Essai de prévision de la valeur nutritive des feuilles et la pulpe d'arganier

CONCLUSION ET PERSPECTIVE

Au terme de ce modeste travail et à partir des résultats trouvés on conclu que :

La composition chimique montre la richesse de la pulpe d'arganier en éléments solubles, dont elle renferme environ 1 5,5%MS de glucides, 9%MS de lipides et 5%MS de l'azote, tandis que les feuilles sont trois fois moins riche que la pulpe en MG soit environ 3,5%MS et faible en ST soit 2,5%MS, mais riche en MAT qui représente 12,5%MS. La teneur en CB est très faible d'environ 9%MS pour la pulpe et 6%MS pour les feuilles.

De point de vue valeur énergétique et azotée, la pulpe est considérée comme un aliment de qualité ayant 0,93 UFL ou 0,92 UFV malgré sa pauvreté en MAD qui représente environ 4%MO. Les feuilles apparaissent comme un bon foin ayant environ 0,9 UFL, 0,8 U FV et 10 %MAD :

· La pulpe pourrait être utilisée comme concentré pour compléter les rations pauvres en produits rapidement fermentescibles vue sa richesse en MG et en ST comparée aux feuilles apportant une quantité considérable en MA D considérées comme une source azotée compensant ainsi la rareté des fourrages dans les zones désertiques donc, il serait intéressant d'utiliser les deux aliments en même temps pour en faire une ration complète.

· Les feuilles peuvent être utilisées en alimentation des ruminants en vue de la production laitière tandis que la pulpe peut être utilisée pour tout type de productions.

La fermentation de la pulpe et des feuilles donne une production rapide et importante de gaz, à partir de ce résultat on conclu que ces aliments sont très solubles et rapidement fermentescibles.

Toute étude en continuité de ce travail doit consister à:

* Une analyse approfondie qui portera sur plus des paramètres et réalisera des analyses plus précises et plus différentielles, nous citerons dans ce contexte, le dosage des acides aminés essentiels, des vitamines et des facteurs antinutritionnels (tanins, alcaloïdes, saponines) pour une estimation plus précise de l'énergie nette.

* Un essai sur animaux et détermination de l'ingestibilité et de la digestibilité in

vivo.

L'Algérie n'a pas le choix quant à la récupération des sous produits, tant que la production fourragère n'a pas eu une véritable exécution, et bien que le pays se prêt bien à la culture d'arganier, et dans un prochain avenir, on y développera l'extraction de l'huile d'argan, ce jour là l'utilisation en alimentation animale de ses sous produits aura une extension importante.

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I. Préparation des échantillons 1.1 Broyage des échantillons

01 02

Figure 01: pulpe broyée (01) et feuilles broyées (02).

II. Préparation de milieu de LOWE

Tableau I: Préparation du milieu de LOWE.

Les éléments	pour1000ml	pour 1500ml	pour 2000ml
KCl	0.6g	0.9g	1 .2g
NaCl	0.6g	0.9g	1.2g
MgSo4	0.5g	0.75g	1g
NH4Cl	0.6g	0.9g	1.2g
CaCl2	0.1g	0.15g	0.2g
Solution d'oligo-éléments	10ml	15ml	20ml
Résazurine a 0.1%	1ml	1.5ml	2ml
Eau distillée	960ml	1440ml	1920ml
PH 7.5 avec KoH 1M
KH2Po4	0.68g 0.3	1.02g	1.36g
Na2Co3	0.4g	0.6g	0.8g
Porter à ébullition puis laissé refroidir (couvrir de papier aluminium)
Mettre sous CO2 et attendre que cela refroidisse
NaHCo3	6g	9g	12g
Cystéine HCL	1g	1 .5g	2g
Placer le milieu sous courant de CO2 jusqu'à sa décoloration

(LOWE et al, 1985)

III. Analyse des échantillons 3.1 MS

105°C

Figure 02 : Séchage des échantillons à l'étuve.

3.2 MM

550°C

Figure 03 : Incinération des échantillons dans le four.

3.3 CB

Fi

Figure 04: Centrifugation après hydrolyse acide.

