I.1.1.3 Modalités d'immunisation
L'immunisation consiste à administrer, de façon
répétée chez l'animal, les antigènes
spécifiques aux anticorps à produire. L'administration se fait
généralement par voie intraveineuse (veine jugulaire) chez les
chevaux. Elle a lieu à des périodes précises de
l'année dans le but d'assurer l'intégrité de l'animal.
En ce qui concerne le laboratoire Serolab en Suisse,
l'immunisation est assurée par le vétérinaire et a lieu
uniquement au printemps et en automne, pendant une durée de deux mois
à trois mois environ. Entre ces périodes, l'animal est au repos.
Dans l'objectif de produire des spécialités dirigées
contres les tissus et organes humains, le laboratoire Serolab utilise une
suspension d'homogénats de tissus de porc comme antigène
[6].
I.1.2 Obtention du sérum
I.1.2.1 Ponction du sang
La ponction est effectuée sous anesthésie locale
et est assurée par un vétérinaire. Le volume de sang
récupéré dépend du poids et des données
hématologiques de l'animal. Cette opération se fait de
façon stérile à la ferme, puis se poursuit dans une salle
blanche (une salle blanche est une pièce ou une série de
pièces où la concentration de particules est
maîtrisée afin de minimiser l'introduction, la
génération, la rétention de particules à
l'intérieur. Les paramètres tels que la température,
l'humidité et la pression relative sont également maintenus
à un niveau précis. (Selon la norme ISO 14644-1)) ne contenant
que du matériel nécessaire au traitement du sang.
I.1.2.2 Récolte du sérum
Le sérum est séparé du sang par
centrifugation selon le protocole décrit précédemment
[14], puis contrôlé par
électrophorèse pour en déterminer certains pourcentages
protéiques, et enfin recueilli dans des flacons stériles et
conservé sous forme liquide à - 20°C.
I.1.2.3 Analyses du sérum
Pour assurer l'innocuité des produits et la
sécurité des patients, des analyses biochimiques et
microbiologiques sont effectuées sur le sérum obtenu avant
d'être libéré pour débuter le procédé
de production des globulines.
· Les analyses biochimiques : permettent le dosage des
protéines totales, le titrage d'anticorps (ELISA), le dosage albumine/
globuline et la mesure du pH.
· Les analyses microbiologiques : permettent la
recherche sérologique de l'anémie infectieuse des
équidés (test de Coggins), et de l'artérite à virus
(séroneutralisation) doit donner des résultats négatifs
[44]. Quant au virus herpétique équin, son
dépistage tient compte de la cinétique des anticorps.
Les analyses sérologiques sont réalisées
par un laboratoire spécialisé.
Au final, le sérum destiné à la production
doit être stérile.
I.1.3 Purification des immunoglobulines
Le sérum recueilli contient une panoplie de
protéines et compte tenu des objectifs thérapeutiques de
production des sérums, la nécessité d'obtention des
immunoglobulines purifiées s'impose. Ainsi l'étape de
purification consiste dans un premier temps, à précipiter les Ig
dans le sérum obtenu en se débarrassant de l'albumine.
Secondairement, au cours de cette purification, les techniques ont
été adaptées pour assurer en même temps
l'inactivation et/ou l'élimination virale totale.
Parmi les différents protocoles de purification des
immunoglobulines étudiés dans la première partie, les
laboratoires utilisent la précipitation par les sels d'ammonium, qui est
la plus connue. Aussi il existe un autre protocole basé sur la
précipitation par l'acide caprylique, plus utilisé et
décrit par Redwan el-RM [36], comme étant plus
efficace que le premier.
I.1.3.1 Protocole aux sels d'ammonium
Le pH du sérum est ajusté à 3,3 par ajout
de l'acide acétique à 1,76 N. La prochaine étape consiste
à précipiter les anticorps contenus dans le sérum en
présence des sels d'ammonium (sulfate d'ammonium) (fig. 10).
Ensuite la digestion des immunoglobulines
précipitées, en présence de la pepsine, aboutit à
l'obtention des fragments F(ab')2 et Fc (fig. 12). La filtration qui suit
permet d'éliminer le fragments Fc et en ne retenant que les fragment
F(ab')2 qui constituent le principe actif des sérums
thérapeutiques. La filtration se fait en présence des agents de
filtration qui ont pour rôle de stériliser le produit
[5].
I.1.3.2 Protocole à l'acide caprylique
Comme dans la plupart des laboratoires de production des
sérums thérapeutiques, c'est le protocole utilisé par le
laboratoire Serolab en Suisse. Il est basé sur une précipitation
en présence d'acide caprylique (fig. 15). L'acide caprylique est un
acide gras insaturé retrouvé dans les huiles
végétales et les graisses animales ou obtenus par synthèse
chimique.
Le sérum initialement conservé à +4°
C est réchauffé à +56° C pendant 90 minutes puis
ramené à la température ambiante (20#177; 5° C). L e
pH est ajusté à 5,5 par ajout d'acide acétique 1,76%. Puis
l'acide caprylique est ajouté jusqu'à une concentration finale de
5% suivi de l'agitation vigoureuse pendant une heure à
température ambiante. Ensuite le mélange est centrifugé
à 3000 x G pendant 30 minutes pour ôter le précipité
du mélange. Le surnageant est filtré à travers une
membrane de 0,45 pm puis dialysé par une solution saline
tamponnée au phosphate (PBS) à pH 7,4 et stérilisé
par filtration à travers une membrane de 0,22 pm. Enfin, le produit est
pasteurisé à 60° C pendant 10 heures
[31].
Le produit final est stérile, la teneur moyenne en
protéine est généralement d'environ 20g/l, celle de
l'albumine est réduite à moins de 2g/l et la concentration
d'acide caprylique se retrouve à une valeur inférieure à
0,05 mmol/l.
Ce processus de production des immunoglobulines peut
être facilement validé et adapté à une grande
production. Un appareillage muni d'un logiciel d'exploitation programmable
(fig. 16) a été créé par Riera Nadeu (Barcelone,
Espagne) pour la précipitation à grande échelle en
présence l'acide caprylique et intégrant un système
automatique de nettoyage.
Serum
Précipitation
(ACJ~E CAPRY1LJQTJE)
Elimination Inactivation virale
Globulines Albumine
Pasteurisation
|
|
Inactivation virale
|
Figure 15. Représentation
schématique du procédé de production des globulines
(Source, [41]).
Figure 16. Appareillage muni d'un
logiciel d'exploitation programmable pour une purification à grande
échelle des globulines par l'acide caprylique, fait par Riera Nadeu
(Barcelone, Espagne) [31].
|