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Etude de l'évolution des paramètres physicochimiques lors de la fermentation alcoolique et production d'une boisson alcoolisée à  base d'hibiscus sabdarifa


par Harvey Innocent DZANVOULA
Université Marien Ngouabi - Licence 2020
  

Disponible en mode multipage

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    N°01_2019_2020_LGIA_ENSP

    UNIVERSITE MARIEN NGOUABI

    ECOLE NATIONALE SUPERIEURE POLYTECHNIQUE

    Présenté pour l'obtention de la licence des Sciences et Technologie Alimentaire

    Option : Génie Industriel Alimentaire

    ETUDE DE L'EVOLUTION DES PARAMETRES PHYSICO-
    CHIMIQUES LORS DE LA FERMENTATION ALCOOLIQUE
    ET PRODUCTION D'UNE BOISSON ALCOOLISEE A BASE
    D'Hibiscus sabdariffa(Roselle)

    Présenté et soutenu publiquement par :
    DZANVOULA Harvey Innocent
    Le 07 décembre 2020
    Devant le jury :

    Président : Professeur DZONDO Gadet Michel, Maître de Conférence CAMES/ENSP-UMNG Rapporteur : Docteur NAKAVOUA Aristide Herlyn Wilfrid, Maître Assistant CAMES/ENSP-UMNG Membre : Docteur-ingénieur N'DEMBE - BIBALOU, Chercheur à l'IRA / ENSP-UNMG

    DEDICACE

    Je dédie ce modeste travail à :

    Mes parents : mon père DZANVOULA Innocent pour sa présence, son soutien et son aide multiforme ; ma mère ONDOUMA Praxède pour ses nombreux sacrifices, son attention et son affection, pour ses prières à mon égard et à qui je dois mon éducation, celle qui m'a supporté et m'a mis sur la bonne voie.

    Mes frères et soeurs en témoignage de la fraternité et de l'amour qui nous unis

    Mes nièces et neveux que ce travail leur sert d'exemple et les encourage à persévérer dans leurs études

    Puissent-ils trouver ici, l'expression de mon amour et de mon attachement envers eux.

    i

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020

    REMERCIEMENTS

    Nous ne pouvons présenter ce travail sans adresser nos sincères remerciements à tous ceux qui ont contribué de près ou de loin à l'accomplissement de cette oeuvre. Ainsi, je tiens sincèrement à remercier :

    Le Président du Jury, Monsieur DZONDO Godet Michel, Maître de Conférences, CAMES / ENSP-UMNG pour avoir accepté de diriger cette soutenance malgré ses innombrables occupations ,

    Les membres du Jury : Monsieur NAKAVOUA Aristide Herlyn, Maître Assistant, CAMES / ENSP-UMNG et Monsieur N'DEMBE-BIBALOU, Docteur-Ingénieur, chercheur à l'IRA / ENSP-UNMG pour avoir accepté d'examiner ce travail ,

    La Direction Générale de l'Ecole Nationale Supérieure Polytechnique, tout le personnel enseignant et administratif pour leur rôle dans ma formation qualifiante. Je pense tout particulièrement à :

    Monsieur Désiré LILONGA BOYENGA, Directeur de l'ENSP ,

    Monsieur Richard Romain NIERE, Directeur adjoint de l'ENSP , Monsieur Germain NGUIMBI, Chef de département du cycle licence ,

    Monsieur Daniel MASSAMBA, ancien Chef de parcours licence des Sciences et Technologies Alimentaires ,

    Monsieur Wilfrid Armand Désiré KOMBO, Chef du Bureau des Stages, d'Information et

    d'Orientation.

    Monsieur Roch EDOURA, Docteur en génie des procédés, Maître Assistant dont les conseils, critiques et remarques m'ont permis de faire une meilleure version de moi-même.

    Je remercie le Docteur Claude N'DEMBE-BIBALOU, Chef de laboratoire de Bromatologie et des Technologies Agro-alimentaires (LBTA) à l'Institut national de Recherche Agronomique (IRA), Directeur de ce mémoire pour m'avoir fait confiance en m'acceptant dans son laboratoire, ainsi que pour son soutien, son suivi exceptionnel, ses conseils, et orientations, de sa rigueur scientifique, sa disponibilité et surtout son expérience dans le monde de la recherche qui m'ont permis de réaliser ce projet . Aussi je remercie tout le personnel de l'Institut National de Recherche Agronomique pour le bon accueil et l'encadrement méthodique dont j'ai bénéficié au cours de mon stage. Je pense spécialement à :

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020 II

    Docteur Armand Claude MVILLA, Directeur Général de l'IRA;

    Docteur Emmanuelle Auguste ISSALI, Maître de Conférences CAMES, Directeur Scientifique; Monsieur Alain MBERI, Directeur de l'administration des Ressources Humaines;

    Monsieur Jérémie ITOUA, Directeur des Finances et Comptabilité ;

    Monsieur Prince MOUKOUYOU BISSONBOLO, Chercheur au LBTA/IRA pour sa disponibilité, ses éclaircissements, son aide et pour l'intérêt qu'il a manifesté à ce travail. Il m'est agréable de lui témoigner ma gratitude.

    A toute ma famille, mes amis pour l'aide apporté dans la réalisation de ce travail et leur soutien moral et à tous ceux qui ont compulse ce modeste travail.

    Qu'ils trouvent ici l'expression de ma totale gratitude et mes sincères remerciements.

    III

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    Table des matières

    DEDICACE i

    REMERCIEMENTS ii

    LISTE DES TABLEAUX vii

    LISTE DES PHOTOS viii

    LISTE DES FIGURES ix

    SIGLES ET ABREVIATIONS x

    INTRODUCTION 1

    CHAPITRE I : REVUE BIBLIOGRAPHIQUE

    I-1. Hibiscus sabdariffa L 3

    I-1.1. Description et origine de l'Hibiscus sabdariffa 3

    I-1.2. Les variétés d'Hibiscus sabdariffa 3

    I-1.3. Valeurs nutritionnelles et Utilisation de l'Hibiscus sabdariffa 3

    1. Valeurs nutritionnelles 3

    2. Utilisations 4

    I-2. Fermentation alcoolique 5

    I-3. Paramètres influençant la fermentation alcoolique 6

    I-3.1. Température 6

    I-3.2. Oxygène 6

    I-3.3. Ethanol 6

    I-4. Les boissons 7

    I-4.1. Les boissons alcoolisées 7

    1. Définition 7

    2. Le vin 8

    I.4.2. Les boissons non alcoolisées 8

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020 iv

    1. Définition 8

    2. Les jus de fruits 8

    a. Définition 8

    b. Obtention 8

    I-5. Pasteurisation 9

    I-5.1. Définition et principe 9

    I-5.2. Différents types de pasteurisation 9

    I-6. Saccharomyces cerevisiae 10

    I-6.1. Description et caractéristiques 10

    I-6.2. Taxonomie 10

    I-6.3. Reproduction 11

    I-6.4. Utilisations 11

    CHAPITRE II : MATERIELS ET METHODES

    II-1. Matériels 13

    1-1. Matériels de laboratoire 13

    1-2. Réactifs de laboratoire 14

    1-3. Matériel biologique 14

    II-2. METHODES 15

    II-2.1. Préparation de la boisson alcoolisée 15

    1. Préparation du jus 15

    2. Préparation du moût 17

    3. Fermentation 17

    II-2.2 ANALYSES SENSORIELLES ET PHYSICO-CHIMIQUES 20

    II-2.2.1 Analyses sensorielles 20

    II.2.2.2 Analyses physico-chimiques 20

    1. Mesure du pH 20

    2. Mesure du degré Brix 21

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020 v

    3. Degré alcoolique 21

    CHAPITRE III : RESULTATS ET INTERPRETATIONS

    III-1. Fabrication du jus et de la boisson alcoolisée à base d'Hibiscus sabdariffa 23

    III-2. Paramètres sensoriels et physico-chimiques 23

    III-2.1. Paramètres sensoriels 23

    III-2.1.1. Paramètres sensoriels du jus d'Hibiscus sabdariffa 23

    III-2.1.2. Paramètres sensoriels de la boisson alcoolisée à base d'Hibiscus sabdariffa

