Memoire Online - Essai de prévision de la valeur nutritive des feuilles et la pulpe d'arganier

République algérienne démocratique et populaire
íæá~~Ç Ë~È~Ç æ í~~~~Ç ä~á~Ê~Ç É~ÇÒæ

Ministq~re de l'enseignement supérieur et de la recherche scientifique
Ü áÔ~Ç Ü íáÚì~ ä~ ÊÈ~ÓÍ Ê~å~Ì
Université Hassiba Ben Bouali Chlef
Ê~Ìì~ì~È~Ç ãìá~~Ç æ Ê~ÍáÇ~Ç ãìá~~Ç Ê~áß
Faculté des sciences agronomiques et des sciences biologiques
~~Ìì~ì~È~Ç ÉÑÆÇÏ
Département de biologie

Président : Mr ALI BENAMARA. B, Chargé de cours UHBC Promotrice : Melle. NOURA. A, Chargé de cours UHBC Examinateurs : Mr. KOUIDRI.M, Chargé de cours UHBC

			Année universitaire : 2008/2009

En premier lieu, Nous remercions notre promotrice ^Melle NOURA. A pour avoir accepter de nous encadrer, pour son suivi et ses conseils.

Nos remerciements les plus respectueux vont à M^r ALIBENAMARA. B, qui a bien voulu nous faire l'honneur de présider le jury.

Nos remerciements et reconnaissance à M^r KOUIDRI. M pour l'honneur qu'il nous a fait en acceptant d'examiner ce travail et nous avoir procuré l'échantillon de la pulpe d'argan.

A ^Melle HAMDANI, Nous sommes très sensibles à l'honneur que vous nous faites en acceptant de participer à ce jury de Thèse. Soyez assurée, Mademoiselle, de nos plus profonds respects.

Nous tenons vivement remercier : M^me BOUTIBA. A, pour son aide dans la réalisation de ce travail.

Nos remerciements gracieux à ^Melle BENNOUR. W pour son aide à la réalisation de ce travail.

Nous souhaitons inclure dans nos remerciements les personnes qui ont bien voulu nous faire part de leur expérience pratique, notamment aux ingénieurs des laboratoires: Mr BELÂALIA. A, ^Melle DHELÂA. Z, ^Melle_GADOUCHE. M^me RIATI. S, M^me OUCHENE. K.

Nous voudrions adresser un remerciement à tous les enseignants qui ont participé à notre formation, particulièrement : M^r SAÂDI. A & M^r EL AMRI. L.

Nos remerciements les plus sincères vont également à nos amis et collègues notamment : NOUI. A, DAHNANE. A, MIMOUN. M, BENZAAMIA. F, SABER. A, MELLAH. M, ALOUACHE. E, ZAOUNANE. A, MEDJAHED. H, BERBERI. A, BENTEYEB. H, et à toutes les étudiantes de la promotion biotechnologie générale 2008/2009.

Enfin nous tenons à remercier tout les gens et les personnes qui nous ont aidés tout au long de notre travail.

Tableau III : Evolution des importations d'orge et de maïs (milliers de tonnes) 06

Tableau IV : Matériel et appareillage utilisés durant l'expérimentation 18

Tableau V: La composition chimique (% de MS) des sous produits étudiés et deux

Tableau X: Résultats de la fermentation des échantillons [volume de gaz produit

Figure 01 : les sous produits disponibles en Algérie (milliers de tonnes). 09

Figure 03 : schéma d'obtention des produits et sous produits de l'arganier 14

Figure 06 : comparaison de la composition chimique des sous produits étudiés 25

Figure 07: Evolution de la production du gaz pendant l'incubation de la pulpe et des feuilles de l'arganier 29
Figure 08 : Evolution de la production de gaz des produits de l'arganier après

A D EME: L'Agence de l'Environnement et de la Maîtrise de l'Energie. ANPCE: Agence National de Promotion du Commerce Extérieur.

