Bibliographie
[1] M. Benhamou, K. Elhasnaoui, H. Kaidi, M. Chahid,
Physica A 389, 3465 (2010).
[2] J. Cardy, Scaling and Renormalization in
Statistical Physics, Cambridge, University Press, 1996.
[3] V.J. Emery, Phys. Rev. B 11, 239 (1975).
[4] S.F. Edvards, P.W. Anderson, J. Phys.
(Paris) 5, 965 (1975).
[5] L.D. Landau , E.M. Lifshitz, Quantum
Mechanics, 3ème édition, Pergamin Press, 1991.
[6] J. Zinn-Justin, Quantum Field Theory and
Critical Phenomena, Clarendon Press, Oxford, 1989.
[7] C. Itzykson, J.-M. Drouffe, Statistical Field
Theory : 1 and 2, Cambridge University Press, 1989.
[8] W. Helfrich, Z. Natureforsch 28c, 693
(1973).
[9] K. Wolfgang, Differential Geometry :
Curves - Surfaces - Manifolds, American Mathematical Society,
2005.
[10] S.J. Singer, G.L. Nicolson, Science 17 5, 720
(1972).
[11] 0.-Y. Zhong-Can, W. Helfrich, Phys. Rev. Lett. 59,
2486 (1987).
[12]
hapitre 5 : Mécanique Statistique des
membranes confinées .. 149
Z.C. Tu, Z.C. Ou-Yang, Phys. Rev. E 68, 061915
(2003).
[13] O.-Y. Zhong-Can, Phys. Rev. A 41, 4517
(1990).
[14] Z. Lin, R.M. Hill, H.T. Davis, L.E. Scriven, Y.
Talmon, Langmuir 10, 1008 (1994).
[15] M. Mutz, D. Bensimon, Phys. Rev. A 43, 4525
(1991).
[16] A.S. Rudolph, B.R. Ratna, B. Kahn, Nature 3 52, 52
(1991).
[17] H. Naito, M. Okuda, O.Y. Z hong-Can, Phys. Rev. E
48, 2304 (1993).
[18] J.N. Israelachvili, Intermolecular and Surface
Forces, 2ème édition, Academic Press, London,
1991.
[19] R.P. Rand, V.A. Parsegian, Biochim. Biophys. Acta
988, 351 (1989).
[20] R. Lipowsky, S. Leibler, Phys. Rev. Lett. 56, 2541
(1986).
[21] R. Lipowsky, E. Sackmann, éditeurs,
Structure and Dynamics of Membranes : Generic and Specific Interactions,
Volume 1B, Elsevier, 1995.
[22] L.J. Lis, W.T. Lis, V.A. Parsegian, R.P. Rand,
Biochemistry 20, 1771 (1981).
[23] A. Christopher et al., Acta Cryst. D 6 5,
10621073 (2009).
[24] R. Lipowsky, B. Zielinska, Phys. Rev. Lett. 62,
1572 (1989).
[25] N. Gouliaev, K.J.F. Nagle, Phys. Rev. Lett. 81,
2610 (1998).
[26] W. Janke, H. Kleinert, Phys. Rev. Lett. 58, 144
(1987) ; Phys. Lett. A 117, 353 (1986).
[27] G. Gompper, D.M. Kroll, Europhys. Lett. 9, 59
(1989).
Chapitre 7
Conformation d'un polymère
confiné dans des domaines
délimités par des biomembranes.
Dans ce chapitre, qui consiste notre
quatrième contribution originale, nous étudions la
conformation d'un polymère isolé, qui est confiné entre
deux membranes lipidiques parallèles ou dans une vésicule
tubulaire.
Pour rester plus général, nous supposons
que le polymère est de topologie arbitraire, qu'on appelle
D-manifold, où D est la dimension spectrale
(par exemple, D = 1, pour les
polymères linéaires, et D =
4/3, pour les polymères branchés).
En fait, D est le nombre de coordonnées locales permettant de
caractériser géométriquement le
polymère.
hapitre 6 :Conformation d'un polymère
confiné dans des domaines délimités ..151
7.1 Introduction.
Le confinement d'un polymère a des nombreuses
applications dans divers domaines, tels que les fonctions biologiques, la
filtration, la chromatographie à gel, et la récupération
assistée du pétrole.
La physique des polymères confinés est
un problème très riche et passionnant. Récemment, une
grande attention a été portée sur la structure et la
dynamique des chaînes de polymère, confinées à
l'intérieur de pores cylindriques [1 -
7]. Par la suite, l'étude a été
étendue à des polymères plus complexes ou D-manifolds
[8], qui sont restreints aux même
géométries. Ici, D est la dimension spectrale, qui mesure le
degré de connectivité des monomères à
l'intérieur du polymère [9]. Par exemple, cette
dimension intrinsèque est de 1, pour les
polymères linéaires, et 4/3
pour les polymères branchés. Les D-manifolds peuvent
être polymérisés et organisés en vésicules
[10].