    23

    III-2.2 Paramètres physico-chimiques 25

    CONCLUSION ET PERSPECTIVES 30

    CHAPITRE IV : REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES

    Bibliographie 32

    Webographie 33

    ANNEXES 34

    vi

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020

    LISTE DES TABLEAUX

    Tableau I : Exemples de fabrication de boissons alcoolisées 7

    Tableau II : Classification de Saccharomyces cérevisiae 10

    Tableau III : Matériels de laboratoire 13

    Tableau IV : Réactifs de laboratoire 14

    Tableau V : Paramètres sensoriels du jus d'Hibiscus sabdariffa 23

    Tableau VI : Paramètres sensoriels de la boisson alcoolisée en fin de fermentation à base

    d'Hibiscus sabdariffa 24

    VII

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    LISTE DES PHOTOS

    Photo 1 : Hibiscus sabdariffa 15

    Photo 2 : Saccharomyces cerevisiae 17

    Photo 3 : Jus d'Hibiscus sabdariffa 23

    Photo 4: Boisson alcoolisée à base d'Hibiscus sabdariffa 23

    viii

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    ix

    LISTE DES FIGURES

    Figure 1 : Diagramme de fabrication du jus d'Hibiscus sabdariffa 16

    Figure 2 : Diagramme de fabrication de la boisson alcoolisée 19

    Figure 3 : Points focaux de l'évaluation sensorielle 25

    Figure 4 : Evolution du degré Brix et du degré alcoolique les 12 premiers jours de fermentation

    alcoolique 26

    Figure 5 : Evolution du pH les 12 premiers jours de fermentation alcoolique 26

    Figure 6 : Evolution du degré Brix et du degré alcoolique du 16ème au 24ème jour de fermentation

    alcoolique 27

    Figure 7 : Evolution du Ph du 16ème au 24ème jour de fermentation alcoolique 28

    Figure 8 : Evolution du degré Brix et du degré alcoolique du 28ème au 40ème jour de fermentation

    alcoolique 28

    Figure 9 : Evolution du Ph du 28ème au 40ème jour de fermentation alcoolique 29

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    x

    SIGLES ET ABREVIATIONS

    ADP : Adénosine di phosphate

    ATP : Adénosine tri phosphate

    ENSP : Ecole Nationale Supérieure Polytechnique

    UMNG : Université Marien Ngouabi

    H. : Hibiscus

    S. : Saccharomyces

    Pi : phosphore inorganique

    mg : milligramme

    min : minute

    ug : microgramme

    °C : degré Celsius

    < : Inferieur

    INTRODUCTION :

    Dans un marché mondial de commercialisation des vins de plus en plus concurrentiel, la tendance actuelle pour les producteurs est d'augmenter leur compétitivité en limitant les pertes, en produisant le plus rapidement possible des vins aux caractéristiques répondant à un cahier des charges précis. Dans cet objectif, améliorer la maîtrise du procédé de fabrication est devenu obligatoire pour les producteurs. Ainsi, depuis quelques décennies, de nombreuses études sont menées sur le processus fermentaire dans le domaine oenologique. Effectuée pendant des siècles de façon empirique, la fermentation alcoolique lors de l'élaboration du vin ou de toute autre boisson alcoolisée reste encore aujourd'hui mal maîtrisée (AKIN, 2008).

    Cette étape de fermentation alcoolique est complexe car elle fait intervenir de nombreux processus biologiques, chimiques, physiques qui entraînent une évolution continuelle de la composition et des propriétés physico-chimiques du milieu. Dans cette perspective, l'étude de l'évolution des paramètres physico-chimiques tels que le pH, le degré Brix et le degré alcoolique lors de la fermentation alcoolique des jus sucré s'avère être déterminant dans le cadre de l'optimisation des procédés de fabrication des boissons alcoolisées et éventuellement permettre de mieux assimiler les phénomènes physiques et/ou chimiques qui accompagnent cette fermentation.

    En outre, la République du Congo est fortement tributaire des importations de produits alimentaires, agro-pastoraux et halieutiques. Le niveau de ces importations qui était de 163 milliards en 2010, avoisine en 2011 le montant de 200 milliards de FCFA pour une population estimée à 4,1 millions d'habitants. En réponse à cette situation préoccupante, tous les documents d'orientation politique, portant sur le développement de ces secteurs, mettent un accent particulier sur la relance des activités agricoles afin de participer à la diversification et à l'industrialisation de l'économie congolaise et assurer ainsi la sécurité alimentaire et la réduction de la pauvreté.

    L'objectif général de ce travail est de contribuer à la valorisation des produits locaux. Les objectifs spécifiques sont les suivants :

    ? Produire le jus ;

    ? Réaliser la fermentation alcoolique ;

    ? Déterminer les paramètres physico-chimiques ;

    ? Apprécier la qualité organoleptique.

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020 1

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    2

    Après une introduction, nous présenterons au premier chapitre une revue bibliographique, au deuxième chapitre les matériels et méthodes, au troisième chapitre les résultats et interprétations et nous terminerons par une conclusion et perspectives.

    CHAPITRE I : REVUE BIBLIOGRAPHIQUE

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    I-1. Hibiscus sabdariffa L

    I-1.1. Description et origine de l'Hibiscus sabdariffa

    L'Hibiscus sabdariffa est une plante herbacée de la famille des malvacées comme le gombo ou le coton, qui pousse exclusivement dans les zones tropicales. Ornée de calices et de feuilles vertes (lancéolées) ou rouge vif, elle peut atteindre 2 à 4 mètres de haut selon ses conditions de vie, peu ramifiée, vigoureuse et très fibreuse.

    L'Hibiscus sabdariffa L., était cultivé à l'origine en Afrique (DALZIEL, 1973). Il a été largement distribué dans les zones tropicales et subtropicales, des Indes occidentales à l'Amérique centrale et en Asie, où l'espèce s'est adaptée. L'Hibiscus sabdariffa est présent en Thaïlande, au Vietnam, en Malaisie, en Chine, au Soudan et en Mexique. Il est aussi présent dans d'autres pays, tels que l'Egypte, la Tanzanie, le Sénégal, le Mali, le Tchad et la Jamaïque, qui en produit en petite quantité (Endrias, 2006). Cette variété d'Hibiscus est selon les régions appelée roselle(Anglais), groseille de Noël ou oseille de Guinée(Français). Le nom de bissap vient du wolof (langue la plus parlée au Sénégal). Traditionnellement, ce sont les femmes qui récoltent ses calices.

    I-1.2. Les variétés d'Hibiscus sabdariffa

    Plus de 500 espèces d'Hibiscus sont connues dans le monde. La majorité des variétés sont utilisées comme plantes ornementales à l'exception du type sabdariffa dont deux variétés ont été identifiées. Il s'agit d'Hibiscus sabdariffa variété altissima et d'Hibiscus sabdariffa variété sabdariffa L (CI55E et al., 2009). Ce travail est essentiellement basé sur la variété sabdariffa L.

    I-1.3. Valeurs nutritionnelles et Utilisation de l'Hibiscus sabdariffa

    1. Valeurs nutritionnelles

    Valeur nutritionnelle pour une portion de 100g ( http://baobab-des-saveurs.com) :

    · Energie : 350kcal

    · Protéines : 7,2 à 9g

    · Glucides : 74,1 g

    · Lipides : 2,6g

    · Fibres alimentaires : 12 à 15g

    · Eau : 9,2 à 15g

    · Anthocyanes : 1 à 5g

    · Vitamines : C (7 à 31mg) ; B1 (0,12mg) ; B2 (0,28 à 0,45mg) ; PP (3,8mg) ; A (63ui)

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    ? Minéraux (dont Ca, Fe et P) : 9 à 10g ? Acidité : 21 à 27%

    Le bissap est une source de vitamines PP ou B3. Aussi appelée niacine, la vitamine PP participe à de nombreuses réactions métabolique et contribue particulièrement à la production d'énergie à partir des glucides, des lipides, des protéines et de l'alcool que nous ingérons. La vitamine PP est un précurseur de coenzyme NAD+ lors de la fermentation alcoolique (Dassy, 2018).