4.1.3 Les sous produits de la tomate .8 4.1.4 Les sous produits du palmier dattier ..8 4.1.5 Les sous produits de la vigne 8

CHAPITRE II : L'ARGANIER

5.3 Le tourteau .. 14
CHAPITRE III : LES METHODES DE PREVISION DE LA VALEUR NUTRITIVE DES ALIMENTS

CHAPITRE I : MATERIELS ET METHODES

CHAPITRE II : RESULTATS ET DISCUSSION

Chapitre I : L'alimentation animale en Algérie

I. Le secteur de l'élevage en Algérie

Selon Nedj raoui (2001), l'élevage, en Algérie, concerne principalement les ovins, les caprins, les bovins et les camelins où les régions steppiques et présahariennes détiennent 80 pourcent de l'effectif total constitué essentiellement par le cheptel ovin.

Les effectifs recensés durant les dernières années (1987-2006) sont représentés dans le tableau I.

Espèce Année	Bovin	Ovin	Caprin	Total
1987	1416	16148	2568	20132
1988	1435	16428	2232	20095
1989	1405	17316	2404	21125
1990	1392	17697	2472	21561
1991	1300	16891	2484	20675
1992	1334	17723	2775	21832
1993	1394	18665	2683	22742
1994	1269	17842	2544	21655
1995	1267	17301	2780	21348
1996	1228	17565	2895	21688
1997	1255	17387	3120	21762
1998	1317	17948	3256	22521
1999	1649	17988	3061	22698
2000	1595	17615	3026	22236
2001	1613	17298	3129	22040
2002	1551	17587	3280	22418
2003	1560	17502	3324	22386
2004	1613	18293	3450	23356
2005	1586	18910	3589	24085
2006	1607	19610	3755	24972

Les besoins alimentaires de ce cheptel ont été estimés, pour l'année 2001, à 10,5 milliards d'UF. (ADEM & FERRAH, 2002).

II. Les fourrages en Algérie

2.1 Les ressources fourragères

Selon HAMADACHE (2001) in AMRANI (2006), les ressources fourragères en Algérie se composent essentiellement des chaumes des céréales, végétation de jachères pâturés, parcours steppiques, forêts, maquis et de peu de fourrages cultivés qui sont répertoriés dans le tableau II.

Sources fourragères	Superficie (hectares)		Productivité moyenne U F/ ha		observations
Parcours steppique	15 à 20 millions			100	Plus ou moins dégradés
Les forêts	Plus de 03 millions			150	-
Chaumes de céréales	Plus de 03 millions			300	Nécessité d'améliorer la qualité des chaumes
Végétation de jachères pâturées	Moins de millions	02	250		Nécessité d'orienter la végétation
Fourrages cultivés	Moins de 500			1000 à 1200	Orge, avoine, luzerne, trèfle, vesce avoine et le sorgho
Les prairies permanentes	Moins de 300			-	Nécessité d'une prise en charge

L'Algérie disposait en 2001 de 8 milliards d'UF issues principalement des zones

céréalières (52 %) et des parcours steppiques (44 %). Les chaumes et les pailles contribuent pour 37 % dans l'offre fourragère globale.

Ces données témoignent, encore une fois, du caractère extensif de la production fourragère en Algérie (ADEM & FERRAH, 2002).

2.2 Taux de couverture des besoins alimentaires du cheptel

Une analyse de la balance fourragère pour l'année 2001 a permis de mettre en exergue la persistance d'un déficit fourrager estimé à 22 %. Mais cette moyenne recèle des disparités régionales importantes. En effet, l'analyse selon les diverses zones agroécologiques montre que les déficits sont beaucoup plus prononcés dans les zones littorales, steppiques et sahariennes pour des taux respectifs de 58 %, 32 % et 29 %. Ce déficit fourrager a des répercussions négatives sur la productivité des animaux et se traduit par un recours massif aux importations de produits animaux à l'instar des produits laitiers et carnés. (ADEM & FERRAH, 2002)

Toutefois les systèmes d'élevage sont mixtes et la part de la production annuelle de chaque type de produit (lait, viande) dépend de la pluviométrie, qui conditionne les disponibilités fourragères, mais aussi leur qualité. (MADANI & al, 2004). Ce qui exige la recherche des solutions pour corriger ce déficit, et parmi ces solutions adoptés par l'Algérie c'est l'importation et la valorisation (RUINA, 1986).

