Facteurs limitant le traitement du matériel réutilisable en anesthésie au CMA de bBogodogo (Burkina Faso).

2.1.3. Les modes de contamination par l'anesthésie

La contamination est l'introduction ou la présence de micro-organismes indésirables dans un milieu, dans le corps humain.^14(*)

L'utilisation du matériel contaminé, constitue un grand risque aussi bien pour les malades que pour le personnel de santé.

Les techniques d'anesthésie mettent en contact du matériel avec les voies aériennes, les voies intrathécales et les voies veineuses des patients. Elles peuvent apporter des germes par les pratiques suivantes :

· Utilisation d'un matériel mal désinfecté ou non stérilisé tel que le masque facial, le laryngoscope, les accessoires, les moniteurs... 

· Réalisation d'actes contaminants sans respecter les principes de la prévention des infections.

· Adoption d'un comportement ou d'une organisation du travail inadéquats : déplacements fréquents de salle en salle, mauvaise planification du programme opératoire.

· Utilisation de la même blouse pour l'intervention de plusieurs patients alors qu'elle doit être changée quotidiennement et chaque fois qu'elle est souillée.

Cette situation peut être aggravée par les mouvements fréquents des anesthésistes entre le bloc opératoire et les autres services comme les services des post-opérés, la salle de réveil ou la maternité sans changement de blouses ou sans précautions particulières.

2.1.4. Le traitement du matériel réutilisable

2.1.4.1 Objectifs et procédures du traitement du matériel réutilisable

v Objectifs

Le traitement du matériel réutilisable garantit la sécurité pour les personnes soignées et le personnel même en évitant la transmission croisée des infections

v Les procédures du traitement du matériel

On distingue trois procédures d'entretien selon la catégorie de matériel :

· la procédure P1 pour le matériel non critique,

· la procédure P2 pour le matériel semi-critique s'il ne peut subir la procédure P3 qui est à appliquer préférentiellement,

· la procédure P3 pour le matériel critique s'il est réutilisable (le matériel stérile à usage unique est non réutilisable).

Chaque procédure comporte trois étapes d'importance égale qui concourent à l'innocuité du matériel réutilisable.

Ø Etape 1 : la décontamination du matériel,

Ø Etape 2 : le nettoyage et rinçage du matériel,

Ø Etape 3 : la stérilisation ou la désinfection à haut niveau (DHN).

Schéma n°1 : le principe général du traitement du matériel réutilisable ^15(*)

Matériel souillé

Catégories Non critique Semi critique Critique

non stérilisable semi-critique

stérilisable

Procédure P1 P2 P3

Etape 1 Décontamination Décontamination Décontamination

Etape 2 Nettoyage Nettoyage Nettoyage

Rinçage Rinçage Rinçage

Séchage Séchage Séchage

Manuels ou manuels ou manuels ou

automatisés automatisés automatisés

Etape 3 Usage propre Désinfection par Stérilisation

immersion

Matériel utilisable

Pour chaque procédure, il faut respecter les 3 étapes. Le choix de la procédure est avant tout fonction de la catégorie de matériel.

2.1.4.1. Etape 1 : La décontamination ou pré-désinfection

Selon AFNOR (Association Française de Normalisation), c'est une opération au résultat momentané permettant d'éliminer, de tuer, ou d'inhiber les micro-organismes indésirables en fonction des objectifs fixés. Le résultat de cette opération est limité aux micro-organismes présents au moment de l'opération.^16(*)

La SFHH (Société Française d'Hygiène Hospitalière) recommande le terme de pré-désinfection pour l'étape préalable à la désinfection ou à la stérilisation. La pré-désinfection est une opération utilisant des détergents contenant au moins un principe actif reconnu pour ses propriétés bactéricides, fongicides, sporicides ou virucides (SFHH). La pré-désinfection constitue une étape préalable à la désinfection ou à la stérilisation^17(*).

C'est la première étape du traitement des instruments et autres articles utilisés. Les outils souillés doivent être trempés dans une solution chlorée à 0,5% ou de la glutaraldéhyde à 2% pendant un temps minimum de 10mn. Ce trempage va entraîner l'inactivation du Virus de l'Immunodéficience Humaine, le Virus de l'Hépatite B ainsi que d'autres micro-organismes. ^18(*) Ce qui rend les instruments moins dangereux à manipuler lors du nettoyage.

La table d'intervention chirurgicale, le chariot d'anesthésie et les moniteurs qui ont pu être en contact avec les liquides organiques doivent également subir une décontamination. La méthode la plus simple consiste à les essuyer avec une solution désinfectante (solution chlorée à 5%) avant de les réutiliser. L'obtention de la solution chlorée se fait par 2 méthodes :

La préparation de la solution chlorée diluée^19(*)

· Formule pour la préparation d'une solution diluée à partir d'une solution concentrée

Part totale (PT) d'eau(H2O) = [% concentré / % dilué] - 1

Par exemple, pour une solution diluée à 0,5 % à partir d'une solution concentrée à 5 %, on procède de la façon suivante :

[ 5% ]

Part d'eau = - 1

[ 0,5%]

= 10-1 = 9

Ce qui revient à dire qu'il faut, à une part de la solution concentrée à 5%, pour 9 parts d'eau pour obtenir une solution diluée à 0,5%.

Ainsi pour la préparation de la solution chlorée à partir des produits courants, on a :

Ø Eau de javel à 8%, on a 1part d'eau de javel pour 4 parts d'eau distillée

Ø Eau de javel à 12% on a 1part d'eau de javel pour 6 parts d'eau distillée

Ø Eau de javel à 15% on a 1part d'eau de javel pour 8 parts d'eau distillée

Si la concentration d'hypochlorite de sodium est en degré chlorométrique, on utilise  utilise la formule suivante:

[° de concentration]

Part d'eau = - 1

[ % de dilution]

Avec 1°chlorométrique correspond environ à 0,3% d'hypochlorite de sodium disponible

· Formule de préparation de la solution libérant du chlore à partir de la poudre sèche.

Grammes / Litres = [% diluée / % concentré] X 1000

Par exemple, pour préparer la solution diluée libérant du chlore 0,5% à partir d'une poudre concentrée à 35 %.

* ¹⁴ Idem page 286

* ¹⁵ CCLIN- SUD-EST, Guide de bonnes pratiques d'hygiène en Anesthésie, Zeneca Pharma, 1996, pages 21-24

* ¹⁶ A. BENOIS, I. PHILIPPOT, E. ALASTOR., Guide sur les bonnes pratiques en anesthésie, prévention des agents transmissibles non contagieux en anesthésie, page 3

* ¹⁷ CENTRE DE COORDINATION DE LUTTE CONTRE LES IN-SUD OUEST, Traitement du matériel de ventilation en anesthésie, page 18

* ¹⁸ GIRARD P.M., KATLAMA C., PIALOUX G. VIH, Edition 2004 6è Edition, DOIN, pages 592

* ¹⁹ BOUBACAR A. (2004) Evaluation de la qualité des pratiques de la prévention des infections dans le service d'Odontostomatologie du CHU-YO, Mémoire non publié, ENSP Ouagadougou BF ,83 pages