    2. Utilisations

    Toutes les parties de la plantes (calices, feuilles et graines) d'Hibiscus sabdariffa sont utilisées soit dans l'alimentation humaine soit dans la médecine traditionnelle.

    ? Dans l'alimentation humaine

    L'espèce H. sabdariffa est utilisée dans l'alimentation humaine et dans l'industrie agro-alimentaire. La plante est exploitée pour ses feuilles, graines et calices.

    ? Calices

    Les calices, du fait de leur concentration élevée en acides gras, pectines, vitamine C et surtout en anthocyanes, constituent la partie de la plante la plus utilisée. Ils interviennent dans la production de boissons désaltérantes et tonifiantes sans alcool (CISSE et al., 2009). Eût égard à ses potentialités (goût, couleur, acidité), le jus d'Hibiscus sabdariffa peut être mélangé à d'autres jus de fruit: orange, ananas, goyave, tamarin, anacarde (KONAN, 2015). Le jus de bissap supplante merveilleusement certaines boissons occidentales (ENDRIAS, 2006). En outre, les extraits de calices sous forme de concentré ou de poudre sont utilisés comme colorants naturels dans les industries alimentaires (pâtisseries, jus de fruits, boissons etc.). La production de confiture, gelée et dessert à partir des calices est aussi largement répandue. Les calices sont utilisés également pour fabriquer une boisson fermentée alcoolisée qui s'apparenterait à du vin (CISSE et al., 2009) et possédant plus de 3 % de pectine, les calices d'H. sabdariffa ont été recommandés comme source de pectine pour l'industrie du préservatif (ENDRIAS, 2006).

    ? Graines

    Les graines d'H. sabdariffa sont riches en protéines et contiennent environ 20 % de matières grasses. Elles servent ainsi à la production d'huile, constituée essentiellement d'acides gras insaturés et riche en tocophérols. Elle peut entrer également dans la fabrication de savon et de produits cosmétiques.

    ? Feuilles

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    La composition des feuilles d'H. sabdariffa est également propice à leur utilisation dans l'alimentation humaine. Au Sénégal, ces feuilles (vertes) sont utilisées pour fabriquer une sauce aigre, épaisse, appelée « bëkëj », servie avec le riz au poisson. Au Mali, elles sont bouillies pour fabriquer des sauces accompagnant différents plats à base de tubercules.

    ? Dans la médecine traditionnelle

    La roselle est réputée pour être un anti-inflammatoire et un antiasthénique, adoucissante et antispasmodique, laxatif léger et diurétique, antiseptique urinaire et antihypertenseur ( https://www.fasodia.com). Elle a une action antispasmodique, relâchant les muscles lisses de l'utérus et de l'intestin. L'H. sabdariffa a une action hypotensive en raison du pouvoir d'abaisser la pression sanguine sans effet secondaire (Ngom, 2001). Cette plante médicinale est très bénéfique dans le traitement pour diminuer le mauvais cholestérol, son action antiseptique est d'une grande efficacité dans les colibacilloses chroniques, elle apaise les inflammations des voies respiratoires, diminue les états fiévreux et la toux, réduit les douleurs menstruelles. De plus par sa richesse en vitamine C, il remonte les organismes fatigués; Il agit sur les spasmes gastro-intestinaux et les douleurs d'estomac, bénéfique pour le foie il serait d'une aide précieuse dans les problèmes hépatiques, il agit dans les cas de diabète, facilite la digestion et renforce l'élimination des toxines des reins ( https://www.fasodia.com).

    Plusieurs de ces propriétés médicinales sont attribuées aux concentrations élevées en acides organiques, notamment en acide malique, ascorbique et acide citrique. D'autres activités biologiques seraient liées aux composés anthocyaniques qui sont dotés d'activités antioxydantes importantes. Cependant, en dépit de l'utilisation populaire de cette plante dans le domaine de la pharmacologie, peu ou pas d'informations ont été fournies jusqu'à présent sur sa toxicité. Des travaux complémentaires seraient donc nécessaires dans ce domaine. (CI55E et al., 2009).

    I-2. Fermentation alcoolique

    La fermentation alcoolique est un phénomène chimique connu depuis longtemps. Elle est définie comme la transformation des matières organiques sous l'action d'un ferment, soit en présence de l'air (fermentation aérobie) soit à l'abri de l'air (fermentation anaérobie). Ces transformations peuvent être des décompositions ou des oxydations ou des hydratations. Elle a lieu dans un milieu à pH acide et riche en sucre. Le glucose est utilisé comme substrat énergétique pour synthétiser de l'éthanol et du dioxyde de carbone (CO2). Cette fermentation

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    est réalisée principalement par des levures, le plus utilisé étant Saccharomyces cerevisiae et par certaines bactéries appartenant au genre Zymomonas.

    La fermentation alcoolique fait partie du processus de fabrication des boissons alcoolisées comme la bière, le whisky, le cidre, mais aussi des boissons à base de riz fermenté comme le saké. Elle entre également dans le processus de panification utilisée en boulangerie-pâtisserie où la production du CO2 est plus utile.

    Le bilan de la réaction est comme suit :

    C6H1206 + 2Pi + 2ADP 2CO2 + 2CH3CH2OH + 2ATP

    Outre la production de l'éthanol et du dioxyde de carbone, la fermentation alcoolique conduit à la formation des produits secondaires tels que les alcools supérieurs, les composés aromatiques.

    I-3. Paramètres influençant la fermentation alcoolique

    I-3.1. Température

    La grande majorité des levures ne se développe et n'est activée que dans une étroite fourchette de 25°C à 35°C. L'activité des levures cesse à une certaine température, c'est-à-dire si la température dépasse 37°C, il y aura risque d'arrêt de fermentation par contre si elle est trop basse (<25°C) le démarrage de la fermentation est difficile. Le milieu idéal pour la fermentation est de 30°C à 33°C (RAHERIMANDIMBY, 2003).

    I-3.2. Oxygène

    Bien que la fermentation soit un phénomène anaérobie, les levures ont besoin d'un peu d'oxygène pour se multiplier et synthétiser des stérols et acides gras saturés qui permettent une meilleure résistance à l'éthanol (et donc une survie améliorée).

    Dans les conditions anaérobioses, la levure S. cerevisiae nécessite un apport de 5 à 7mg/l d'oxygène pour permettre une croissance optimale et une viabilité forte tout au long de la fermentation

    I-3.3. Ethanol

    L'éthanol est une petite molécule amphiphile qui traverse facilement la bicouche lipidique de la membrane cellulaire, par ailleurs imperméable aux molécules hydrophiles (DASSY, 2018). La production d'éthanol par S. cerevisiae au cours de la fermentation alcoolique constitue une

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    importante pression de sélection, et permet en partie d'expliquer la prédominance de cette espèce sur d'autres (HENSCHKE, 1997). L'éthanol modifie les systèmes de transports actifs de la cellule ralentissant ainsi l'assimilation de composés azotés ce qui paralyse la levure, et en interagissant avec l'eau il diminue la stabilité de la membrane, la rend plus perméable, et réduit la solubilité de certaines protéines (HENSCHKE et JIRANEK, 1993 ; DASSY, 2018). Il peut de plus être oxydé en acétaldéhyde et en acétate, qui ont eux aussi divers effets cellulaires. Selon le type de cellule et son état physiologique, l'éthanol est toxique pour des concentrations de 5 à 18 g/100mL de solution. La fermentation alcoolique est généralement inhibée à partir de 11% d'éthanol. Certaines souches de levure ont une résistance accrue à l'éthanol, à la suite d'une modification de la composition lipidique de leur membrane (DASSY, 2018).

    I-4. Les boissons

    I-4.1. Les boissons alcoolisées

    1. Définition

    Une boisson alcoolisée (ou alcoolique) est une boisson qui contient de l'éthanol. Le goût, mais aussi l'effet psychodysleptique de l'éthanol peuvent participer à l'appétence pour ce type de boisson et favoriser sa consommation. Le tableau I ci-dessous donne quelques exemples des boissons alcoolisées.

