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Production de domaines recombinants PRODH en vue de l'analyse structurale & Caractérisation de la région 51-160 de la protéine KIN17 humaine par RMN et Modélisation Moléculaire

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par Ludovic Carlier
Université de Rouen - Doctorat de biologie structurale 2006
  

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CHAPITRE 3

Etude bio-informatique :

sélection de 3 domaines PRODH

Lorsque nous avons débuté l'étude structurale de PRODH, il n'existait aucune

structure connue de proline déshydrogénase d'un quelconque organisme. La publication en février 2003 de la première structure d'un domaine PRODH chez E. coli (PutA669) nous a permis d'aborder une stratégie structurale alternative qui consiste à sélectionner des domaines PRODH humains à partir de cette structure et de prédictions bio-informatiques.

La démarche consiste dans un premier temps à prédire la délimitation du domaine catalytique humain en reportant les éléments de structure secondaire de PutA669 sur l'alignement de séquences qui a été présenté dans le chapitre 1. Ceci permet de caractériser l'organisation des domaines de la protéine humaine de manière prédictive, et ainsi de restreindre notre champ d'investigation à un ou plusieurs domaines supposés structuralement indépendants. Un certain nombre d'outils bio-informatiques de prédiction de structure secondaire, et de visualisation des résidus hydrophobes, sont alors utilisés afin de délimiter de manière précise les domaines structuraux sélectionnés. Avant de présenter les résultats de cette étude bio-informatique, qui a été menée en étroite collaboration avec le Dr. Sophie Zinn-Justin du DIEP, la structure du domaine proline déshydrogénase de E. coli sera brièvement décrite.

1) Description de la structure du domaine PRODH de E. coli

Comme je l'ai évoqué dans le premier chapitre, la protéine de liaison à l'ADN PutA

est l'orthologue procaryote de PRODH humaine chez E. coli. La structure des 669 résidus

N-terminaux de cette protéine (PutA669), qui correspondent au domaine proline déshydrogénase de E. coli, a été résolue par cristallographie des rayons X (Lee et al., 2003). Dans cette structure, PutA669 est un homodimère composé de 3 domaines : un domaine N- terminal de dimérisation (87-139), un second domaine N-terminal de fonction inconnue (140-

260), et un domaine catalytique C-terminal de près de 350 résidus qui assure la fonction proline oxydase (261-612).

Le domaine de dimérisation est constitué d'un bras de 3 hélices á qui embrasse les 3

hélices homologues de l'autre sous-unité. Le second domaine N-terminal comporte 6 hélices

á qui n'établissent aucun contact significatif avec le domaine catalytique ou la seconde sous- unité. Lee et al., ont dans un premier temps suggéré que ce domaine, dont le repliement est

proche des motifs caractéristiques de liaison à l'ADN « hélice-coude-hélice », puisse être

responsable de la fixation aux acides nucléiques. Plus récemment, Gu et al., ont montré que le domaine de liaison à l'ADN est en réalité localisé dans l'extrémité N-terminale 1-90 de PutA

qui est déstructurée dans la structure cristalline de PutA669 (Gu et al., 2004). Au vu de l'alignement de séquences initial qui a été réalisé dans le chapitre 1, il apparaît que les 2 domaines N-terminaux de PutA669 ne sont présents ni chez l'Homme, ni chez aucune espèce eucaryote. En effet, la longueur des séquences PRODH est très différente d'une espèce à l'autre (de 475 résidus chez la plante Oryza à 669 résidus chez la mouche) et elles ne s'alignent que dans la moitié C-terminale des séquences eucaryotes qui correspond au domaine catalytique. De plus, contrairement à PutA qui est capable de réguler la transcription

de son gène dans le cytoplasme, il n'a jamais été montré qu'une proline oxydase eucaryote, localisée dans la mitochondrie, soit capable de lier l'ADN.

La superstructure du domaine catalytique de PutA669 est un tonnelet de type á8â8 dans lequel 8 feuillets â forment un coeur hydrophobe autour d'un cofacteur FAD et d'un inhibiteur lactate (Figure 3.1). Cette poche hydrophobe est protégée du solvant par 10 hélices

á situées en périphérie du domaine. Les molécules de FAD et de lactate sont fortement liées à

ce domaine catalytique par de nombreuses interactions non covalentes avec l'hélice C- terminale á8 et les extrémités C-terminales des feuillets â.

Figure 3.1 : Structure du tonnelet á8â8 du domaine catalytique de PutA669. Les hélices apparaissent en rouge, les feuillets en jaune, et les boucles en vert. Le cofacteur FAD est coloré en bleu, et l'inhibiteur lactate en violet.

La comparaison de séquence de la région C-terminale conservée de PRODH humaine

(340-600) avec PutA669 met en évidence une faible identité de séquence d'à peine 15 %. De manière intéressante, ce pourcentage atteint 47 % lorsqu'on restreint la comparaison aux résidus situés à moins de 5 Å du cofacteur FAD ou de l'inhibiteur lactate. Ainsi, sur les 40 résidus à proximité de ces 2 molécules, 19 sont rigoureusement identiques et 6 sont similaires. Sur la base de cette forte conservation au niveau de ces résidus critiques, il apparaît que PutA669 et PRODH humaine comportent le même site actif et par conséquent, un domaine catalytique qui pourrait être de repliement similaire. La présence d'une molécule de lactate dans le coeur hydrophobe de PutA669 conforte cette hypothèse. En effet, le lactate est connu pour sa capacité à inhiber l'activité de la proline déshydrogénase chez les organismes eucaryotes (Kowaloff et al., 1977), ce qui n'avait jamais été constaté chez les PRODH procaryotes.

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"Enrichissons-nous de nos différences mutuelles "   Paul Valery