III. Importation d'alimentation animale

La dépendance algérienne pour les céréales importées étant 30% pour l'alimentation animale. (CNA, 2008), dont des quantités très importantes d'orge et de maïs sont importées pour combler le déficit fourrager. En 2008, l'OAIC (L'Office algérien interprofessionnel des céréales) a été instruit d'importer 300 000 tonnes d'orges destinés à l'alimentation de bétail (Dalila, 2008). Le tableau III montre les importations Algériennes de l'orge et de maïs entre 1983-1993.

Tableau III : Evolution des importations d'orge et de maïs (en milliers de tonnes)

	1983	1984	1985	1986	1987	1988	1989	1990	1991	1992	1993
Orge	482	614	338	000	157	848	259	307	37	103	549
Maïs	383	615	605	998	874	1209	1066	1198	1099	939	1300

En vue de développement du secteur agro-alimentaire, et la recherche des éleveurs d'un coût alimentaire réduit, les sous produits accordent de plus en plus une grande importance. (BOUDJELTIA, 1997).

Selon MOREL (1990) cité par BOUDJELTIA (1997), les sous produits agro- alimentaires peuvent couvrir les besoins de 1 à 1,5 millions de gros bovins par an en France.

IV. Valorisation des sous produits en Algérie

Selon ADEME (2000), un sous-produit est un produit résidu qui apparaît durant la fabrication ou la distribution d'un produit fini. Il est non intentionnel et non prévisible, et est accidentel. Il peut être utilisé directement ou bien constituer un ingrédient d'un autre processus de production en vue de la fabrication d'un autre produit fini. Pour la plupart d'entre eux, ces sous-produits sont conformes avec la législation en vigueur concernant l'alimentation animale.

Les sous-produits agro-industriels ont une importance considérable pour l'alimentation animale dans la région méditerranéenne compte tenu des caractéristiques nutritionnelles des ressources fourragères disponibles dans cette région, en particulier pour les Ruminants. (RENE, 1991).

La bonne utilisation de ces sous-produits dans l'alimentation animale nécessite la maîtrise de leur conservation, la connaissance de leur composition, de leur valeur alimentaire et des moyens susceptibles de I' améliorer. (LAURE, 1991).

4.1 Les sous produits existant en Algérie

Les résidus de récolte : paille de céréales, bois de taille (sarments de vigne, brindilles d'olivier,...), et les sous produits de la transformation des fruits et des légumes : grignons d'olive, pulpe, les marcs de raisin, représentent des tonnages importants (figure 01) qui sont le plus souvent inutilisés. Dans certains cas ils contribuent à élever le niveau de pollution.

La valorisation de ces sous produits dans l'alimentation animale, permet de baisser les coûts et d'atténuer le déficit fourrager (LAURE, 1991).Et parmi les sous produits importants en Algérie (figure 01) on peut citer :

4.1.1 les sous produits céréaliers

La part des céréales dans l'alimentation humaine en Algérie est importante. Cette forte consommation génère un tonnage important des sous produits, utilisés pour réduire le coût de l'alimentation animale (SADDEK, 2008), parmi lesquelles le son qui occupe une large part (figure01) environ 85 % de la production totale de la meunerie (BOUDOUMA, 2005), et la paille disponibles en grande quantité: 25 à 30 millions de quintaux par an (TRIKI & al, 2008).

L'Algérie se classe au 7^eme rang des producteurs d'olive dans le monde. Dont le vergé occupe 280 000 hectares (AN PCE, 2008)

Les sous produits de l'extraction de l'huile laissent un résidu dont le poids représente 80% de celui des olives traités (LOUSSERT & BROUSSE, 1978). En Algérie, l'industrie oléicole laisse chaque année un sous produit solide abondant et abandonné. Ce résidu peut constituer une ressource fourragère importante pour les ruminants grâce à l'aptitude de ces derniers à utiliser et valoriser les aliments lignocellulosiques. (ZAIDI & al, 2007).

Les sous-produits principaux d'olivier sont les grignons, mais aussi les feuilles. Ce sont des aliments ligno-cellulosiques qui présentent des caractéristiques comparables à celles de la paille. (RENE, 1991).

La tomate est le second produit maraîcher de par la place qu'elle occupe dans les habitudes alimentaires (BACI, 1995), et la production annuelle de tomate selon les statistiques officielles est estimée à 700 000 quintaux. (M'HAMMED, 2008).