    TABLEAU I : EXEMPLES DE FABRICATION DE BOISSONS ALCOOLISEES

    Source : Edu.mnhn.fr

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    2. Le vin

    Le vin est le produit obtenu exclusivement par la fermentation alcoolique, totale ou partielle, de raisins frais, foulés ou non, ou de moûts de raisin (RIBEREAU-GAYON, 1973). Mais en fonction de la nature et de l'origine du raisin et des techniques de vinification, les produits sont très différents (RENOUF et al., 2006). On parle de vin-fruit pour distinguer ceux obtenus à base de fruits autres que le raisin (MIBANDZA, 2013).

    I.4.2. Les boissons non alcoolisées

    1. Définition

    Une boisson non alcoolisée est une boisson froide, par définition ne contient pas d'alcool. Cette catégorie de boissons regroupe :

    ? L'eau ;

    ? Les jus de fruits ;

    ? Les sirops

    ? Les boissons rafraîchissantes sans alcool.

    2. Les jus de fruits

    a. Définition

    La norme générale codex (CODEX STAN 247-2005) définit le jus de fruits comme le liquide non fermenté, mais fermentescible, tiré de la partie comestible de fruits sains, parvenus au degré de maturation approprié et frais ou conservés dans des conditions saines conformément aux dispositions pertinentes de la commission de Codex alimentarius.

    b. Obtention

    Le jus est obtenu par des procédés adaptés qui conservent les caractéristiques physiques, chimiques, organoleptiques et nutritionnelles essentielles du fruit dont il provient.

    Le jus peut être trouble ou clair et peut contenir des substances aromatiques et des composés volatils restitués, à condition qu'ils proviennent des mêmes espèces de fruits et soient obtenus par des moyens physiques adaptés. De la pulpe et des cellules obtenues par des moyens physiques adaptés à partir du même type de fruits peuvent être ajoutées. Un jus simple est obtenu à partir d'un seul type de fruits. Un jus mélangé est obtenu en mélangeant deux ou plusieurs jus et purées obtenus à partir de différents types de fruits.

    I-5. Pasteurisation

    I-5.1. Définition et principe

    La pasteurisation est un procédé thermique qui consiste à chauffer un produit pendant quelques minutes à des températures généralement inférieures à 100°C. De ce fait, elle ne permet de détruire que les formes végétatives des microorganismes et conduit à des produits stables mais qui doivent être conservés à des températures basses (réfrigération). De plus, il existe un barème de pasteurisation unique à chaque produit qui rend cette opération spécifique à chaque produit (ROUX, 1994).

    Si le barème de pasteurisation n'est pas respecté, il peut y avoir plusieurs conséquences (GUERRA et al., 1998) :

    > Sur pasteurisation

    · Température trop élevé ou temps de séjour trop long ;

    · Entraine un goût de « cuit » ;

    · Réaction de brunissement non enzymatique > Sous pasteurisation

    · Température trop basse ou temps de séjour trop court ;

    · Risque de ne pas détruire toute la flore pathogène ;

    I-5.2. Différents types de pasteurisation

    On distingue quatre (04) types de traitement (TOUADI, 2020):

    > Pasteurisation basse

    Elle se fait à une température de 63°C à 65°C pendant environ 30min. elle est utilisée pour les oeufs et les appareils à glaces. Celle-ci a pratiquement disparu au profit de la pasteurisation haute.

    > Pasteurisation haute

    Elle se fait à une température de 72°C à 85°C pendant 5 à 20 secondes. Elle est employée pour le lait pasteurisé, et le lait utilisé pour la fabrication du yaourt, fromages, desserts lactés frais et semi conserves.

    > Pasteurisation en vrac

    Elle est utilisée pour les produits tels que le lait pasteurisé, la crème destinée à la beurrerie et lait au séchage.

    > Pasteurisation en bouteille

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020 9

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020

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    Elle est utilisée pour les liquides comme la bière, le cidre, le jus de fruits et quelques fois le vin. Après capsulage, les bouteilles sont soumises à une aspiration d'eau de plus en plus chaude (entre 65°C et 75°C). Elles séjournent à cette température pendant 20 à 30min puis elles sont refroidies par l'eau de plus en plus froide. Ce type de pasteurisation nécessite de gros appareils et tend à être remplacer par la pasteurisation en vrac.

    I-6. Saccharomyces cerevisiae

    I-6.1. Description et caractéristiques

    Saccharomyces cerevisiae (aussi appelé levure de bière ou levure de boulanger) est un eucaryote unicellulaire, se présentant sous forme de cellules isolées, ovoïdes à arrondies, longues de 6 à 12 um et larges de 6 à 8um, d'un diamètre compris entre 5 à 10um. À l'état naturel, on retrouve Saccharomyces cerevisiae principalement sur les fruits comme les raisins et sur la grande majorité des écorces d'arbres (par exemple sur le chêne). Les S. cerevisiae sont l'espèce le plus utilisé en fermentation alcoolique. Il appartient à la famille des Saccharomycetaceae et au genre Saccharomyces. Il possède un génome à double brin linéaire, de treize (13) millions de paires de bases partagées en seize (16) chromosomes (qui sont entièrement séquencés). Il se réplique rapidement à 30°C, environ toutes les deux (02) heures.

    Cette levure présente la particularité de ne présenter que peu ou pas d'effet Pasteur en présence de fortes concentrations en glucose (DASSY, 2018); ceci étant dû à une action plus forte de l'effet cabtrée. Il a un bon pouvoir alcoogène (17°) et a un potentiel enzymatique, aromatique généralement intéressant. L'action sur les sucres fermentescibles est rapide et complète. Cette souche de levure disparaît rapidement enfin de fermentation (RAHERIMANDIMBY, 2003).

    I-6.2. Taxonomie

    Le tableau II ci-dessous donne la classification de S. cerevisiae selon E.C .Hansen, 1883.

    TABLEAU II : CLASSIFICATION DE SACCHAROMYCES CEREVISIAE

    Saccharomyces cerevisiae

    Règne

    Fungi

    Division

    Ascomycota

    Sous-division

    Saccharomycotina

    Classe

    Saccharomycets

    Ordre

    Saccharomycetales

    Famille

    Saccharomycetaceae

    Genre

    Saccharomyces

    Espèce

    Saccharomyces cerevisiae

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020

    11

    I-6.3. Reproduction

    Selon HERSKOWITZ (1988) le cycle cellulaire de S. cerevisiae comprend deux modes de reproduction. Le premier est la prolifération cellulaire ou bourgeonnement. C'est un processus par lequel une cellule donne naissance à une autre cellule essentiellement identique. Tandis que le second est la transition de la ploïdie au cours du cycle cellulaire ou reproduction sexuée. Selon les conditions environnementales externes, les cellules haploïdes et diploïdes débutant la phase G1 «pré-Start» doivent faire un choix. Si la quantité de nutriments est suffisante, elles poursuivent le cycle cellulaire mitotique à ce niveau il s'agit de la reproduction asexuée. Par contre, si elles jugent que la quantité de nutriments est insuffisante (glucose) et qu'elles détectent la présence du phéromones sexuelles, les cellules haploïdes entrent alors en mode de conjugaison sexuelle. Donc, on parle de la reproduction sexuée. Tandis que les cellules diploïdes entrent en mode de sporulation (HERSKOWITZ et al. , 1988).

    I-6.4. Utilisations

    La levure Saccharomyces cerevisiae occupe une place privilégiée dans les activités industrielles. Elle est utilisée par l'homme depuis des millénaires pour la production de boissons et produits fermentés (vin, bière, pain) et joue un rôle très important dans l'industrie agroalimentaire comme agent de fermentation et pour l'élaboration de produits dérivés. De nos jours, la levure est également largement utilisée comme usine cellulaire pour la production de molécules d'intérêt. Dans le domaine pharmaceutique et médical, elle est utilisée pour la production de vaccins, de pro biotiques ou de protéines comme l'insuline (ROBERTS and OLIVER, 2010). Elle joue également un rôle clé dans l'industrie chimique pour la synthèse de produits de commodité comme l'acide lactique pour la production des plastiques et dans le domaine des énergies renouvelables et des biocarburants (CELTON, 2011).

