C- EXAMEN DE CRACHAT : RECHERCHE DES BAAR
Pour un examen du crachat, on peut réaliser le test
deux ou trois fois pour être convaincu des résultats obtenus.
1- Matériels et colorants Pour cet
examen nous besoin de :
- Un portoir de lames - Un bec bunsen - Un rack.
- Des lames - Un flambeau à alcool - microscope
- Anses de platine ou bâtonnet - papier absorbant -
Fuchine
- Acide sulfurique - Le bleu de méthylène.
2- Prélèvement
Lorsque le malade se rend au laboratoire, on recueille ses
crachat dans un premier bocal (le bocal doit être stérile,
à ouverture large et bouché) ainsi que suit : il inspire à
fond et expire
Rapport de stage rédigé par GOMSEU DJOUMSIE
Emmanuel Boris 21
Méthodes de diagnostic des maladies parasitaires dans
le laboratoire de l'hôpital de district
de Dschang.
en toussant très fortement pour permettre au crachat de
remonter jusqu'à la bouche. Si l'examen de ce premier échantillon
ne présente pas de BAAR, il reçoit une seconde boite aux
mêmes caractéristiques dans laquelle il recueille après le
réveil et de référence 5h. Si l'examen est encore
négatif, on peut donc conclure que ces crachats ne présente aucun
BAAR ; s'il est par contre positif, on fait un troisième examen avec un
autre échantillon pour confirmer le résultat (positif ou
négatif).Or si le premier examen est positif on réalise une
seconde confirmation afin de confirmer s'il ya présence des BAAR dans le
crachat du malade ou pas.
Il est à noter que chaque recueil de crachat se fait
strictement à jeun ; et que les crachats ne doivent pas être
confondu à la salive car les crachats contiennent habituellement des
trainés épaisse de mucus, trouées de bulles d'air, des
petits filaments de fibres, des parcelles de pus et occasionnellement des
trainées brunâtres de sang.
3- Méthodologie
Cet examen de crachat est très délicat pour
cela, il faut respecter le processus à la lettre afin de ne pas
contaminer (souiller) les échantillons et surtout ne pas se contaminer.
Ainsi, il faut :
- toujours utiliser de nouvelles lames propres et non
gréseuses qu'on identifie correctement avec un crayon,
- allumer la lampe à alcool ; à l'aide d'une
anse de platine ou de l'extrémité d'une baguette, prélever
(derrière la flamme) la partie jaunâtre contenant le crachat et le
placer sur la lame,
- étaler le dépôt de façon
uniforme, laisser le frotti séché à l'air puis fixer en
faisant passer les lames trois fois à travers la flamme,
- après trois minutes, flamber délicatement les
lames, laver à l'eau et égoutter.
- recouvrir ces lames avec une solution de décoloration
(acide sulfurique) pendant trois minutes, laver abondamment à l'eau et
égoutter. On peut reprendre l'étape précédente de
décoloration, si les lames ne sont pas proprement
décolorées.
- couvrir ensuite la préparation du Bleu de
méthylène pendant une minute, égoutte la solution, laver
la préparation à l'eau et essuyer le dessus des lames à
l'aide du papier absorbant.
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Emmanuel Boris 22
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le laboratoire de l'hôpital de district
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- sécher les lames en les disposant dans un rack.
- imbiber le frotti de l'huile à immersion puis,
examiner le frotti au microscope à l'objectif 100x. Les BAAR sont sous
forme de bâtonnets rouges sur un fond bleu.
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