C) Evaluation de la résistance à
Ceratocystis fimbriata
- Clones de cacaoyers à
tester
Il s'agira des mêmes clones que ceux utilisés
lors des tests de résistance à Phytophthora spp.
(2-5-1). Lors des tailles des arbres en parcelle S5, deux branches (ou
branchettes) de 30 cm, aoûtées, seront
récupérées pour chaque clone à tester. Cinq clones
témoins seront utilisés (IMC67, EET 400, résistants ou
moyennement résistants, CCN 51, ICS 95, sensibles et PA 120, très
sensible ; Delgado et Echandi, 1965 ; Delgado et Suarez, 2005 ; Silva et
al, 2004 ; Delgado, 2007).
- Matériel fongique : souches de C. fimbriata
- Isolement de souches sur de jeunes plantules ou arbres
attaqués par les Xyleborus, coléoptères scolytes
qui forent des galeries au niveau du collet des plantules et qui introduisent
ainsi le pathogène dans la plante (Grosclaude et al., 1988 ;
Vigouroux, 1979 ).
- Les souches seront multipliées et conservées en
collection au laboratoire à Kourou, sur milieu gélosé PDA,
avec régénération périodique.
- Une première série de tests
préliminaires sur les 5 clones témoins permettra de
sélectionner la souche la plus agressive, qui sera ensuite
utilisée au cours des tests complets d'évaluation.
- Inoculation, incubation, notation des
symptômes
On s'inspirera des travaux de Delgado et Echandi (1965),
Dominguez (1971, 1976), Przybyl (1988), Delgado et Suarez (2005) et Delgado
(2007) :
- Chaque branchette sera découpée en trois morceaux
de 10 cm de long. Au total, 6 morceaux seront inoculés par clone et par
date d'inoculation.
- Sur chaque morceau, deux perforations (1 mm de
diamètre) seront effectuées à l'aide
d'une
mini-perceuse : une à 1 cm d'une extrémité (témoin,
sans inoculation), l'autre à 3 cm
(inoculation avec du mycélium ou une suspension de spores,
suivant les résultats des essais préliminaires).
- Les morceaux seront placés dans des plateaux en
conditions humides, à 25°C et avec un éclairage 12h /12h.
- Les notations des dimensions de la nécrose se feront au
bout de 3 et 7 jours. On clivera la moitié des branchettes à 3
jours et l'autre à 7.
Par date d'inoculation, 50 clones peuvent être
testés (les clones témoins seront inoculés pour toutes les
dates). Chaque clone sera inoculé 5 fois (donc 5 x 6 = 30 morceaux de
branchettes inoculées par clone). Les clones résistants seront
ensuite confirmés au champ, par inoculations artificielles (Silva et
al., 2007)
D) Caractérisation de la dureté des
cortex.
Ces travaux, assez novateurs, s'appliqueront aux mêmes
clones que ceux des tests précédents, mais, nécessitant
des cabosses, pourront prendre beaucoup plus de temps. Ils seront menés
parallèlement à des tests identiques se déroulant en Asie
du sud-est (sur des clones différents). Ils reposent sur l'utilisation
d'un pénétromètre pour fruits. Le protocole sera à
adapter localement, les bases étant les suivantes (Bekele et Butler,
2000 ; Bekele et al., 1997, 2001) :
- Utilisation de cabosses normales (non
déformées) présentant les premiers signes de
maturité (environ trois semaines avant la pleine maturité),
testées le jour même de la récolte ;
- Les mesures seront effectuées en zig-zag, dans la zone
équatoriale de la cabosse (sur une bande de 2 cm de large) ;
- 15 mesures seront effectuées pour chaque cabosse : 5
dans chacun des sillons principaux et secondaires, et 5 dans les côtes
;
- 5 cabosses seront utilisées (au moins) par clone ;
- Des témoins seront choisis en fonction des tests
réalisés en Asie du sud-est, afin de pouvoir faire le lien avec
nos données. Les témoins de dureté du cortex seront les
clones ICS 84, ICS 1 et ICS 6 (Bekele et al., 2001).
Les cacaoyers guyanais ayant les cortex particulièrement
épais, ils pourraient être intéressants dans la lutte
contre le Cocoa Pod Borer.
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