    CHAPITRE II : MATERIELS ET METHODES

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020

    II-1. Matériels

    1-1. Matériels de laboratoire

    Le matériel de laboratoire comprend les outils et ustensiles que nous avons utilisés pour la production et les différentes analyses de notre boisson alcoolisée. Le matériel utilisé est répertorié dans le tableau III.

    TABLEAU III : MATERIELS DE LABORATOIRE

    Matériels

    Références/Capacités

    Utilisation(s)

    Réfractomètre

    FG-103 Brix 0-32%

    Mesurer le taux de sucre

    Balance à précision 10-1 et

    10-3

    T500 ; YS1305069

    Peser avec précision

    pH mètre

    POCKET-SIZED

    Mesurer le pH

    Thermomètre

    4-1978 r. T-2

    Mesurer la température

    Distillateur

    ELECTRIC-HEATED
    STAINLESS STEEL
    DISTILLER

    Distiller l'eau de robinet

    Verrerie (bécher, fiole
    jaugée, Erlenmeyer,
    burette, éprouvette graduée,
    ballon)

    (100ml, 100, 200 et 250ml,
    100ml, 50ml, 10, 50 et
    500ml, 250ml)

    Contenir et/ou mesurer les
    échantillons

    Etuve

    KENTON

    Chauffer les solutions

    Agitateur magnétique et
    Barreau aimanté

    78-1 Magnetism Heating

    Agiter et homogénéiser les
    solutions

    Pissette

    BS 500

    Rincer la verrerie

    Poire

     

    Prélever l'échantillon

    Dispositif de distillation

     

    Produire de l'éthanol

    Autres petits matériels
    (Seau avec pompe, cuvette
    en plastique)

    (10L, 20L)

    Contenir et servir à la
    fabrication du produit

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    14

    Mousseline

     
     

    Filtrer le jus et la boisson
    alcoolisée

    Four Pasteur

    FALC

    Stériliser les bouteilles

    Bain mari

    HH-S

    DIGITAL

    THERMOSTATIC WATER
    BATH

    Pasteuriser le vin

    1-2. Réactifs de laboratoire

    Comme pour le matériel de laboratoire, les produits que nous avons utilisés pendant la fabrication et les analyses sont indiqués dans le tableau IV.

    TABLEAU IV : REACTIFS DE LABORATOIRE

    Produits

    Utilisation(s)

    Eau distillée

    Nettoyer la verrerie et diluer les solutions

    Solution tampon

    Calibrer le pH mètre

    Permanganate de Potassium

    Réagir avec l'éthanol

    Sulfate de fer II

    Titrer l'excès de permanganate de potassium

    Acide sulfurique concentré à 98%

    Catalyser la réaction entre l'éthanol et le
    permanganate de potassium

    1-3. Matériel biologique

    Le matériel biologique est constitué d'Hibiscus sabdariffa (photo 1 ci-dessous) que nous avons acheté au marché Mikalou.

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020

    15

    PHOTO 1 : HIBISCUS SABDARIFFA (Source : DZANVOULA)

    II-2. METHODES

    II-2.1. Préparation de la boisson alcoolisée

    Pour la préparation de la boisson alcoolisée, nous avons procédé en trois (03) étapes :

    ? Préparation du jus ;

    ? Préparation du moût ;

    ? Fermentation alcoolique.

    1. Préparation du jus

    Pour la préparation du jus à base d'H. sabdariffa, nous avons commencé par peser la matière première dont 250g ont été versé dans une marmite inoxydable contenant dix (10) litres d'eau chaude préalablement chauffée à 95 ° C pendant 30 min. Nous avons laissé bouillir le contenu pendant 1h 30min ceci afin de favoriser une extraction complète du jus.

    Après refroidissement, nous avons filtré trois fois le mélange à l'aide d'un tissu (mousseline) afin d'obtenir un jus propre et limpide. Pour finir nous y avons ajouté 1300g de sucre.

    Le diagramme de fabrication est illustré par la figure 1 ci-dessous.

    Jus sucré

    Jus de bissap pur

    Sucre

    Réception du bissap

    Pesage

    250g de bissap

    Extraction à chaud

    Homogénéisation

    Refroidissement

    Filtrage

    Matières en suspension

    FIGURE 1 : DIAGRAMME DE FABRICATION DU JUS D'HIBISCUS SABDARIFFA

    16

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    2. HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020

    17

    Préparation du moût

    Nous avons préparé le moût à partir du Saccharomyces cerevisiae, commercialisé sous forme de levure sèche par le label saf-instant, présenté sur la photo 2.

    Premièrement, nous avons pesé 150g de sucre que nous avons mélangé à 585ml d'eau tiède. Puis à l'aide d'une louche inoxydable nous avons homogénéisé.

    Deuxièmement, nous avons pesé 5g de la levure Saccharomyces cerevisiae à mettre dans le mélange précédemment homogénéisé.

    PHOTO 2 : SACCHAROMYCES CEREVISIAE

    (Source : DZANVOULA)

    3. Fermentation

    Après la fabrication de notre jus, nous avons effectué deux fermentations.

    ? La fermentation primaire

    Pour effectuer la fermentation primaire ou principale, nous avons ensemencé la levure Saccharomyces cerevisiae dans le jus afin de favoriser la fermentation alcoolique (figure 2 ci-dessous).

    Le suivi de cette fermentation a été réalisé pendant seize (16) jours, soit deux (02) semaines et deux jours.

    ? Le soutirage

    Le soutirage est une technique utilisée lors de l'élaboration de la bière ou du vin qui consiste à changer une boisson fermentée afin d'éliminer les particules qui se sont déposées au fond.

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020

    18

    Cette opération met fin à la fermentation primaire et marque le début de la fermentation secondaire ou de garde.

    Nous avons effectué deux soutirages : ? Premier soutirage

    Nous avons filtré trois fois notre boisson alcoolisée à l'aide d'une mousseline pendant 9 min, à raison de 3min par filtrage.

    Le suivi de la fermentation après le premier soutirage a été réalisé pendant huit (08) jours. ? Deuxième soutirage

    A l'aide d'une éprouvette graduée de 500ml, nous avons premièrement effectué quatorze (14) mesures de notre boisson alcoolisée (soit un volume de 7 litres) tout en effectuant une filtration à l'aide d'une mousseline. Ensuite, nous avons pesé 70g de blanc d'oeuf que nous avons ajouté dans notre boisson (soit 10g/l de boisson). Enfin, nous avons homogénéisé à l'aide d'une louche inoxydable pendant 10 minutes. Ainsi ce poursuit la fermentation de garde.

    Il sied de noter que l'ajout du blanc d'oeuf constitue l'opération de collage.

    Jus sucré

    Levure Saccharomyces cerevisiae

    Ensemencement

    Maturation

    Lavage et stérilisation des bouteilles

    Fermentation
    alcoolique

    1er soutirage

    Filtration

    2em soutirage

    Conditionnement

    Pasteurisation

    Vin d'Hibiscus sabdariffa

    Etiquetage

    Blanc d'oeuf

    Homogénéisation

    FIGURE 2 : DIAGRAMME DE FABRICATION DE LA BOISSON ALCOOLISEE

    19

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    ? Pasteurisation

    Pour pasteuriser notre boisson alcoolisée, nous avons utilisé le bain mari. Après stérilisation des bouteilles au four pasteur, nous les avons remplies du vin et encapsulées. Les bouteilles contenant du vin ont été placées au bain mari à 90°C pendant 10min, puis refroidies avec de l'eau plate pendant 15min.

    II-2.2 ANALYSES SENSORIELLES ET PHYSICO-CHIMIQUES

    II-2.2.1 Analyses sensorielles

    L'analyse sensorielle ou métrologie sensorielle, représente l'ensemble des méthodes, des outils et des instruments qui permettent d'évaluer les caractères organoleptiques d'un produit.

    Pour effectuer l'évaluation sensorielle, nous avons eu recours aux différents organes :

    ? De la vue pour apprécier et déterminer la couleur ; ? De l'odorat pour apprécier l'odeur ;

    ? Du goût pour apprécier le goût.