Selon BOUDJELTIA (1997), Ces principaux sous produits servis à l'alimentation animale sont: la peau, les pépins et le tourteau.

Selon CHEHMA & al (2000), les sous produits sont disponibles avec des tonnages annuelles estimés à 135 000 tonnes de palmes sèches, 5 000 tonnes de pédicelles de dattes et 67 500 tonnes de rebuts de dattes, et l'étude de leur valeur alimentaire a donné des résultats plaçant les rebuts de dattes dans la catégorie des concentrés énergétiques avec 0,94 unité fourragère / kg de matière sèche.

Selon LAURE (1991), les sous-produits de la vigne peuvent être classés en : le marc et ses dérivés(le marc de raisin, les pépins), le jus de raisin concentré et les sarments et les feuilles.

Figure 01 : les sous produits disponibles en Algérie (milliers de tonnes). (FAO, 1990 in BOUDJELTIA, 1997).

Chapitre II : L'arganier

Historique

Les premiers à avoir mentionné l'existence de l'arganier au Maghreb sont les géographes et les savants arabes. En effet l'usage de fruits de l'arganier ont été relatées en X siècle, XI siècle et XII siècle respectivement par : Ali Ibn Rodhouan, EL Beckri et El Idrissi.

Vers 1219, le médecin égyptien Ibn El Baytar, parle de l'arganier et le décrit comme « un arbre de haute taille, épineux, donnant un fruit du volume d'une amande et contenant un noyau que l'on recueille, que l'on broie et dont on extrait l'huile pour l'employer dans les préparation alimentaires». (M'HIRIT & al. 1998).

II -Botanique :

2.1 Taxonomie

La systématique de l'arganier selon Radi (2003), M'HIRIT & al (1998) est comme suit :

2.2 Caractéristiques

L'arbre ressemble quelque peu à un olivier, il peut atteindre 8 à 10 mètres de taille. (DEBBOU & CHOUANA, 2003).

Sa cime est large, étalée, dense et ronde. Son tronc est court, noueux, tourmenté, même souvent multiple et formé alors de plusieurs tiges entrelacées. (RA DI, 2003).

Le fruit de l'arganier est une baie de forme variable, de couleur verte à jaune clair, il se compose d'un péricarpe charnu (pulpe) et d'un noyau central dur. Au centre du fruit se trouve une amande qui est constituée de plusieurs graines concrescentes. (CHERROUF, 1995).

III. / IP SHItDayIiideii/DUDaier

Parmi les fonctions qui remplis l'arganier. Nous parlerons en particulier des fonctions économiques, sociales et environnementales.

Au Maroc l'économie locale est dépendante du fruit d'argan, cet arbre a une valeur très importante chez le peuple Berbère. (K ITTY , 2004).

L'huile d'argan constitue le produit principal de l'arganier. Elle est extraite à partir de l'amande, qui contient environ 50% d'huile comestible. (CH ERROU F, 1995 &2002 ; DI RK, 1998 & DAVID, 2004).

L'huile d'argan vierge renferme essentiellement des triglycérides (94,5-97,3 %) ; l'insaponifiable y présente de 1,0 à 1,1 % (RA HMANI, 2005). En plus de son utilisation en alimentation humaine, elle est utilisée dans la préparation des crèmes et d'autres produits cosmétiques. (DAVID, 2004 ; LUIS, 2005 & GILLES, 2007).

Le bois est résistant et lourd. C'est un excellent charbon utilisé pour le chauffage mais il est impropre à la menuiserie. (DEBBOU & CHOUANA, 2003)

Au Maroc, la production de bois est de l'ordre de 8 tonnes /ha de matière vivante ce qui constitue l'équivalent de 50 tonnes/ ha de matière sèche. Vu qu'un gramme de matière sèche équivaut à 4.5 kilocalories, la production actuelle de l'arganeraie est de 180000 milliards de kilocalories. Partant du fait que le litre de pétrole équivaut à 10000 kilocalories, on peut affirmer que l'arganeraie marocain recèle une énergie équivalente à 18 milliards de litres de pétrole brut. (BENZYANE, 1995).

