WOW !! MUCH LOVE ! SO WORLD PEACE !
Fond bitcoin pour l'amélioration du site: 1memzGeKS7CB3ECNkzSn2qHwxU6NZoJ8o
  Dogecoin (tips/pourboires): DCLoo9Dd4qECqpMLurdgGnaoqbftj16Nvp


Home | Publier un mémoire | Une page au hasard

 > 

Diagnostic précoce du VIH-1 chez les enfants nés des mères séropostives par RT/PCR au laboratoire de virologie du centre Muraz.


par Jean-jacques Prince YANGALBE JIANSERBE
Université catholique de l'Afrique de l'ouest - Licence Sciences Biologiques Appliquées  2020
  

précédent sommaire

Bitcoin is a swarm of cyber hornets serving the goddess of wisdom, feeding on the fire of truth, exponentially growing ever smarter, faster, and stronger behind a wall of encrypted energy

ANNEXES

Annexe 1 :Fiche de demande d'examen PCR

Région : ........................................ District sanitaire :..................... Formation Sanitaire :.....................Demandeur (Nom/Prénoms):..................

Renseignements sur l'enfant :

Nom et prénom de l'enfant : ......................................................

Date de naissance : /_____/_____/_________ Age : .........Sexe : M /__/ F /__/

Porte d'entrée : PTME/_ / CREN :/_ / CC :/_ / HOSPITALISATION : /_ / AUTRES : /_ / (préciser) ..................................

Code de l'enfant : .............................. (si PTME, code PTME suivi de BB) ProphylaxieARV :oui /__/ non /__/ Si oui NVP /__/ ou AZT /__/

Mode d'alimentation : Allaitement sécurisé /__ / Substituts du lait /__ / Mixte /__/ Enfant sevré : Oui /__/ Non /__/ date : (.................................)

Renseignements sur la mère :

Vivante : oui /__/ non /__/ Age :.....Gestité:.........Parité :...Contacts :..........

Mode d'accouchement : Voie Basse /__/ Césarienne /__/

Code PTME de la mère : .............

Date de découverte de la séropositivité : /_______/_______/_________

Type de VIH : VIH-1 /__ / VIH-2 /__ / VIH-1+VIH-2 /__/ Inconnu /__/ Traitement ARV : oui /__/ non /__/

Date de début du traitement/_____/____/_______

Protocole d'ARV : ...................................

Prophylaxie ARV : oui /__/ non /__/ Date de début du traitement /__/___/___

Combinaison ARV :

Prélèvement : Date /_______/_______/_________ Heure :............

Préleveur (Nom/Prénoms) :..........................................Signature :

Réception au Labo PCR : Date /____/____/_______ Nom .........................

Signature :

Annexe 2 :mode opératoire de CAP/CTM

La procédure de travail est automatisée à l'aide de l'appareil COBAS®AmpliPrep et de l'analyseur COBAS® TaqMan® ou COBAS® TaqMan® 48. En suivant le protocole fournis par le fabriquant, nous avons procéder comme suit :

v Démarrage de l'automate

· Allumer le CTM et le CAP ;

· Allumer l'ordinateur ;

· Ouvrir l'Amplilink (User ID : .......... Et Password : ............)

· Vérifier le niveau du réactif de lavage et les indications de maintenance du CAP et du CTM ;

· Remplacer le réactif de lavage et exécuter la maintenance si nécessaire.

v Chargement des réactifs

· Sortir les réactifs du Réfrigérateur et les charger immédiatement ;

· Charger la Cassettes Réactifs CS1 dans un portoir Réactif et insérer dans la position A ;

· Charger les Cassettes Réactifs CS2, CS3 et CS4 dans un autre portoir Réactif et insérer le dans une des positions B à E.

v Traitement des échantillons pour le diagnostic sur DBS :

· Introduire les cercles dans les S-tubes ouverts préalablement déposés sur le thermomixer ;

· Refermer les S-tubes ;

· Ouvrir les S-tubes individuellement, introduire 1100 ul de diluent et refermer immédiatement ;

