I- Optimisation des conditions et de la composition du
milieu de culture pour la
production de â-glucosidase par Aspergillus
niger 78
I-1 Optimisation des paramètres du procès de
production de f3-glucosidase 78
I-1-1 Effet du pH initial et de la température
78
I-1-2 Effet de la taille de l'inoculum et les
conditions de culture 79
I-2 Sélection du substrat pour la production de
f3-glucosidase 80
I-3 Sélection de la source d'azote pour la production de
f3-glucosidase 82
I-4 Effet du rapport C/N sur la production de f3-glucosidase
83
II- Résultats de la fermentation d'Aspergillus niger
sur le milieu de culture
optimisé 84
II-1 Enzymes produites durant la fermentation d'Aspergillus
niger dans le son
de blé 84
II-2 Caractérisation du jus de culture
d'Aspergillus niger 85
II-2-1 Evaluation de protéines et de sucre
réducteur dans le jus de fermentation 85
II-2-2 Evaluation des activités f3-glucosidase et
estérase dans le jus de fermentation 85
III- Caractérisation de la â-glucosidase
d'A. niger 87
III-1 Détermination de pH optimum 87
III-2 Détermination de la température optimale
88
IV- Production de â-glucosidase en fermenteur
89
IV-1 Procédé de la microfiltration tangentielle
pour la clarification de jus de
fermentation 90
IV-2- Procédé de la concentration du filtrat 91
IV-3- Effet de l'hydrolyse du son de blé sur la
fermentation 92
Chapitre II: 93
L'utilisation des enzymes hydrolytiques : une
méthode douce pour la
récupération de l'hydroxytyrosol à
partir des margines. 93
I. Mise en évidence de la bioconversion des margines
moyennant une réaction
enzymatique 94
III-7 Conclusion 123
I-1 Introduction 94
I-2 Hydrolyse enzymatique des margines par la culture d'A.
niger 94
I-2-1 Effet du substrat sur la biotransformation en
hydroxytytrosol 94
I-2-2 Identification au CLHP des produits obtenus
95
I-2-3 Identification au CG-SM des produits obtenus
98
I-2-4 Effet de la nature de biocatalyseur, le temps de la
réaction et le temps
d'incubation de culture d'A. niger sur la
biotransformation en hydroxytyrosol 99
I-3 Activité antioxydante 102
I-4 Conclusion 104
II. Les enzymes fongiques : un outil puissant pour enrichir
les margines en
antioxydants 104
II-1 Introduction 104
II-2 Production d'enzymes 105
II-3 Hydrolyse enzymatique des composés phénoliques
des margines 108
II-4 Effet antiradicalaire DPPH de l'extrait des margines 114
II-5 Conclusion 115
III- Optimisation du process de la bioconversion des
composés phénoliques des
margines 115
III-1 Introduction 115
III-2 Effet de la température sur la réaction de
bioconversion et sur l'activité f3-
glucosidase 116
III-3 Effet du pH sur la réaction de bioconversion et sur
l'activité f3- glucosidase.117
III-4 Effet du type de margine sur la libération de
l'hydroxytyrosol 118
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