Conclusion
Les métabolites secondaires, tel que les
polyphénols, les huiles essentiels et leurs différentes classes,
on attiré l'attention des scientifiques qui focalisent leur
études sur leurs modes d'extractions, leurs propriétés,
leur applications et leur valorisation.
La richesse de la région d'El hourane en plantes
d'intérêt phytothérapeutique nous a permis de choisir une
espèce de cette région Centaurea microcarpa Coss et dur.
comme plante d'étude afin d'en extraire des composés
bioactifs.
Quartes méthodes d'extractions ont été
suivies, deux d'entres elles pour l'extraction des poly phénols, selon
la méthode d'Akowah et al., (2004) et d'Owen et Johens (1999), une pour
l'extraction des flavonoïdes et la dernière pour l'extraction des
huiles essentielles.
Deux paramètres ont été
étudiés pour leur influence sur l'extraction par solubilisation
des poly phénols et des flavonoïdes de la plante:
· Le temps d'extraction: - 4heurs et 8 heurs pour la
méthode d'Akowah et al.,.
- 168 heurs pour celle d'Owen et Johns.
- 24 heurs pour les flavonoïdes.
· Le type de solvant: Eau, méthanol 50%,
acétone 70%, méthanol pur, chloroforme et acétate
d'éthyle.
La méthode d'Owen et Johens (1999) donne le meilleur
rendement d'extraction en polyphénols (21%), exprimé en
pourcentage de matière sèche, par rapport à celle d'Akowah
et al., (2005) ou le meilleur rendement n'a pas dépassé les
18,799% avec le solvant Eau pour une durée de 8heures.
De même l'extraction des flavonoïdes basée
sur la solubilité différentielle de ces composés, dans
plusieurs solvants de polarités différentes afin d'extraire les
différentes fractions flavonoïdiques. Le rendement le plus
élevé est observé pour la fraction aqueuse (14,536%)qui
contient des flavonoïdes di, tri et tetraflavonoides glycolsyés.
En outre l'extraction des HE montre un rendement relativement
élevé soit 1,231% (P/P).
Les tests de mise en évidence de quelques
métabolites secondaires, ont montrés l'existence de
polyphénols, de coumarines, de tanins et de saponosides.
D'autre part, la séparation et l'essai de la
caractérisation des extraits méthanoliques, par CCM, en utilisant
plusieurs systèmes solvants, à permis d'avoir une multitude de
taches ce qui prouve la richesse des extraits en substances actives
essentiellement les polyphénols, ces resultats ont été
confirmés par analyse spéctrale' dans l'UV-visible de
l'extrait.
Ce travail n'est qu'une première étape
d'étude phytochimique de Centaurea microcarpa Coss et Dur. et
ces résultats doivent être appuyés par des études
ultérieures pour:
· Le dosage, des polyphénols, des flavonoïdes
totaux et des HE et estimer leur teneur dans Centaurea microcarpa
Coss. et Dur.
· Une étude qualitative des extraits par
chromatographie liquide à haute performance(M CPG) combinée
à la spectroscopie de masse (HPLC-SM) et RMN, afin d'établir la
composition exacte de l'espèce végétale.
· En fin l'étude des activités biologiques
des extraits et des HE et plus particulièrement leurs activités
antioxydante et antibactériennedes HE.
Bibliographic:
Akowauh G.A, Zhari. I, Norgyati. I, Sadikun.A et Khamsah S.M.,
The effects of different extraction solvents of varying polarities on
polyphenols of Orthosiphon stamineus and evaluation of the free
radical-scavenging activity 2004. Food chemistry 87:
559-566.
Alothman.N, Bhat.R et Karim.A.A, Antioxydant capacity and
phénolic content of selected tropical fruits from Malysia, extracted
with different solvents. Food chemistry.
Bassoma.M.Y, Pegnyemb.D.E, Ngo Mbing.J, Atchad.D.T, Tih.R.G,
Sondengan.B.L, Bloud.a et Bado.B., 2004. Flavonoides isolés des feuilles
de Ochno afzelicet, hemisynthese des Alzelodinés A, B et C à
partir de la dihydrilophirone. African journal of scienses:
5:101-108.