Figure 05 : filtration après hydrolyse alcaline.

3.4 MG

01

02

Fig 06 : Extraction de MG par soxhlet (01) et évaporation du solvant par rotavapor(02).

3.5 MAT

01

02

Figure 07: Dosage de l'azote par minéralisation(01), et distillation par BUCHI (02).

3.6 ST

Figure 08 : spectrophotomètre UV-V utilisé pour lire l'absorbance.

Figure 09 : Dispositif de fermentation.

Figure 10 : Gaz produit dans une seringue.

45

IV. Fermentation des échantillons

I. Les méthodes d'analyses chimiques

Les méthodes de dosage de la MS, M M , MG, CB sont tirées d'une publication de : CI RA D-EMVT, Mars 2003.

1.1 Dosage de la matière sèche (MS)

Mode opératoire :

Dans une capsule en porcelaine séchée et tarée au préalable, introduire 2 à 5 grammes de l'échantillon à analyser. Porter la capsule dans une étuve à air réglée à 105°c #177;2°c, laisser durant 24 heures.

Refroidir au déssiateur, peser, remettre 1 heure, 3heures à l'étuve et procéder à une nouvelle pesée. Jusqu'à un poids constant.

La teneur en matière sèche est calculée par la relation suivante :

* 100

MS % =y

x

x: Poids de la prise d'essai.

y: Poids de l'échantillon après déssication.

1.2 Dosage des matières minérales (MM)

Mode opératoire :

Porter au four à moufle la capsule plus le résidu qui a servi à la détermination de la MS.

Chauffer progressivement afin d'obtenir une carbonisation sans inflammation de la masse :

1 heure 30 mn à 200^°c.

2 heures 30mn à 500^°c.

L'incinération doit être poursuivie jusqu'à combustion totale de charbon formé et obtention d'un résidu blanc ou gris clair. Refroidir au déssiateur la capsule contenant le résidu de l'incinération, et peser.

teneur en MM % MS = x: Poids des cendres. y: Poids de la prise d'essai.	x * 100
	y * MS

1.3 Dosage des matières grasses (MG) Mode opératoire :

Peser 3 à 5 grammes de l'échantillon à analyser, mettre dans une cartouche de

soxhlet. Peser le ballon de soxhlet sec (ballon de 250 ml). Placer la cartouche dans un dans l'extracteur de soxhlet, monter le ballon sur l'extracteur, monter lui-même par un réfrigérant. Verser 1 volume et ¹/2 de solvant dans l'extracteur.

Extraire pendant 6 à 8 heures. A la fin de l'extraction, siphonner le solvant restant dans l'extracteur dans le ballon.

Faire évaporer à l'aide d'un rotavapor rotatif jusqu'à sec (la température d'évaporation varie selon le solvant utilisé).placer le ballon et le résidu à l'étuve à 102°c

pendant 3 heures. Laisser refroidir au déssiateur, puis peser.

teneur en MG % MS =

* 100

z * MS

x -- y) * 100

x: Poids du ballon + résidu après 3 heures à l'étuve.

y: Poids du ballon vide.

z: Poids de la prise d'essai.

1.4 Dosage de la cellulose brute (CB)

Mode opératoire :

Hydrolyse acide: introduire 1 à 2 grammes de l'échantillon dans un ballon de 750 ml. Ajouter 200 ml d'acide sulfurique à 12,5 g/l , préalablement porté à l'ébullition. Adapter le réfrigérant, porter rapidement à l'ébullition. Maintenir celle-ci exactement pendant 30 minutes en agitant le ballon, toutes les 5 minutes, par mouvement rotatoire de façon à remettre en contact avec le liquide les particules collées sur la paroi du ballon. Laisser décanter quelques minutes.

Transvaser quantitativement le liquide dans des tubes à centrifuger en évitant d'entrainer la fraction insoluble. Centrifuger jusqu'à ce que le liquide surnageant le culot soit parfaitement clair. Eliminer la solution par décantation sans entrainer la fraction

insoluble. Laver le résidu du ballon et celui des tubes avec de l'eau distillée bouillante en s'aidant de la centrifugation jusqu'ace que l'eau de lavage soit neutre.

