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Production de domaines recombinants PRODH en vue de l'analyse structurale & Caractérisation de la région 51-160 de la protéine KIN17 humaine par RMN et Modélisation Moléculaire

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par Ludovic Carlier
Université de Rouen - Doctorat de biologie structurale 2006
  

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2) Production des 4 domaines PRODH

2.1) Bilan du criblage des conditions d'expression en microplaques

Chacun des gènes encodant les protéines PROentier, PROcatal, PROter, et PROinser a

été cloné dans 7 plasmides d'expression différents par recombinaison homologue. Les domaines PROcatal et PROentier ont été exprimés dans 28 conditions expérimentales différentes (7 partenaires de fusion, 2 souches d'expression, et 2 températures), contre 42 conditions pour les domaines PROter et PROinser (7 partenaires, 3 souches, et 2 températures). Au total, 140 cultures ont été réalisées. Pour chacune d'elles, les fractions contenant les protéines solubles et insolubles ont été déposées sur gel SDS-PAGE. L'analyse

de l'expression des protéines de fusion à partir de l'interprétation des profils électrophorétiques des gels SDS-PAGE a été reportée, domaine par domaine, dans un tableau récapitulatif afin de déterminer les meilleures conditions d'expression et de solubilité pour chacune des 4 protéines.

Par souci de rendre fluide la lecture de ce manuscrit, je me contenterai de présenter dans ce paragraphe un bilan du criblage des conditions d'expression des 4 protéines PRODH

en microplaques. Le détail des résultats, à savoir l'ensemble des gels SDS-PAGE et leur analyse, est présenté en annexe. Les matériels et méthodes, spécifiques au clonage et au criblage des conditions d'expression des 4 protéines PRODH dans le cadre du programme

3PM, sont également reportés en annexe.

De manière générale, les résultats du criblage des conditions d'expression montrent que la nature du partenaire de fusion est essentielle sur l'expression et la solubilité des protéines hétérologues PRODH. Ainsi, seuls les partenaires MBP et NusA permettent d'obtenir des taux suffisants de protéine soluble, contrairement aux autres partenaires, et notamment à l'étiquette 6xHis, qui conduisent à la formation quasiment exclusive de corps d'inclusion. Si la souche bactérienne et la température d'expression ne semblent pas influencer de manière directe la solubilité des protéines hétérologues PRODH, les criblages

de ces deux paramètres n'ont pas été pour autant inutiles. En effet, nous avons constaté que

l'expression des domaines PRODH, en fusion avec les meilleurs partenaires, et en souche

Rosetta cultivée à 20°C, permet dans la plupart des cas d'augmenter de manière significative

les niveaux d'expression de protéine soluble.

Le criblage des conditions d'expression en microplaques du programme 3PM a donc rempli son objectif. En effet, après avoir testé en moyenne près d'une trentaine de conditions

par domaine PRODH, nous avons pu déterminer, pour chaque domaine, au moins une condition qui permette une expression suffisante de protéines de fusion solubles (Tableau 4.1). Cependant, cette première étape a également mis en évidence le caractère toxique du domaine PROter qui laisse présager la rencontre de difficultés lors de sa

production à grande échelle.

domaine

partenaire de fusion

Souche d'expression

Température d'expression

PROcatal

PROentier

PROter

PROinser

MBP

MBP

NusA

MBP

Rosetta

20°C

Tableau 4.1 : Récapitulatif de la meilleure condition d'expression obtenue pour chaque

domaine PRODH à l'issu du criblage en microplaques.

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