· Prendre 2 S-Tubes et introduire dans le 1er tube 1000 ul de témoin négatif et dans le 2ème 1000 ul de témoin Positif (Vortexer 20 seconde les témoins avant l'utilisation) ;

· Incuber les S-tubes contenant contrôles et échantillons dans le thermomixer à 1000 rpm à une température de 56°C pendant 10 min.

v Demande pour chaque échantillon et contrôle

· Pour créer les demandes des échantillons à analyser, cliquer sur l'icône de demande d'examens ensuite sur Sample. Pour chaque échantillon cliquer New puis Order et entrer l'identité du patient puis faire OK. Sélectionner la liste et choisir le test. A la fin cliquer sur SAVE ;

· Pour saisir le Rack des échantillons du test à réaliser, cliquer sur Sample rack puis New, noter le numéro du portoir échantillon dans la case Sample rack ID et identifier le RUN dans Bach ID ;

· Cliquer sur le test à faire au bas de la feuille ;

· Cliquer dans la case S pour sélectionner le NC ;

· Déplacer le curseur sur les cases :

ü LPC et HPC, pour la charge virale plasmatique suivantes et procéder de même pour le (pour les tests quantitatifs)

ü PC, pour le diagnostic moléculaire ;

· Pour les échantillons, sur la ligne en dessous des contrôles, dans la case Sample ID faire double clique, une liste apparait. Choisir l'identité du premier échantillon et faire OK ;

· Procéder de la même manière pour les suivants. On peut sélectionner toute la liste et faire OK si les identités sont dans l'ordre de la liste de paillasse ;

· Cliquer sur Save.

v Chargement des consommables et échantillons

· Insérer les SPU dans le portoir des SPU. Appuyer de part et d'autre pour bien les insérer ;

· Charger le portoir SPU dans une des positions J, K ou L ;

· Charger les K-Tips de M à P ;

· Charger le portoir Echantillon dans une des positions F, G

ü Association K-Carrier au portoir K-carrier

· Placer le K-carrier sur le portoir ;

· Cliquer sur le System puis sur Sample ;

· Scanner le Barcode du portoir du K-carrier (une fenêtre apparait) ;

· Scanner immédiatement le Barcode du K-Carrier (délai 5 secondes) ;

· Cliquer sur OK (délai 5 secondes) ;

· Insérer le portoir K-carrier dans une des positions de M à P.

NB : Créer toujours le Rack échantillon et le charger avant d'associer un K-carrier

v Lancement du COBAS AmpliPrep

· Vérifier le chargement des cassettes, échantillon et system ;

· Cliquer sur Start (sur l'ordinateur) ;

· Noter le temps auquel l'extraction prend fin ;

· A la fin sortir le K-carrier du CAP ;

· Décontaminer le CAP en cliquant faire service all ;

· Ensuite faire light décontamination (durée = 30 secondes) ;

· Eteindre le CAP ou faire la maintenance journalière.

v Lancement du COBAS TaqMan

· Sélectionner TaqMan dans le system ;

· Cliquer Open ;

· A l'aide du K-carrier transporté déposer le K-carrier dans le thermocycler et fermer le couvercle ;

· Cliquer sur Start pour démarrer l'amplification et la détection ;

· A la fin visualiser les résultats ;

· Sortir le K-carrier pour valider les résultats.

NB : Pour réutiliser le K-carrier et Sample Rack venant du Run précédent il faut obligatoirement valider les résultats.

Matériel et consommables nécessaires à l'Appareil CAP /CTM : Kit contenant code barre clip pour les contrôles ; bidon de tampon de lavage ; Tubes SPU ; K-tubes ; K-tips ; K -carrier + code barre ; Code Barre clip pour échantillons ;portoir des S-tube et K-tube + Code Barre ; portoir des tubes SPU ;portoir réactifs + Code Barre ;portoir k-carrier + Code Barre ;Porteur K-carrier ; Porteur K-tube ; lecteur code barre.

précédent sommaire






Bitcoin is a swarm of cyber hornets serving the goddess of wisdom, feeding on the fire of truth, exponentially growing ever smarter, faster, and stronger behind a wall of encrypted energy








"Là où il n'y a pas d'espoir, nous devons l'inventer"   Albert Camus