Hydrolyse alcaline : introduire les résidus insolubles des tubes dans le ballon qui a

servi à effectuer l'hydrolyse acide. Ajouter 200 ml de soude 12,5 g/l, préalablement porté à l'ébullition. Faire bouillir durant 30 minutes avec agitation toutes les 5 minutes.

Ensuite filtrer sur creuset en silice, préalablement pesée. Lavé avec de l'eau distillée bouillante. Passer le creuset + résidu à l'étuve à 105°c jusqu'à poids constant, effectuer les pesées après refroidissement au déssiateur, puis incinérer au four à moufle à 400^°c durant 5 heures, refroidir et peser à nouveau.

Teneur en CB % MS = (x-y)*100* 100

Z*MS

x: Poids du creuset + résidu après déssication

y: Poids du creuset + résidu après incinération Z: Poids de la prise d'essai.

1.5 Dosage des matières azotées totales (MAT)

Mode opératoire :

Minéralisation : introduire 0,5 à 2 grammes de l'échantillon dans un matras sec. Ajouter 2 grammes de catalyseur (250 g de K2SO4 ; 250 g de Cu SO4 et 5 g de Se), et 20 ml H2SO4 pur (d = 1,84). Porter le matras sur le support d'attaque et poursuivre le chauffage jusqu'à décoloration du liquide ou l'obtention d'une coloration verte stable.

Laisser refroidir, puis ajouter peu à peu, avec précaution l'eau distillée jusqu'a 200 ml, en refroidissant sous un courant d'eau. Laisser refroidir complètement.

Distillation : transvaser 10 à 50 ml du contenu du matras dans l'appareil distillatoire (Büchi) avec quelques gouttes de phénolphtaléine. Dans un bécher destiné à recueillir le distillat, introduire 20 ml de l'indicateur composé de :

Pour 1 litre :

20 g d'acide borique.

200 ml d'éthanol.

10 ml d'indicateur contenant :

1/4 de rouge de méthyle à 0,2% dans l'alcool 95°

3/4 de vert de bromocrésol 0,1% dans l'alcool 95°

Verser lentement dans le matras de Büchi lessive de soude (d = 1,33) jusqu'à apparition d'une couleur rose, mettre l'appareil en marche jusqu'à obtention d'un volume de 100 ml au moins.

Titrer par l'acide sulfurique N/20 ou N/50 jusqu'à virage de couleur. 1 ml d' _H2SO4 à 1N correspond 0,014 g d'N.

1 ml d' H2SO4 à N/20 correspond 0,0007 g d'N.

100 200

N (g) = x * 0.0007 * y * Z

Teneur en MAT % MS = N (g) * 6,25

x: Descente de burette (ml).

y: Poids de prise d'essai.

z: Volume transvasé au Büchi (ml).

(Lecoq. R, 1965).

1.6 Dosage des sucres totaux

Mode opératoire :

Peser 10 grammes de l'échantillon dans un bécher de 500 ml et additionner 400 ml d'eau distillée, et 3 grammes de l'acétate de sodium pour neutraliser l'acidité. Porter à ébullition en agitant, pendant 30 mn.

Transvaser, après ébullition la solution dans une fiole de 1 litre. Additionner des petites quantités d'acétate de plomb à 10% tout en agitant jusqu'apparition d'un précipité qui se dépose au fond de la fiole. Ensuite ajouter l'eau distillée dans la fiole jusqu'à trait de jauge, et procéder à la filtration.

Additionner au filtrat une petite quantité d'oxalate de potassium ou carbonate de sodium déshydraté pour précipiter l'acétate de plomb. Filtrer la solution pour éliminer le plomb précipité.

Vérifier la présence de plomb dans la solution en ajoutant une petite quantité d'oxalate de potassium à une partie de solution contenue dans un tube à essai. Si le précipité apparait, continuez à ajouter l'oxalate de potassium jusqu'à la disparition de tous les ions de plomb.