Bellakhder J.1997.Pharmacopée du Maroc.
Bousbia.N., 2004. Extraction et identification de quelques huiles
essentielles (Nigelle, Coriandre, Origan, Thym, Romarin).Etude de leurs
activités antimicrobiennes. Thèse de magistère.
Castanedo- Ovando.A, De Lourdes Pacheco-Hernandez.M et
Paez-Hernandez.E., 2009. Chemicel studies of anthocyanins: Areview.Food
chemistry.113:859-871.
Chan.K.N. et Maznah.i., 2009.Supercritical carbon dioxide fluid
extraction of hibiscus Canna binus L.seed oil: A potential
solvent-free and high antioxydative edible oil. Food chemistry.
6:1291-1296.
Colin-Henriou., 2008. De la pomme transformée: Impact
du procédé sur deux composés d'intérêt
nutritionnel, caractérisation physique et sensorielle des produits
transformés. Thèse de doctorat en science agronomiques
Dohou.W, Yamni.K, Tahrouch.S, Idrissi Hassani.L.M, Bado.A et
Guira.N., 2003. Sceening phytochimiques d'une endemique ibére-macrowave,
Thymelaea lythroides. 142: 61-78.
Hayouni.E.A, Abedrabba.M, Bouix.M et Hamdi.M,. 2007. The
effects of solvants and extraction method on the phénolic contents and
biological activities in vitro of Tuinsian Quercus coccifera L. and
Juniperus phoenicea L. fruit extracts.Food
chemistry.105:1126-1134.
Horbourne.N, Marete.E, Jacquier.J.C et O'Riordan.D. Effect of
drying methods on the phénolic costituents of meadow sweet
(Filipendula ulmaria) and willon (Salix alba).Food chemistry
and technology.
Hong yao, Bin wu, Yiyucheng, Haibin Qu., 2009. High throughput
chemiluninescence platform for evaluating antioxydative activity of total
flavonoid glycosides from plant extracts. Food
chemistry.115:380-386.
Kolai.N, Berkani.A et Lotmani.B., 2006. Analyse chromatographique
(CCM) des flavonoides des feuilles des Citrus en relation avec le taux de
contamination de phyllocnistis citrella Staint (Lepidopetra,
Gracillariidae).Thèse de magistère.
Lawson.A.M., 2006. Etude phytochimique d'une Fabacée
tropicale,Lonchocarpus nicou, evaluation biologique
préliminaire. Thèse de doctorat, spécialité:
science de la vie et de la santé, science pharmaceutique phytochimie,
biologie.
Lazouni.H.A, Ben mansour.A, Chabane Sari.D et Smahi.E., 2006.
Valeur nutritives et toxicité du Foenicululumm niller. Afrique science.
02: 94-101.
Mishio.T, Houma.T et Iwashina.T., 2006.Yellow flavonoids in
Centaurea ruthencia as flower pigments. Biochimical systematics and
Ecology.34:180-184.
Owen P. et Johens T., 1999. Xanthine oxidase inhibitory activity
of northeastern North American plant remedies used for gout. Journal of
Ethnopharmacology. 64: 149-160.
Quezel. P et Santana S. ,1963.Nouvelle flore d'Algérie.
Tome II. Rolland.Y.Antioxydants naturels des végétaux.2004.
Review.11 :1-6.
Sarni-Manchado P et Cheynier.V.2006. Les polyphenols en
agroalimentaire. Edition ;science et technologie.
Sudjona.N, D'Orazcob.C, Ryaux.V., 2009.Antimicrobial activity of
commercial olea europaea (olive) leaf extract.33:461-463.
Tissut.M., 1967.Etude spectrophotometrique et chromatographique
des flavonols du Hetre (Figus syhatica
L.).Phytochemistry.6:1291-1296.
T Van wyk B.N et Wink M., 2004.Medicinal plants of the world.
Bkiza puplications.
Weber.B.,2009.Capacité antioxydante totale, antioxydants
et marqueurs du stress oxydatif. La boratoire de Junglinster, Luxembourg.
|