Résultats
1. Croissance - Mortalités
Les résultats des données biométriques
obtenues en baie de Quiberon permettent d'évaluer la croissance et la
mortalité des huîtres pour les différentes stations (Figure
8).
 
Figure 8 : suivi des mortalités et de la
croissance sur les sites de la baie de Quiberon, S : huîtres sur le
sédiment, P : huîtres en poche surélevées -
Résultats préliminaires Riscosol, Mazurié et al.
2009
La croissance a principalement lieu entre février et
juin. Il n'y a pas de différences notables de croissance entre les trois
stations (2, 4 et 5). Les stations 2 et 5 sont caractérisées par
des mortalités peu élevées contrairement à la
station 4 où la totalité des huîtres est morte en octobre
2008. Pour cette dernière station, des huîtres du même lot
mais élevées sur l'estran depuis février 2008 ont
été resemées en février 2009 afin de continuer le
suivi. On note que le gain de poids des huîtres élevées sur
l'estran est presque trois fois plus faible que celles élevées
dans la baie en eau profonde. En mars 2009, les huîtres de la station 2
ont un poids sec moyen de 1.41g tandis que les huîtres du même
âge issues de l'estran font 0.53g de poids sec en moyenne (tableau annexe
2).
2. Métabolisme
énergétique
a) Réserves énergétiques
 
Figure 9 : Taux de lipides totaux et de glucides totaux
en %/poids sec, Moyenne +/- Ecart-type, n=3
Les taux de lipides des huîtres des trois sites
étudiés sont plus élevés en juillet qu'aux autres
dates (Anova à deux facteurs, P<0.05). Aucune différence
significative entre stations n'est observée. Toutes les valeurs de
glucides totaux sont équivalentes sur le plan statistique
exceptée celle de la station 04 en mars (Anova à un facteur pour
le mois de mars, P<0.05).
b) Activités enzymatiques Riscosol
Les résultats sont exprimés en Unité
enzymatique par mg de poids de chair fraiche ou par mg de protéines
solubles.
 
Figure 10 : Activité Pyruvate kinase et
Phosphoénolpyruvate Carboxykinase sur les échantillons Riscosol
d'huîtres entières, Moyenne +/- Ecart-type, n=3
Les variations de l'activité PK sont statistiquement
différentes dans le temps (Anova à deux facteurs P<0.01).
Aucun effet station n'est observé. Il n'y a pas de différences
statistiques entre les différents points pour l'activité PEPCK
(Anova à 2 facteurs, P<0.05) hormis le point de mars pour la station
04 (Anova 1 facteur en mars, P<0.05).
 
Figure 11 : Activité Citrate Synthèse et
Cytochrome C oxydase sur les échantillons Riscosol d'huîtres
entières, Moyenne +/- Ecart-type, n=3
Comme la PK, les variations de l'activité Citrate
Synthase sont essentiellement expliquées par les variations
saisonnières (Anova à deux facteurs, P<0.01), aucun effet
station n'est observé. Concernant la CCO, les variations de
l'activité sont uniquement expliquées par le temps et aucun effet
station n'est observé par l'analyse statistique. L'activité CCO
de la station 4 en septembre est différente des autres stations à
ce temps mais avec un intervalle de confiance plus faible (92% - méthode
LSD).
c) Manipulation Hypoxie
 
Figure 12 : Activité Pyruvate Kinase et
Phosphoénolpyruvate Carboxykinase en conditions contrôlées
de normoxie et d'hypoxie (~25% de la saturation en O2), Moyenne +/-
Ecart-type,* différence significative entre Normoxie et Hypoxie
La mise en conditions hypoxiques des huîtres provoque
une baisse de l'activité de la PK et PEPCK. Cependant la
différence n'est statistiquement significative que pour le temps T2
jours pour la PK et T10 jours pour la PEPCK.
 
Figure 13 : Activité Citrate Synthèse et
Cytochrome C oxydase en conditions contrôlées de normoxie et
d'hypoxie, Moyenne +/- Ecart-type,* différence significative
On observe une activité Citrate Synthase plus
importante en condition hypoxique particulièrement pour le temps
T10jours (P<0.05). Aucune différence significative n'a
été mise en évidence concernant l'activité CCO
entre condition d'hypoxie et de normoxie.
3. Métabolisme oxydatif
 
Figure 14 : Activité Superoxide Dismutase et
Catalase sur les échantillons Riscosol d'huîtres entières,
Moyenne +/- Ecart-type, n=3
Pour l'activité Superoxide Dismutase, l'analyse de
variance ne révèle aucune différence statistique quelque
soit le facteur. Cependant, pour le mois de mars, une ANOVA à un facteur
permet de différencier les activités SOD entre la station 4 et
les stations 2 et 5(P<0.05). L'activité Catalase est
caractérisée par un effet station significatif (P<0.001),
ainsi qu'un effet du à la saison (P<0.05) ; (ANOVA à deux
facteurs).
 
Figure 15 : Activité Glutathion Réductase
et dosage DPPH sur les échantillons Riscosol d'huîtres
entières Moyenne +/- Ecart-type, n=3
Les variations de l'activité GR sont statistiquement
différentes au cours du temps (Anova à deux facteurs P<0.001).
Pour cette enzyme, l'activité GR de la station 5 semble plus haute que
celle de la station 2, en particulier lors du mois de septembre, mais cette
différence n'est pas significative au seuil de 5% (P=0.067). Les
variations de l'activité DPPH sont fortement expliquées par
l'effet temps (P<0.001) mais aucune différence statistique ne permet
de déceler des variations entre stations.
 
Figure 16 : Activité Superoxide Dismutase et
Catalase en condition contrôlée d'hypoxie, Moyenne +/-
Ecart-type,* différence significative entre Normoxie et Hypoxie
En condition d'hypoxie l'activité SOD est plus faible
par rapport à la normoxie de façon significative à T10
jours(P<0.05) et presque significative à T20 jours (P=0.051). Tout
comme comme les activitées PK et PEPCK, on observe une augmentation de
l'activité SOD au cours de l'expérience pour les individus
témoin (normoxie). L'activité Catalase ne varie pas avec les
conditions hypoxiques.
Figure 17 : Activité Glutathion Réductase
en condition contrôlée d'hypoxie, Moyenne +/- Ecart-type,*
différence significative entre Normoxie et Hypoxie
L'activité Glutathion Réductase est
significativement réduite en condition d'hypoxie, la différence
est significative pour le point T20 jours (P<0.05) et confirme donc la
tendance observée aux temps précédents.
4.
Corrélations d'activités enzymatiques Risocosol
 
Figure 18 : Corrélation linéaire entre les
données de CS et CCO (par réplicats biologiques) et
corrélation linéaire entre les activités PK et GR (par
point de mesure).
Une corrélation est observée entre les
activités de CS et de CCO ainsi qu'entre les activités de PK et
de GR. Les coefficients de corrélation R² sont supérieurs
à 0.5.
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