Dosage :

Prendre 5 ml du filtrat, les faire diluer dans 50 ml de l'eau distillée, et à partir de cette solution prendre 1 ml et faire introduire dans un tube à essai, ajouter 1 ml de la solution de phénol à 5%, agiter énergiquement puis verser 5 ml de l'acide sulfurique concentré, agiter, laisser refroidir à l'obscurité pendant 30mn, lire la densité optique à 490 nm.

Préparation de la courbe d'étalonnage :

Dissoudre 100 mg de glucose dans 100 ml de l'eau distillée.

Prendre de la solution précédente 4 ml et compléter à 50 ml.

Préparer une série de tubes à essai dans lesquels on verse 0 ,1 m.....0,9 ml à partir de la solution fille (4/50).

Compléter les tubes à 1 ml avec de l'eau distillée, ajouter 1 ml de phénol 5 % à

tous les tubes à essai ; et agiter. Verser 5 ml de l'acide sulfurique dans chaque tube,

laisser refroidir dans la température de la salle pendant 30 mn, et à l'obscurité. Lire la densité optique à 490 nm.

Le tableau suivant montre le contenu de chaque tube.

Tableau I I : préparation de la courbe d'étalonnage.

Tubes	0	1	2	3	4	5	6	7	8	9
S. de glucose (ml)	0	0,1	0,2	0,3	0,4	0,5	0,6	0,7	0,8	0,9
Eau distillée (ml)	1	0,9	0,8	0,7	0,6	0,5	0,4	0,3	0,2	0,1
Phénol (ml)	1	1	1	1	1	1	1	1	1	1
AC.	5	5	5	5	5	5	5	5	5	5
Sulfurique(ml)
Concentration ug/2ml	0	8	16	24	32	40	48	56	64	72

(NIELSEN.S.S, 1997)

II. Résultats

2.1 Résultats d'analyses de : MS et MM

Tableau III : Teneur de la pulpe en MS et MM dans différents essais.

N°	P0.Ech	P24h.^Ech	P24h+3h.^Ech	P24h+3h+1h. Ech	MS (%)	P four. Ech	MM (%) MS
01	2.24	2.00	2.91	1.91	85.41	0.18	9.42
02	3.00	2.60	2.57	2.56	85.41	0.25	9.76
03	2.74	2.40	2.33	2.33	85.40	0.22	9.44
04	3.22	2.95	2.76	2.75	85.42	0.28	10.18
05	3.08	2.75	2.64	2.63	85.40	0.27	10.26
06	2.08	1.90	1.77	1.77	85.42	0.16	9.03
07	1.93	1.69	1.65	1.64	85.39	0.14	8.53
08	2.19	1.89	1.88	1.87	85.43	0.17	9.09
09	2.54	2.23	2.19	2.16	85.41	0.19	8.79
10	2.59	2.30	2.20	2.21	85.42	0.22	9.95
MOY	-	-	-	-	85.41	-	9.44

Tableau IV : Teneur des feuilles en MS et MM dans différents essais.

N°	P0.Ech	P24h.^Ech	P24h+3h.^Ech	P24h+3h+1h. Ech	MS (%)	P four. Ech	MM (%) MS
01	1.500	1.289	1.285	1.283	85.53	0.10	7.79
02	1.500	1.290	1.285	1.284	85.60	0.10	7.79
03	1.500	1.289	1.284	1.283	85.53	0.10	7.79
04	1.500	1.290	1.284	1.285	85.66	0.10	7.79
05	1.500	1.285	1.283	1.282	85.46	0.10	7.79
06	1.000	0.859	0.858	0.856	85.16	0.07	8.17
07	1.000	0.858	0.857	0.857	85.70	0.07	8.17
08	1.000	0.861	0.855	0.855	85.50	0.07	9.41
09	1.000	0.860	0.853	0.853	85.30	0.08	8.17
10	1.000	0.865	0.861	0.859	85.90	0.07	8.17
MOY	-	-	-	-	85. 56	-	8.07

P0. Ech : poids de l'échantillon de départ (g).

P24h. Ech: poids de l'échantillon après 24h de séchage à l'étuve(g).