    Dans ce travail nous avons réalisé un test hédonique et un test descriptif pour évaluer notre boisson alcoolisée. Le premier vise à déterminer dans quelle mesure notre produit plaît ou déplaît aux dégustateurs et le deuxième vise à déterminer l'intensité du stimulus perçu par les dégustateurs. Pour ce faire, nous avons utilisé l'être humain comme instrument de mesure en constituant un panel de 17 dégustateurs composé d'hommes (11) et de femmes (06) âgés de 20ans à 64ans.

    II.2.2.2 Analyses physico-chimiques

    Les analyses physico-chimiques font référence à toutes les actions de détermination d'une valeur sur un échantillon, qu'il s'agisse d'analyses, de mesures, d'observations etc. faites au laboratoire ou sur le site de la station de mesure.

    1. Mesure du pH

    Le pH est la mesure logarithmique de la concentration en ions hydrogènes (SORENSEN, 1909). Il intervient sur les différentes réactions qui marquent les propriétés du vin comme sa résistance à l'oxydation, ses caractéristiques chromatiques, sa stabilité protéique ou microbienne etc. (AKIN, 2009)

    Les mesures des valeurs du pH de nos produits ont été réalisées selon la méthode décrite par LANNABI (2015). Pour cela, nous avons utilisé 75ml de l'échantillon réparties entre trois (03) béchers à raison de 25ml par bécher. La mesure a été faite à l'aide d'un pH-mètre digital muni

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020 20

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    21

    d'une électrode combinée. Le calibrage de l'appareil a été obtenu avec une solution tampon de pH 7,41

    2. Mesure du degré Brix

    L'échelle du degré Brix sert à mesurer en degré Brix (°B ou °Bx) la fraction de saccharose dans un liquide c'est-à-dire le pourcentage de matière sèche soluble. Plus le °B est élevé, plus l'échantillon est sucré. Pour déterminer le degré Brix, nous avons procédé par un prélèvement du jus de bissap que nous avons recueillie dans un bécher. Puis nous avons mis au frais afin d'abaisser la température à 20°C (température vérifiée à l'aide d'un thermomètre). Ensuite, à l'aide d'une poire nous avons prélevé une goutte du liquide contenu dans le bécher que nous avons déposé sur le prisme du réfractomètre. Enfin, nous avons lu le résultat à travers l'oculaire. La valeur du °B correspond à la ligne médiane entre le rose dégradé et le bleu sur la colonne de l'échelle.

    3. Degré alcoolique

    Le degré alcoolique ou Titre alcoométrique volumique (TAV) est égal au nombre de litres d'éthanol contenu dans 100 litres de vin, ces volumes étant tous deux mesurés à la température de 20°C. Son symbole est «% vol »

    Le calcul du degré alcoolique a été réalisé par la méthode du titrage indirect. Pour ce faire, trois (03) étapes ont été soulignées: la distillation du vin, la réaction entre l'éthanol et le permanganate de potassium (KMnO4) puis le titrage de l'excès de KMnO4.

    ? Distillation :

    Pour cela, nous avons procédé par un prélèvement de 10ml de notre échantillon mis dans un bécher ; puis nous avons dilué avec 60ml d'eau distillée. Ensuite, nous avons transvasé le tout dans un ballon de 250ml et placé sur un chauffe ballon afin d'effectuer la distillation. Enfin, Le distillat a été recueilli dans une éprouvette graduée de 50ml puis transféré dans une fiole jaugée de 100ml et complété au trait de jauge avec de l'eau distillée. On obtient ainsi tout l'éthanol contenu dans notre échantillon, dilué dix (10) fois.

    ? Réaction entre l'éthanol et le permanganate de potassium (KMnO4) :

    Dans un Erlenmeyer de 100ml, nous avons mélangé 10ml de l'éthanol recueilli avec 20ml de permanganate de potassium et 5ml d'acide sulfurique concentré. Puis nous avons placé l'Erlenmeyer à l'étuve à 40°C pendant 20min.

    Ici, l'acide sulfurique sert de catalyseur.

    ? Titrage de l'excès de KMnO4 :

    L'excès de permanganate de potassium a été titré avec la solution de sulfate de fer II (Fe2SO4). L'équivalence est atteinte au virage de la solution violette au clair. Le volume à l'équivalence est noté et servira dans les calculs.

    Enfin, à l'aide d'un tableau Excel nous avons effectué des calculs permettant de déterminer la valeur moyenne du degré alcoolique.

    Nous tenons à signaler que le TAV peut être directement mesuré à l'aide d'un alcoomètre.

    22

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    CHAPITRE III : RESULTATS ET INTERPRETATIONS

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    III-1. Fabrication du jus et de la boisson alcoolisée à base d'Hibiscus sabdariffa

    Le jus et la boisson alcoolisée à base d'H. sabdariffa produits au laboratoire sont présentés respectivement sur les photo 3 et 4 ci-dessous

    Photo 3 : Jus d'Hibiscus sabdariffa Photo 4: Boisson alcoolisée à base d'H. sabdariffa

    (Source : DZANVOULA)

    III-2. Paramètres sensoriels et physico-chimiques

    III-2.1. Paramètres sensoriels

    III-2.1.1. Paramètres sensoriels du jus d'Hibiscus sabdariffa

    Les résultats des analyses sensorielles du jus à base d'H. sabdariffa sont représentés dans le tableau V.

    TABLEAU V : PARAMETRES SENSORIELS DU JUS D'HIBISCUS SABDARIFFA

    Echantillon

    Couleur

    Odeur

    Saveur

    Jus de bissap

    Rouge sombre

    Oseille

    Sucré, acidulé

    III-2.1.2. Paramètres sensoriels de la boisson alcoolisée à base d'Hibiscus sabdariffa Les résultats globaux des analyses sensorielles de la boisson alcoolisée à base d'H. sabdariffa sont représentés dans le tableau VI et les résultats saillants sont illustrés sur la figure 3 ci-dessous.

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    24

    TABLEAU VI : PARAMETRES SENSORIELS DE LA BOISSON ALCOOLISEE EN FIN DE

    FERMENTATION A BASE D'HIBISCUS SABDARIFFA

    Boisson alcoolisée à base d'Hibiscus sabdariffa

    Paramètres

    Appréciation

    % des hommes

    % des femmes

    Couleur

    Très bonne

    0,000%

    16,666%

    Bonne

    63,636%

    83,333%

    Mauvaise

    36,363%

    0,000%

    Goût

    J'aime beaucoup

    9,090%

    0,000%

    J'aime

    63,636%

    50,000%

    Je n'aime pas

    27,272%

    50,000%

    Acidité

    Pas acide

    36,363%

    16,666%

    Ce qu'il faut

    63,636%

    33,333%

    Très acide

    0,000%

    50,000%

    Odeur de vin

    Faiblement prononcée

    54,545%

    0,000%

    Moyennement prononcée

    18,181%

    66,666%

    Très prononcée

    27,272%

    33,333%

    Ce tableau montre que sur le paramètre de la couleur, 1 dégustateur sur les 17 testés trouve que la boisson alcoolisée à base d'Hibiscus sabdariffa a une très bonne couleur, 12 la trouvent bonne et 4 la trouvent mauvaise.

    Sur le paramètre du goût, 1 dégustateur sur les 17 testés trouve que la boisson alcoolisée à base d'Hibiscus sabdariffa a un très bon goût, 10 trouvent qu'elle a bon goût et 6 trouvent qu'elle a mauvais goût.

    Sur le paramètre de l'Odeur du vin, 6 dégustateurs sur les 17 testés trouvent que l'odeur de vin est faiblement prononcée, 6 trouvent qu'elle est moyennement prononcée et 5 trouvent qu'elle est fortement prononcée.

    Sur le paramètre de l'acidité, 4 dégustateurs sur les 17 testés trouvent que la boisson alcoolisée à base d'Hibiscus sabdariffa n'est pas acide, 9 trouvent que l'acidité de ce vin leur convient et 3 dégustateurs trouvent que ce vin est très acide.

    Ces différents avis d'appréciation sont dus à la variance inter individuel entre les dégustateurs.

