffe constitue une unité
expérimentale. La distance entre les touffes est de 50 cm et celle entre
les rangées de cordages est de 75 cm. Pour cette expérimentation,
un entretien de culture a été réalisé une à
deux fois par semaine. Ce suivi a pour objectif de contrôler la
résistance mécanique des systèmes de culture, notamment au
niveau des fixations des cordes sur les piquets en fer. De même, le suivi
permet d'enlever les algues épiphytes, ce qui rend facile l'étude
de la relation de l'algue et sa faune associée uniquement. Au cours de
la période de culture qui est de 90 jours (Avril, Mai et Juin), trois
prélèvements ont été effectuées, soit une
corde par prélèvement (Figure 9. A). Cependant, le
prélèvement des touffes a été effectué
à l'aide de sacs en plastiques afin d'éviter l'effritement et
faciliter leur séparation. Les touffes d'algues ont été
coupées (Figure 9. B), retirées de la corde et placées
avec leurs éventuels faunes dans des sacs en plastique (une touffe par
sac) pour mesurer ensuite la masse de chaque touffe, évaluer le taux de
croissance de croissance spécifique, ensuite faire l'analyse
biochimique au laboratoire. Ainsi que, pour faire le tri et prélever
toute la faune associée à l'algue. Un suivi journalier de la
température a été effectué in situ durant
toute la période de culture, à l'aide d'une sonde
multiparamétrique. Alors que pour la mesure de la salinité (psu)
et le dosage des nutriments, ont été effectués par
quinzaine
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(Figure 9. C). Le poids final de chaque touffe a
été déterminée et le taux de croissance
spécifique (TCS) est calculé selon la formule suivante (Glenn
et al., 1998):
TCS (%) = 100 ln ( poids final
poids initial) /Nombre de jours de culture
Enfin, 20 g de chaque touffe de G. gracilis ont
été prélevés, coupées,
numérotés et conservés à - 20°C pour faire les
analyses (Annexe 5). Le reste des touffes ont été stockés
dans les sacs en plastique pour étudier la faune associée.
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