Les troupeaux de bovins, d'ovins et surtout de caprins et de camelins y pâturent pendant une grande partie de l'année par les produits d'arganier. (EL A ICH , 2007)

En plus de son vaste importance, l'arganier permet de stabiliser les populations des compagnes, et donc de limiter le phénomène de l'exode rural dans les régions où se cultive. (BENZYANE, 1995 & BENHAMOU, 2007).

L'aire principale de répartition d'arganier se situe entre 29° et 32°de latitude Nord. (DEBBOU & CHOUANA, 2003).

En Algérie, selon les estimations des services de la conservation des forêts, les forets d'arganier recouvrent une superficie avoisinant les 3000 hectares dans la wilaya de Tindouf, depuis le Djbel Ouarkziz jusqu'a la Hamada de TINDOUF (figure02). Aussi il existe six arbres à Mostaganem et une à Mascara. Aujourd'hui, on en trouve à Baïnem (Alger) et à l'Université de technologie d'Oran (USTO), mais en laboratoire. (MILAGH, 2007).

Au Maroc, l'arganier occupe une surface très importante, où il couvre environ 800 milles hectares. (M'HIRIT & al, 1998).

V. Les sous produit de l'arganier

5.1 La pulpe

La pulpe du fruit, appelée encore péricarpe, est la partie la plus externe enveloppant la graine, obtenue après dépulpage de fruit (figure 03), sa couleur change suivant le degré de maturation du fruit ; du vert au jaune veiné, de rouge puis au brun. Cette pulpe est charnue, amère. Elle est utilisée comme aliment pour les caprins. (CHERROUF & GUILLAUME, 1998 & RADI, 2003).

Les feuilles servent de pâturage suspendu pour les caprins (ANONYME, 1995), plusieurs flavonoïdes ont été isolés des feuilles de l'arganier: la myrécitine, la quercétine et autres dérivés glycolsylés. (CH ERROU F, 2007).

C'est le résidu de l'extraction (figure 03), utilisé comme aliment d'engraissement pour les bovins, il est riche en glucides et une fraction protéique de poids moléculaire élevé. Sa composition lui confère des propriétés pharmaceutiques intéressantes. (CHERROUF, 2002 & GILLES, 2007).

Figure 03 : schéma d'obtention des produits et sous produits de l'arganier. (ANONYME, 2006).

Selon TISSERAND (1991), Une meilleure connaissance de la valeur alimentaire des sous-produits locaux constitue incontestablement un clément déterminant pour le

développement de systèmes d'élevage adaptés aux conditions particulières du pays.

La digestibilité d'un constituant chimique exprime sa proportion disparue entre sa consommation et son excrétion dans les fèces. La digestibilité de la matière organique (dMO) des fourrages est une base essentielle pour estimer leur valeur énergétique (DACCORD, 1999).

La méthode est proposée par JO NES & HAYWARD (1975) a été l'une des plus utilisée pour prévoir la digestibilité des fourrages. Elle comprend deux étapes : un pré- traitement par la pepsine dans de l'acide chlorhydrique dilué (0,1 N) pendant 24 heures suivi d'un traitement par la cellulase pendant 48 heures. (AUFRERE, 1982)

V. Méthodes microbiologiques

5.1 Méthodes directes (in vivo)

Selon D EMA RQU ILLY et BOISSA U (1978) cité par B ENCHERCHALI (1994), elle constitue la méthode de référence. La mesure de la digestibilité se fait sur 4 à 6 béliers, de préférence castrés, âgé de 2 à 5 ans, en bonne santé et qui représentent une résistance à la cage de métabolisme.

La méthode in sacco consiste à introduire des petits sachets de nylon qui ont une grandeur de 10 - 20 centimètres, une grandeur de pore de 50 um (+/-10) dans le sac ventral de rumen, ces sachets contiennent environ 5 g de l'aliment. La période d'incubation se fait à 0, 3, 6, 9, 12, 24, 36, 48 et 72 heures. Après chaque période d'incubation, les sacs de nylon sont enlevés de rumen et lavés avec l'eau distillée pour enlever le jus de rumen. Puis séchés à 65°C pendant 48 heures (PAMUNGKAS et SEVILLA, 2005).

