Influence du mode d'incubation sur le fitness et la qualité biochimique des larves de saumon atlantique (salmo salar) destinées au repeuplement dans le bassin mosan.( Télécharger le fichier original )par Bradford Emmanuel BAYARD Université de Liège/Unamur - Master de spécialisation en Gestion des Ressources Aquatiques et Aquaculture 2016 |
V. CONCLUSIONS ET PERSPECTIVESCette étude a montré que les conditions du milieu d'incubation du saumon Atlantique (rivières vs écloserie) affectent significativement le taux de survie et non la qualité des larves à l'émergence en termes de poids vif et qualité des lipides corporels. Elle a aussi montré que les modes d'incubation en écloserie pourraient jouer un rôle dans le développement des alevins destinés au repeuplement. Une incubation en écloserie sur substrat et avec une eau de bonne qualité, peut permettre d'avoir des larves à l'émergence de bonne qualité, quasi similaire à une incubation semi-naturelle en rivière. L'incubation dans le système tiroir alimenté avec l'eau de forage et dans les claies avec galets, ont permis d'avoir les plus grandes larves à l'émergence. Les longueurs et poids de ces larves sont très similaires à ceux trouvés en rivières après incubation semi-naturelle. L'adaptation aux conditions d'élevage au début de la phase post-émergence a confirmé la bonne qualité des larves issues des modalités du système tiroir alimenté en eau de forage en termes de survie. Mais cette supériorité n'a pas été confirmée en termes de capacité de croissance car aucune différence n'a été détectée entre les diverses conditions d'incubation testées en écloserie. De plus, la composition en acides gras chez les larves issues d'incubation tiroir en eau de forage n'est pas significativement meilleure comparativement à celle des larves issues d'incubation du même système mais alimenté en eau de rivière. Les résultats de notre étude ne permettent donc pas d'affirmer de manière précise le mode d'incubation le plus adapté pour les programmes de repeuplement. Pour des juvéniles destinés au repeuplement, il serait préférable de faire plus d'analyses biochimiques sur les muscles, afin de mieux associer les résultats à certaines fonctions biologiques comme la capacité de nage et la réponse inflammatoire. Il serait intéressant également de tester le comportement anti-prédateur des alevins afin de mieux évaluer leur chance de survie en milieu naturel. 31 VI. REFERENCES(c) FAO 2004-2017. Programme d'Information sur les espèces aquatiques cultivées. Salmo salar. Programme d'Information sur les espèces aquatiques cultivées. Texte par Jones, M. Dans: Département des pêches et de l'aquaculture de la FAO [en ligne]. Rome. Mis à jour 1 Janvier 2004. [Cité le 14 Avril 2017]. http://www.fao.org/fishery/culturedspecies/Salmo_salar/fr (c) FAO 2005-2017. Programme d'Information sur les espèces aquatiques cultivées. Oncorhynchus mykiss. Programme d'Information sur les espèces aquatiques cultivées.Texte par Cowx, I. G. 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II Concentration en oxygène dissous, turbidité, température et pH dans la rivière Aisne 20 15 10 5 0 Oxygene dissous (mg/l) Turbidité (FAU) Température (°C) pH conductivité -Rivière Aisne 150 125 100 75 50 25 0 conductivité (uS/cm)
10 Avril 19 Avril 14 Avril Concentration en oxygène dissous,
turbidité, température et pH dans la 20 15 10 5 0 Oxygene dissous (mg/l) Turbidité (FAU) Température (°C) pH Figure 1: Paramètres physico-chimiques enregistrés dans les rivières conductivité -Rivière Samson
Figure 2: paramètres physico-chimiques enregistrés dans les rivières (suite) Suivi de température, oxygène dissous, pH et de turbidité: conditions Claies et tiroir à eau de rivière
10 avril 14 avril Suivi de température, oxygène dissous, pH et de turbidité: conditions tiroir à eau de forage
10 avril 14 avril Figure 3 : Paramètres physico-chimiques enregistrés en écloserie IV vitesse du courant (m/s)-Rivière Aisne
22 Fev24 Fev27 Fev2 Mars6 Mars8 Mars11 Mars14 Mars17 Mars20 Mars23 Mars28 Mars31 Mars3 Avril7 Avril Hauteur d'eau (cm)-Rivière Aisne cm
17 3 Avril 28 23 20 31 2 Mars 6 Mars 8 Mars 11 14 Mars Mars Figure 4 : Vitesse courant et hauteur d'eau enregistrées dans la rivière Aisne V m/s 1,20 1,00 0,80 0,60 0,40 0,20 0,00 Radier 1 50 40 30 20 10 0 Radier 1 vitesse du courant (m/s)-Rivière Aisne 22 Fev24 Fev27 Fev2 Mars6 Mars8 Mars11 Mars14 Mars17 Mars20 Mars23 Mars28 Mars31 Mars3 Avril7 Avril Hauteur d'eau (cm)-Rivière Aisne cm 2 Mars 6 Mars 8 Mars 11 14 Mars Mars Figure 5 : Vitesse courant et hauteur d'eau enregistrées dans la rivière Aisne 17 3 Avril 23 31 28 20 vitesse du courant (m/s)-Rivière Samson Radier 1 31 23 27 14 19 Avril Avril 4 Avril 10 Avril 23 Fev 27 Fev 3 Mars 7 Mars 14 17 Mars Mars 70 cm 60 Hauteur d'eau (cm)-Rivière Samson 50 Radier 1 4 avril 10 avril 0 19 14 avril avril 40 30 20 10 23 fev 27 fev 3 mars 7 mars 14 17 31 mars 27 mars 23 mars mars mars Figure 6 : Vitesse courant et hauteur d'eau enregistrées dans la rivière Samson 1,5 (m/s) 1,0 0,5 0,0
VII A) SURVIE A L'EMERGENCE Test de Hartley : homogénéité
des variances (P=0,95)
Test d'ANOVA
B) SURVIE POST-EMERGENCE Test de Hartley : homogénéité des variances (P=0,95)
VIII Test d'ANOVA
C) POIDS A L'EMERGENCE Test de Hartley : homogénéité des variances (P=0,95)
Test d'ANOVA
D) LONGUEUR A L'EMERGENCE Test de Hartley : homogénéité des variances (P=0,95)
IX Test d'ANOVA
E) TAUX DE CROISSANCE SPECIFIQUE (SGR) Test de Hartley : homogénéité des variances (P=0,95)
Test d'ANOVA
X F) Lipides totaux Test de Hartley : homogénéité des variances (P=0,95)
Test d'ANOVA
G) LIPIDES NEUTRES Test de Hartley : homogénéité des variances (P=0,95)
Test d'ANOVA
XI H) LIPIDES NEUTRES 1) 0 :4 (n-6) Test de Hartley : homogénéité des variances (P=0,95)
Test d'ANOVA
2) 0 : 5(n-3) Test de Hartley : homogénéité des variances (P=0,95)
Test d'ANOVA
XII 3) 2 : 6(n-3) Test de Hartley : homogénéité des variances (P=0,95)
Test d'ANOVA
I) PHOSPHOLIPIDES 1) 0 : 4(n-6) Test de Hartley : homogénéité des variances (P=0,95)
Test d'ANOVA
XIII 2) 0 : 5(n-3) Test de Hartley : homogénéité des variances (P=0,95)
Test d'ANOVA
3) 2 : 6(n-3) Test de Hartley : homogénéité des variances (P=0,95)
Test d'ANOVA
XIV J) EVOLUTION DU COEFFICIENT DE VARIATION DU POIDS Test de Hartley : homogénéité des variances (P=0,95)
Test d'ANOVA
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