    0,8

    0,6

    0,4

    0,2

    0

    1

    % des hommes % des femmes

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020

    25

    FIGURE 3 : POINTS FOCAUX DE L'EVALUATION SENSORIELLE

    La figure 3 ci-dessus montre les résultats saillants de l'analyse sensorielle de la boisson alcoolisée à base d'Hibiscus sabdariffa.

    On note que la couleur et le goût de la boisson alcoolisée sont très bien appréciés tant par les hommes que par les femmes alors que pour l'acidité et l'odeur du vin il y'a un nombre plus important des femmes qui trouvent que la boisson est très acide et l'odeur de vin moyennement prononcé. Par contre les hommes trouvent que la boisson alcoolisée à base d'Hibiscus sabdariffa a une acidité satisfaisante mais l'odeur de vin est faiblement prononcée. Ces résultats montrent que sur la base du genre les femmes sont plus sensibles à l'acidité et au taux d'alcool, élément clé de l'odeur du vin que les hommes.

    III-2.2 Paramètres physico-chimiques

    Les résultats des paramètres physico-chimiques (degré alcoolique et degré Brix) sont donnés sur les figures 4, 6 et 8 par contre ceux du pH sont donnés sur les figures 5, 7 et 9 ci-dessous.

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    26

    18 16 14 12 10 8 6 4 2 0

     
     

    0 4 8 12

    Jours

    Degré Brix Degré alcoolique

    FIGURE 4 : EVOLUTION DU DEGRE BRIX ET DU DEGRE ALCOOLIQUE LES 12 PREMIERS JOURS DE FERMENTATION ALCOOLIQUE

    La figure 4 présente les courbes montrant l'évolution du degré alcoolique et du degré Brix en 12 jours de la boisson alcoolisée.

    Pour le degré alcoolique, les valeurs augmentent du 1er au 12ème jour (de 0 à 5,41). Cette augmentation est due à une forte production d'alcool (éthanol).

    Pour le degré Brix les valeurs diminuent du 1er au 12ème jour. Cette diminution se traduit par la consommation abondante du sucre par Saccharomyces cerevisiae.

    Ces résultats sont similaires à ceux trouvés par MIBANDZA (2013), travaux portant sur la fabrication du vin à base des calices d'Hibiscus sabdariffa L.

    0 4 8 12

    Jours

    pH

    2,9

    2,8

    2,8

    2,7

    2,7

    2,6

    2,6

    2,5

    2,5

    2,4

    2,4

    FIGURE 5 : EVOLUTION DU PH LES 12 PREMIERS JOURS DE FERMENTATION ALCOOLIQUE

    La figure 5 ci-dessus présente la courbe montrant l'évolution du pH en 12 jours de la boisson alcoolisée.

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020

    27

    Les valeurs du pH augmentent du 1er au 12ème jour, de 2,4 à 2,8. Bien que les valeurs du pH augmentent, la boisson alcoolisée est toujours acide. L'acidité est un indicateur pour la bonne conservation du produit.

    Ces résultats diffèrent légèrement d'avec ceux trouvés par DZIENGUE (2019) travaux portant sur l'étude comparative de deux ferments (Saccharomyces cerevisiae et Zea mays) dans la fabrication des boissons alcoolisées à base de fruits locaux: Aframomum meleguetta où la variation du pH de la boisson fermentée par Saccharomyces cerevisiae présente deux tendances : une allure décroissante puis une allure croissante.

    16 20 24

    Jours

    Degré Brix Degré alcoolique

    10,00

    8,00

    6,00

    4,00

    2,00

    0,00

    FIGURE 6 : EVOLUTION DU DEGRE BRIX ET DU DEGRE ALCOOLIQUE DU 16EME AU 24EME JOUR

    DE FERMENTATION ALCOOLIQUE

    La figure 6 ci-dessus présente les courbes montrant l'évolution du degré alcoolique et du degré Brix les 12 jours précédents (du 16ème au 24ème jour) de la fermentation.

    Pour le degré Brix, la courbe a une allure descendante du 16ème au 24ème jour. Cette allure se traduit par la consommation abondante du sucre par Saccharomyces cerevisiae.

    Pour le degré alcoolique, la courbe est ascendante du 16ème au 24ème jour, pour des valeurs respectivement de 5,46 à 7,08. Cela s'explique par la production d'alcool (éthanol).

    Les résultats du degré Brix et du degré alcoolique sont similaires à ceux trouvés par TOUADI (2020) sur le suivi de la fermentation de la mélasse pour l'obtention des produits alcooliques (alcool médical, Eaux-de-vie et liqueur). La variation du degré Brix est aussi similaire aux travaux menés par DZIENGUE (2019).

     

    2,9 2,9 2,9 2,8 2,8 2,8 2,8 2,8 2,8

     
     
     

    pH

     
     
     
     
     
     
     

    16 20 24

    Jours

    FIGURE 7 : EVOLUTION DU PH DU 16EME AU 24EME JOUR DE FERMENTATION ALCOOLIQUE

    La figure 7 ci-dessus montre la courbe traduisant l'évolution du pH du 16ème au 24ème jour de la fermentation alcoolique.

    La courbe présente une légère augmentation de 2,8 à 2,9 et forme un plateau, respectivement pour le 20ème et le 24ème jour. Cette constance d'acidité peut être expliquée par la production de différents composés (CO2, éthanol etc.) au cours de la fermentation qui influencent la variation du pH.

    28 32 36 40

    Jours

    Degré Brix Degré alcoolique

    9,00

    8,00

    7,00

    6,00

    5,00

    4,00

    3,00

    2,00

    1,00

    0,00

    FIGURE 8 : EVOLUTION DU DEGRE BRIX ET DU DEGRE ALCOOLIQUE DU 28EME AU 40EME JOUR

    DE FERMENTATION ALCOOLIQUE

    La figure 8 ci-dessus présente les courbes montrant l'évolution du degré alcoolique et du degré Brix, à partir du 28ème au 40ème jour de la fermentation.

    La courbe du degré Brix est décroissante avec des faibles écarts (de 6,27 à 6,03). Ces faibles variations du degré Brix indiquent la non disponibilité du sucre (glucose) dans la boisson alcoolisée.

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    La courbe du degré alcoolique est légèrement croissante du 28ème jour au 40ème jour. Cela peut s'expliquer par une faible production d'alcool (éthanol).

    3,2

    pH

    3,1

    3,0

    2,9

    3,3

    2,8

    28 32 36 40

    Jours

    FIGURE 9 : EVOLUTION DU PH DU 28EME AU 40EME JOUR DE FERMENTATION ALCOOLIQUE

    La figure 9 montre la courbe traduisant l'évolution du pH du 28ème au 40ème jour de la fermentation.

    La courbe présente deux allures distinctes : une partie constante allant du 28ème au 32ème jour de la fermentation alcoolique ; une autre partie montrant une légère augmentation (de 3 à 3,2) du pH à partir du 36ème au 40ème jour. En dépit de ces faibles variations, le pH de la boisson alcoolisée est toujours acide.

    CONCLUSION ET PERSPECTIVES

    Notre travail a consisté en la fabrication de la boisson alcoolisée à base d'Hibiscus sabdariffa. Ce travail revêt un intérêt de valoriser les agro-ressources locales. Après avoir fabriqué le jus, nous avons suivi la fermentation primaire et la fermentation secondaire. Il s'en est suivi la maturation de notre boisson alcoolisée.

    La réalisation de ce mémoire a été un travail laborieux tout en étant enrichissant, compte tenu des connaissances acquises. Par ailleurs, le travail effectué dans la valorisation de l'Hibiscus sabdariffa a eu plusieurs objectifs.

    Dans l'ensemble, les objectifs fixés ont été atteints. Les résultats des analyses physico-chimiques étudiés ont montré une variation d'un paramètre à un autre. Le pH est globalement acide, le degré alcoolique a augmenté au cours de la fermentation, alors que le degré Brix diminue au cours du processus. La maturation a été suivie pour le vieillissement de notre boisson alcoolisée. Un panel de dégustateur a été consigné pour apprécier la qualité de la boisson alcoolisée fabriquée.