Le confinement des polymères entre deux
surfaces planes ou avec des ondulations sinusoïdales a également
été étudiée [11,
12].
Les géométries de confinement peut
être solides ou molles (biomembranes en bicouche ou tensio-actifs,
vésicules sphériques ou des tubulaires). Une question
particulière a été adressée au confinement d'un
polymère dans des bicouches de tensioactives formant une phase
lamellaire lyotrope [13], où les auteurs ont
réalisé des mesures en utilisant la diffusion de rayons-X aux
petites-angles, et étudié le phénomène de fracture
libre, par microscopie électronique, d'un surfactant non ionique /
système eau / polyélectrolyte, dans la région de la phase
lamellaire. La remarque fondamentale est que les molécules de
polymère provoquent à la fois déformation
hapitre 6 :Conformation d'un polymère
confiné dans des domaines délimités ..152
locale et le ramollissement de la
bicouche.
Dans le même contexte, il a été
démontré expérimentalement [14] que le
confinement des polymères peut induire une transition nématique
de gouttelettes de microémulsion. Plus précisément, les
auteurs ont montré que, lors de confinement, les gouttelettes
sphériques se déforment en gouttelettes ellipsoïdales.
L'origine d'une telle transition structurelle peut être attribuée
à une perte d'entropie de conformation des chaînes de
polymère, en raison de confinement.
Dans d'autres expériences [15
- 17], une nouvelle phase a été
observée, en ajoutant un polymère hydrosoluble neutre (PVP) dans
la phase lamellaire lyotrope (CPCI -hexanol - eau). En outre, on a
étudié l'effet de l'eau sur un polymère neutre et soluble
dans la phase lamellaire d'un système de tensioactifs zwitterioniques
[18].
Le confinement des polymères est
également pertinente pour les systèmes vivants et régit de
nombreux processus biologiques. Comme exemple, nous peut citer les nanotubes de
membranes qui jouent un rôle majeur dans le trafic intracellulaire. En
particulier, nous pouvons citer des lipides et protéines, qui assurent
l'échange entre les différents compartiments dans les cellules
eucaryotes [19 - 22]. Le trafic des
macromolécules et des vésicules dans nanotubes est assurés
par des moteurs moléculaires [23]. En outre, ils sont
responsables de l'extraction des nanotubes [24]. La formation
d'attaches membranaires tubulaires ou spicules [25 -
33] résulte de l'action des forces localisées,
qui sont perpendiculaires à la membrane. Ces forces peuvent provenir de
la polymérisation des fibres [34], d'actine
[35], de la tubuline [36], ou
d'hémoglobine faucille [37].
Inspiré par des processus biologiques, comme
des macromolécules et des vésicules de transport, nous visons
l'étude de la conformation des polymères, confinés
dans
hapitre 6 :Conformation d'un polymère
confiné dans des domaines délimités ..153
des milieux aqueux délimité par des
biomembranes. Plus précisément, le but est de voir comment ces
biomembranes peuvent modifier les propriétés de conformation du
polymère contraint. Dans ce but, nous choisissons deux
géométries : une vésicule tubulaire
(Géométrie I), et deux biomembranes parallèles
(Géométrie II). Pour être plus
général, nous considérons un polymère à
connectivité arbitraire ou encore D-manifold
[38]. Les polymères linéaires et
branchés, et les vésicules polymérisées en
constituent des exemples typiques. Notons que cette étude de
conformation est nécessaire pour la description des
propriétés dynamiques des polymères limités par des
parois géométriques. Comme nous le verrons plus loin, le
confinement d'un polymère est entièrement contrôlé
par l'état des biomembranes. En effet, pour la Géométrie
I, le polymère ne peut être confiné que si la
vésicule tubulaire est à l'équilibre. Pour la
Géométrie II, le confinement n'est possible que si les deux
membranes parallèles sont à l'état lié.
Ce chapitre suit l'organisation suivante. En Sec.
II, nous rappelons brièvement l'étude conformationnelle
d'un D-manifold non confiné, trompé dans un bon solvant.
La Sec. III est destinée à l'étude de la
conformation des polymères confinés à l'intérieur
d'une vésicule tubulaire. En Sec. IV , nous étendons
l'étude à des D-manifolds, confinés, cette
fois-ci, entre deux biomembranes parallèles. Nous retraçons
quelques remarques finales dans la dernière section.
|