Généralement, les techniques in vitro sont basées sur la mesure des résidus de fermentation ou les produits non fermentés après incubation dans le jus de rumen. (GETACHEW & al, 2004). Parmi les méthodes les plus exactes et pratiques disponibles celle de TILLEY & TERRY annoncée en 1963 (MABJEESH & al, 2000).

La méthode du gaz test a été aussi utilisée avec succès pour prédire la digestibilité d'un aliment. La mesure du gaz produit donne une meilleure estimation de la valeur nutritive. (GETACHEW & al, 2004)

Appareils	Objectif et utilisation	Verrerie.
Préparation des solutions, titrage, filtration....	Broyeur.
Broyage des échantillons.	Etuve.
Séchage de l'échantillon pour déterminer la MS	Four à moufle.
Incinération pour déterminer la MM	Balance de précision.
La pesée des échantillons à analyser	soxhlet.
Détermination de la MG.	Büchi.
Distillation lors de détermination de la MAT.	Spectrophotomètre UV-V.
Lecture de DO pour déterminer la teneur en ST.	Bain marie.
Fermentation des échantillons.	pH mètre.
Ajustement du pH de milieu de LOWE.	Plaques résistantes
Minéralisation pour convertir l'azote organique en azote minérale.

Avant d'effectuer les analyses, les échantillons sont finement broyés (annexe 01),

et conservés dans des flacons hermétiquement fermés nettoyés et séchés au préalable
Tous les dosages sont effectués en triple, et les résultats sont rapportés par

Les méthodes utilisées sont des méthodes classiques de l'analyse fourragère (annexe 02).

Principe : La teneur en matière sèche par un double séchage des aliments est déterminée conventionnellement par le poids de ces aliments après séchage dans une étuve à circulation d'air.

Principe : La teneur en MM d'un produit est, son résidu après destruction de la matière organique par incinération.

Principe : Les matières grasses des aliments sont obtenues par extraction directe au moyen d'un solvant, puis élimination du solvant par distillation et déssication. Pesé du résidu.

Principe : La teneur en cellulose brute d'un aliment est le résidu insoluble après traitement par un acide puis par une base, elle est déterminée par la méthode de WEENDE, ce procédé a été normalisé aux Etats-Unis, et y utilisé pour établir les tables alimentaires modernes (GAUTIER & al, 1991).

Principe : L'azote total est dosé par la méthode de KJELDAHL : on minéralise le produit par l'acide sulfurique en présence d'un catalyseur ; l'azote organique est transformé en azote ammoniacal ; on déplace l'ammoniac par la soude et on le dose après avoir reçu dans une solution d'acide borique. (Lecoq, 1965).

Principe : La méthode de DUBOIS et al (1956) permet de doser les oses en utilisant le phénol et l'acide sulfurique concentré, en présence de ces deux réactifs, les oses donnent une couleur jaune-orange dont l'intensité est proportionnelle à la concentration des glucides, la densité optique est déterminée entre 450 à 550 nm (NIELSEN, 1997)

La prévision de la valeur alimentaire, particulièrement de la valeur énergétique, des alimentes des ruminants, a toujours été une préoccupation constante de tous ceux qui s'intéressaient à l'élevage et à l'alimentation de ces animaux.

Tenant compte du progrès considérable des connaissances acquises depuis 1950, sur les besoins des animaux et sur l'utilisation digestive et métabolique des alimentes, l'INRA proposait en 1978, de nouveaux système pour exprimer les besoins des animaux et la valeur nutritive des aliments (UFL, UFV, MAD...).

Après avoir fait le point des connaissances actuelles sur la composition chimique (constituant glucidiques, azotés, lipidique, minéraux) des fourrages et alimentes concentrés ou composés, nous avons utilisé les équations de l'INRA pour prévoir la valeur énergétique et azotées des sous produits d'arganier étudiées.

La digestibilité des aliments peut être estimée par les méthodes biologiques connues comme les techniques in vitro, qui sont conduites hors de l'animal, ces techniques sont basées sur la mesure des résidus de fermentation.

Les méthodes les plus récentes mesurent les produits de fermentation anaérobique. La fermentation par jus de rumen a pour résultat la production d'acides gras volatils, gaz (le dioxyde de carbone [CO2] et méthane [CH4]) et la masse microbienne. La quantité de gaz produite pendant l'incubation est mesurée pour prévoir la digestion de l'aliment. (GETACHEW & al, 2004).