    Des essaies d'évaluations sensorielles, il en ressort que globalement le vin à base d'Hibiscus sabdariffa est apprécié par les consommateurs et ceci témoigne d'une différence moindre entre les vins à base de raisins et celui à base d'Hibiscus sabdariffa en terme de qualité organoleptique.

    Ainsi, à l'issue de ce travail, nous retenons qu'autant les produits importés, nos produits locaux sont d'excellents ingrédients dans la fabrication des boissons alcoolisées qui s'apparentent à du vin et peuvent donc dans un avenir proche faire l'objet des exportations à travers le monde ; réduisant en même temps le coût des importations liés aux boissons alcoolisées. Toutefois, cette étude qui ouvre des perspectives à la production des vins locaux est encore embryonnaire, mais elle révèle qu'avec la persévérance dans la recherche, et la levée des capitaux, il est possible de donner un nom au vin congolais, et de participer au développement du pays par l'employabilité de la jeunesse. De ce fait, nous proposons comme perspectives :

    ? Faire des analyses microbiologiques afin de garantir la stabilité et la qualité du produit d'un point de vue sanitaire ;

    ? Déterminer la date limite de consommation et l'apport énergétique du produit ;

    ? Faire une étude du marché en vue de commercialiser le produit fabriqué ;

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    ? Etudier d'autres voies de valorisation de l'Hibiscus sabdariffa telles que la fabrication des colorants alimentaires, l'extraction des anthocyanes contenus dans les calices d'H. sabdariffa pour une exploitation alimentaire ou médicale etc.

    En outre, dans le cadre de son fonctionnement et pour l'avancement de la recherche, il conviendrait que le LBTA puisse disposer de :

    ? Un alcoomètre permettant de faire une mesure directe du degré alcoolique ;

    ? Un service de documentation permettant d'enrichir les connaissances et de se référer aux travaux précédents ;

    ? Un approvisionnement régulier en produits et réactifs nécessaires aux différentes analyses effectuées au LBTA.

    CHAPITRE IV: REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES

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    [12]

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    [15] RAHERIMANDIMBY R. (2003) Conception d'une cuve de fermentation-étude comparative de la fermentation et de la distillation des Cannes à sucre, Ananas et Litchi. Mémoire d'ingénieur. Université d'Antananarivo Ecole Supérieure Polytechnique. P 24.

    [16] Recueil international des méthodes d'analyses-OIV (2009) Titre alcoométrique volumique-méthodes type I. P 1.

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    [19] ROUX Jean-L. (1994) Conserver les aliments : comparaison des méthodes et des technologies, technique de documentation. Lavoisier, Paris, 705 pages

    [20] TOUADI MBOUMBA Chrisna N. (2020) Suivi de la fermentation de la melasse pour l'obtention des produits alcooliques (alcool médical, Eaux-de-vie et liqueur). Mémoire de Master. Université Marien Ngouabi. Ecole Nationale Supérieure Polytechnique.

    Webographie

    [21] https://www.fasodia.com/PAGES/bissap.html

    [22] https://www.jardinage.ooreka.fr/astuce/voir/729177/hibiscus-sabdariffa

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020

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    [23] http://baobab-des-saveurs.com/wp-content/uploads/2015/08/fiche-technique-de-la-poudre-de-bissap2.pdf

    [24] https://fr.wikipedia.org/wiki/Saccharomyces_cerevisiae

    [25] http://www.pensées.positives.over-bog.com

    [26] http://www.tic-et-tac.com/web/salle/bep/tbep/technologie/brsaevelyne.html

    [27] https://fr.m.wikipedia.org/wiki/boissons_alcoolisee

    ANNEXES

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    A

    Annexe 1 : Présentation de l'IRA

    1. Contexte de création

    L'Institut Nationale de Recherche Agronomique (IRA) est un établissement public administratif à caractère scientifique, doté de la personnalité morale et de l'autonomie financière. Crée par la loi n025 du 24 septembre 2012, suite à la restructuration des établissements publics de recherches agropastorales.

    L'Institut Nationale de Recherche Agronomique est le principal organisme de recherche dans ce domaine au Congo.

    La création de l'IRA est la réalisation d'un résultat important de réforme entreprise en matière de la science, de la technologie et de l'innovation.

    2. Regroupement de la recherche agronomique

    L'IRA regroupe en son sein le centre de recherche agronomique de Loudima (CRAL), le centre de recherche sur l'amélioration génétique des plantes (CERAG), le centre de recherche vétérinaire et zootechnique (CRVZ), le centre de recherche hydrologique de Mossaka (CRHM), le centre régional de recherche agronomique et forestière d'Oyo (CRRAFO), le groupe d'étude et de recherche sur la diversité biologique (GERSIB), l'unité de recherche en phytiatrie (URDHYT), l'unité de recherche sur les systèmes production animale(URSPA).

    3. Les missions de l'Institut National de Recherche Agronomique L'Institut de Recherche Agronomique a pour mission de :

    > Organiser, conduire et exécuter toute recherche fondamentale et appliquée visant la

    promotion du développement agricole dans les domaines de la production végétale,

    animale et halieutique, ainsi que les technologies alimentaires et agro-alimentaires.

    > Mettre en oeuvre une programmation scientifique autour des axes prioritaires pour le

    développement du pays, à partir des besoins réels des populations et les utilisateurs. > Effectuer les expertises scientifiques dans le champ de compétence.

    > Participer à la valorisation des résultats de ses recherches et de savoir-faire.

    > Apporter son secours à la formation, à la recherche dans ses domaines de compétence. > Publier et diffuser les résultats de ses travaux et concourir au développement de ses connaissances et l'information scientifique.

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    B

    4. Le Laboratoire de Bromatologie et de Technologie Agro-alimentaires (LBTA)

    Il est chargé de :

    > Mettre au point des méthodes de conservation et de transformation des denrées alimentaires et produits d'origine animale, végétale et minérale ;

    > Valoriser des sous-produits agricoles et agro-industriels dans la fabrication d'aliments de bétails ;

    > Effectuer les analyses chimiques de bétail et des denrées alimentaires produites localement ou importées à l'alimentation.

    Le LBTA comprend :

    > La section bromatologie ;

    > La section des procédés de conservation et de transformation des produits et denrées d'origine alimentaire ;

    > La section des procédés de conservation et de transformation des produits et denrées d'origine végétale et minérale ;

    > La section de contrôle qualité.

    Ce travail a été réalisé dans le Laboratoire de Bromatologie et de Technologie Agro-alimentaire. Annexe 2 : Préparation des réactifs

    1. Solution de permanganate de potassium (KMnO4) à C1=0,12M et V1=200ml ? Dissoudre 3,792g de KMnO4 dans 100ml d'eau distillée

    ? Apres homogénéisation, transférer la solution dans une fiole jaugée de 200ml et compléter au trait de jauge avec de l'eau distillée

    2. Solution de sulfate de fer II (Fe2SO4) à C2=0,5M et V2=250ml

    ? Dissoudre 34,751g de Fe2SO4 dans 150ml d'eau distillée

    ? Apres homogénéisation, transférer la solution dans une fiole jaugée de 250ml et compléter jusqu'au trait de jauge avec de l'eau distillée

    Annexe 3 : Divers

    Photo: Montage d'un dispositif de distillation Photo : Titrage du KMnO4

    (Source : DZANVOULA)

    Photo : pH-mètre Photo : Refractomètre

    (Source : DZANVOULA)

    HARVEY DZANVOULA/UMNG/ENSP/DSTA/LGIA3/PROJET TECHNIQUE/2020

    C

    Photo: Mesure du Ph Photo: Balance à précision 10-1

    (Source : DZANVOULA)

    Photo : Solution de KMnO4 avant titrage Photo : Solution de KMnO4 après titrage

    (Source : DZANVOULA)

    Photo : Etuve Photo : Bain mari

    (Source : DZANVOULA)

    Photo : Four Pasteur Photo : Seau avec pompe

    (Source : DZANVOULA)

    Photo : Opération de pasteurisation (Source : DZANVOULA)

    D

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"Il faudrait pour le bonheur des états que les philosophes fussent roi ou que les rois fussent philosophes"   Platon