ANNEXE VI : PHOTOGRAPHIES DES AROMATOGRAMMES
REALISES
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EVD
urinaires et l'identification directe d'Escherichia
coli,
ANNEXE VII : FICHE TECHNIQUE DE LA GELOSE
CHROMIDTM CPS, BIOMERIEUX
chrom iD
00 43 821 / 43 829
Gélose chromIDTM CPS (CPS)
Milieu chromogène pour le dénombrement des
germes Enterococcus, KESC et Proteeae.
INTRODUCTION ET OBJET DU TEST
La gélose chromlDT" CPSc est un milieu
d'isolement et d'identification destiné aux prélèvements
urinaires- II permet de réaliser:
· le dénombrement microbien du
prélèvement grâce â une méthode
d'ensemencement standardisée.
· l'identification d'espèce ou des genres
bactériens suivants
- Escherichia colt, - Enterococcus,
- Kfebsiela, Enterobacter, Serratia,
Citrobacter (KESC),
- Proteus, Providencia, Morganella (Proteeae). (1,
2, 9, 10)
PRINCIPE
La gélose chromIDTM CPS'' est constituée d'une
base nutritive riche associant différentes peptones et 3 substrats
chromogènes permettant de révéler l'activité
enzymatique correspondante.
La révélation de l'indole est favorisée
par l'incorporation de tryptophane dans la gélose.
La concentration élevée en agar évite
l'envahissement de la gélose par les Proteus.
L'identification des bactéries les plus
fréquemment isolées dans les infections urinaires repose sur ie
principe suivant :
· E. cou : coloration
spontanée (rose à bordeaux) des souches productrices de
f3-glucuronidase (f(-GUR) et/ou 15-galactosidase (15-GAL) (3, 4, 9, 10)_
· Enterococcus : coloration
spontanée turquoise des souches exprimant une R-glucosidase (R-GLU)
(5).
· KESC : coloration spontanée bleu-vert à
bleu-gris des souches exprimant une R-glucosidase (R-GLU).
· Proteeae : coloration spontanée marron
des souches exprimant une désaminase.
PRÉSENTATION
REFI
PEFI
|
43 821
43 829
|
Milieux prêts à l'emploi
Coffret de 2x10 boîtes (90 mm) Coffret de 10x10 boites (90
mm) CPS'
|
|
imprimé sur chaque boîte
COMPOSITION
Formule théorique :
Ce milieu peut être ajusté et/ou supplêmente
en fonction des entraves de performances imposés
Peptone de caséine (bovin) 5 g
Peptone de soja 5 g
Peptone de viande ( bovine vu porcine) 8 g
Hydrates de carbone 1 g
L-Tryptophane 0,9 g
Tampon phosphate 1 g
Substrats chromogènes 1,4 g
Melange nutritif 2.9 g
Agar 18 g
Eau purdiee 1 I
pH 7,4
REACTIFS ET MATERIEL NECESSAIRES
MAIS NON FOURNIS
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Réactif :
· ID Indole-TDA (Réf. 56 541).
· JAMES (Réf. 70 542).
· Oxydase Reagent (Réf 55 635)
Matériel :
· Oeses calibrées de 10 pl.
· Etuve bactériologique.
· Disques non imprégnés 0 6mm (Réf. 54
991).
PRECAUTIONS D'UTILISATION
· Pour diagnostic in vifra
uniquement.
· Pour usage professionnel uniquement.
· Ce coffret contient des composants d'origine animale.
La maîtrise de l'origine et/ou de l'état sanitaire des animaux ne
pouvant garantir de façon absolue que ces produits ne contiennent aucun
agent pathogène transmissible, il est recommandé de les manipuler
avec les précautions d'usage relatives aux produits potentiellement
infectieux (ne pas ingérer ; ne pas inhaler).
· Les prélèvements, cultures
bactériennes et produits ensemencés doivent ètre
considérés comme potentiellement infectieux et doivent être
manipulés de façon appropriée. Les techniques aseptiques
et les précautions usuelles de manipulation pour le groupe
bactérien étudié doivent être respectées tout
au long de la manipulation ; se référer à
"CLSIe M29-A, Protection of Laboratory Workers from
occupationally Acquired Infections; Approved Guideline --
Révision en vigueur". Pour informations complémentaires sur
les précautions de manipulation, se référer a "Biosafety
in Microbiological and Biomedical Laboratories -- CDCINIH - Dernière
édition ", ou à la réglementation en vigueur dans le pays
d'utilisation.