P24h+3h. Ech: poids de l'échantillon après 24h + 3h de séchage à l'étuve(g). P24h+3h+1h. Ech: poids de l'échantillon après 24h + 3h + 1h de séchage à l'étuve(g). P _four. Ech : poids de l'échantillon après incinération au four(g).

2.2 Résultats d'analyse de: MG

Tableau V : Teneur de la pulpe en MG dans différents essais.

N°	Prise d'essai (g)	MG (g)	MG (%)
01	03	0.25	9.75
02	03	0.20	7.80
03	03	0.23	8.97

MG pulpe % MS = 8.84 %

Tableau VI : Teneur des feuilles en MG dans différents essais.

N°	Prise d'essai (g)	MG (g)	MG (%)
01	03	0.07	2.72
02	03	0.1	3.89
03	03	0.09	3.50

MG feuilles % MS = 3.37 %

2.3 Résultats d'analyse de: CB

Tableau VII : Teneur de la pulpe en CB dans différents essais.

N°	Prise d'essai (g)	CB (g)	CB (%)
01	01	0.075	8.78
02	01	0.071	8.31
03	01	0.081	9.48

CB pulpe % MS = 8.85 %

Tableau VIII : Teneur des feuilles en CB dans différents essais.

N°	Prise d'essai (g)	CB (g)	CB (%)
01	01	0.048	5.61
02	01	0.055	6.42
03	01	0.049	5.72

CB feuilles % MS = 5.91 %

2.4 Résultats d'analyse de: MAT

Tableau IX : Teneur de la pulpe en MAT dans différents essais.

N°	Volume H2SO4 0.05N (ml)	MAT %
01	2.3	4.8
02	2.3	4.8
03	2.2	4.59

MAT pulpe % MS = 4.74 %

Tableau X : Teneur des feuilles en MAT dans différents essais.

N°	Volume H2SO4 0.05N (ml)	MAT %
01	5.7	12.46
02	5.7	12.46
03	5.7	12.46

MAT feuilles % MS = 12.46 %

2.5 Résultats d'analyse de: ST

0,8

0,6

0,4

0,2

1,4

1,2

0

1

y = 0,0153x + 0,0722

0 20 40 60 80

teneur en glucose (ug/2ml)

Figure 11 : La courbe d'étalonnage de glucose à 490nm.

Tableau XI : Teneur de la pulpe en ST dans différents essais.

N°	Absorbance à 490 nm	ST (%)
01	0.341	14.99%
02	0.346	15.27%
03	0.354	15.72%

ST pulpe % MS = 15.32 %

Tableau XII : Teneur des feuilles en ST dans différents essais.

N°	Absorbance à 490 nm	ST (%)
01	0.110	2.11 %
02	0.115	2. 16 %
03	0.119	2.61 %

ST feuilles % MS = 02.30 %

Tableau XIII : Teneur des sous produits en CB, MAT et MG par rapport à la

MO.

composant Ech	MO (%MS)	MG	MAT	CB	ST
pulpe	90,56%	9.37%	5.02%	9.38%	16,24%
feuilles	91,96%	3.62%	13,39%	6.35%	2.47%

2.6 Résultats de fermentation par « par gaz test ».

Tableau IVX : Résultats des différents essais de fermentation de la pulpe et des feuilles.

Temps Ech	0 - 4 h	4 -8 h	8 - 12 h	12 - 24 h	24 - 36 h	36 - 48 h	48 - 72 h	72 - 96 h
Blanc 1	73	85	40	86	36	15	00	00
F 1	145	147	82	125	83	59	32	18
F 2	140	143	80	126	85	57	34	16
F 3	147	142	82	125	82	60	32	19
P 1	133	135	93	126	62	31	22	07
P 2	137	139	99	120	60	28	19	05
P 3	141	142	94	123	61	29	21	05
Blanc 2	80	83	50	72	50	40	20	00
F 1	150	151	105	118	99	83	50	10
F 2	151	151	95	116	96	84	53	12
F 3	153	150	93	118	96	82	51	14
P 1	137	139	103	108	75	55	41	03
P 2	135	138	102	108	73	55	42	04