· Les milieux de culture ne doivent pas ètre
utilises comme matériau ou composant de fabrication.
· Ne pas utiliser les réactifs
après la date de péremption.
· Ne pas utiliser les réactifs dont l'emballage
est détérioré.
· Ne pas utiliser des boites contaminées ou
exsudées,
· N'utiliser qu'un seul prélèvement par
boite.
· L'utilisation du milieu peut être
délicate pour des personnes ayant des difficultés
d'appréciation des couleurs.
· Les performances présentées ont
été obtenues avec la méthodologie indiquée dans
cette notice. Toute déviation de méthodologie peut modifier les
résultats.
· La réalisation du test indole pratiquée
directement sur la colonie est déconseillée du fait de la
difficulté observer le virage dans cette condition.
· Il existe une incompatibilité entre le milieu
chromIDTM CPS°) et le test fosfomycine présent sur les
galeries ATB staph, du fait d'une tendance à une non
détection des souches résistantes.
Schéma [A]
Nombre da permes Ma
(10')
Schéma [B]
|
110 `) (10') 110'1
|
|
Gélose chrornlDTM CPS
(CPS)
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CONDITIONS DE STOCKAGE
· Conserver à l'abri de la
lumière.
· Les boites se conservent entre
2°C et 8°C dans leur coffret jusqu'à la
date de péremption.
· La durée de conservation des boites hors du
coffret, en sachet cellophane, est de 2 semaines a 2-8°C.
ECHANTILLONS
Le milieu est ensemencé directement a partir d'urine.
Il convient de respecter les bonnes pratiques en terme de
prélèvements et de transport.
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MODEOPERATOIRE
1. Laisser les boîtes revenir à
température ambiante.
2. Sécher si nécessaire la surface de la
gélose en plaçant les boîtes à l'étuve
à 37°C.
3. Ensemencement - manuel :
Le prélèvement est ensemencé dès
son arrivée au laboratoire à l'oese calibrée de 10 pl, de
la façon suivante :
· Immerger l'oese dans l'urine en la tenant
verticalement,
· Décharger l'oese en réalisant une strie
sur un rayon de la boite (a) (vérifier que la goutte a bien
été déposée),
· Puis, sans recharger l'oese, faire des stries
perpendiculaires très serrées sur toute la surface de la
boîte (b).
(a) (b)
- automatique avec PREVITM Isola
Suivre les instructions indiquées dans le manuel
utilisateur du PREVITM Isola
4. incuber à l'étuve,
couvercle en bas, à 37°C en aérobiose. Le choix de la
température d'incubation est de la responsabilité de
l'utilisateur en fonction de i'applicatlon et des normes en vigueur. Les
cultures sont examinées généralement après 18
à 24 heures d'incubation
LECTURE ET INTERPRETATION
Après incubation, observer la croissance
bactérienne Dénombrement :
Estimer la concentration bactérienne en comparant la
densité des colonies présentes sur la moitié
supérieure de la boîte à celle du schéma [A]
pour un ensemencement manuel, ou à celle du schéma
[B] pour un ensemencement automatique sur PREVITM
Isola (15):
Hnmbre da germa, lm!
(10') (10') (10') i10
`1 (10')
L'interprétation des résultats de la
numération doit tenir compte de différents paramètres dont
la leucocyturie, les signes cliniques et l'épidémiologie.
(6,11,12)
Identification :
|
Colonies roses à bordeaux
|
ôa
a
|
Colonies bleu vert k
bleu gris
|
Colonies beige avec halo marron
|
Revelation du test indole
|
E. coli
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+-
|
|
-
|
-
|
|
Enrerococcus ·
|
|
+
|
-
|
-
|
|
Groupe KESC
|
|
-
|
+
|
-
|
|
P.
indologéne Providencia Morganella
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-
|
-
|
-
|
+
|
+
|
P. mirabilis
|
-
|
-
|
-
|
+
|
-
|
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1. Identification directe de E.coli sans
réalisation de test indole :
· Colonies de couleur rose à bordeaux ou
translucides à centre rose à bordeaux : espèce E.
cofi.
|