Vue l'absence des animaux donneurs de jus dans la station expérimentale, nous avons ramené le jus de rumen qu'on a utilisé pour fermenter la pulpe et les feuilles de la battoire de CH L EF, dans un thermos pour le conserver à sa température de sortie.

1er essai, l'animal donneur est un boeuf pesant en moyenne 400 Kg âgé de 4ans.

La principale fonction de salive est ce d'un lubrifiant pour aider la mastication et déglutition, et la plupart des solutions tampon sont basées sur la solution de McDOUGALL reconstitué à partir des analyses de salive d'ovins (McDOUGALL, 1947), et parmi eux le milieu de LOWE, proposé par LOWE et al (1956) qui comporte essentiellement des composants de salive artificielle, solution résazurine et des traces éléments minéraux.

Dans notre expérimentation nous avons utilisé la méthode de « gaz test », où la fermentation aura lieu dans un Erlen Meyer Connecté par un tuyau à un flacon rempli d'eau, et ce dernier connecté à une éprouvette graduée. La quantité de gaz produite et évacuée est proportionnelle au volume d'eau évacué dans l'éprouvette (figure04).

Le jus de rumen est mélangé avec le milieu de LOWE à raison de 1/3 et 2/3 (KHAZAAL, 1995), soit 100 ml jus de rumen et 200 ml de milieu de LOWE plus 500 mg de l'échantillon dans un bain marie réglé à 39°C. (DEMARQUILLY et JARRIGE, 1981et BENCHERCHALI., 1999).

Deux séries de mesures sont effectuées, chaque échantillon est traité en triple, soit six répétitions, deux blanc (jus de rumen + solution tampon) sont utilisés simultanément.

La saturation en CO2 est réalisée à l'aide de la fermentation à la levure de bière (figure05) pour assurer les conditions d'anaérobiose.

Le gaz produit est lu dans des intervalles de temps : 0-4h, 4-8h, 8-12h, 12-24h, 24-36h, 36-48h, 48-72h., 72-96h.

Les résultats de l'analyse fourragère des échantillons étudiés, ainsi que celle de deux fourrages de comparaison soit un fourrage de qualité: luzerne et un aliment médiocre: paille sont répertoriés dans le tableau V.

Tableau V: La composition chimique (% de MS) des sous produits étudiés et deux autres fourrages.

Composant Aliment	MS	MM	MG	MAT	CB	ST
PULPE	85.41 %	9.44 %	8.84 %	4.74 %	8.85 %	15.32 %
FEUILLE	85.56 %	8.04 %	3.37%	12.46 %	5.91 %	2.30%
LUZERNE^*	80 %	2.2 %	0.7 %	16.5 %	33.5 %	19 %
PAILLE^**	93.8 %	6.9 %	-	3.4 %	41.70 %	-

Généralement, les éléments déshydratés présentent une teneur en MS assez importante. La pulpe et les feuilles se rapprochent dans leur teneur en MS soient 85.41% pour la pulpe et 85.56% pour les feuilles. Ces résultats sont légèrement élevés par rapport à ceux obtenus par CHERROUF, (1998) (80% de MS pour la pulpe).cette différence peut être expliqué par les conditions de séchage ainsi que les conditions de culture de nos arganiers.

Les analyses ont révélé des compositions minérales respectives de la pulpe et les feuilles : 9.44 %MS et 8.04 %MS ces valeurs sont nettement supérieures à celle obtenues par CHERROUF (1998) (4.1% MS) et DEBBOU & CHOUANA (2003) (2.58% MS) du fait que une part de nos échantillons proviennent d'arbres cultivés à MOSTAGANEM pour la pulpe et à CHLEF pour les feuilles où les sols sont relativement riches en minéraux.

La fraction lipidique des aliments concentrés est d'une importance primordiale puisque leurs valeurs nutritives en dépend et que son état de conservation peut avoir un effet direct sur l'appétibilité de ces aliments. La connaissance de cette composition est donc intéressante.

Selon MORAND-FEHR (1979) la teneur en MG des aliments concentrés se situent entre 15 et 65g/Kg de MS, mais il existe d'autres aliments plus riches comme les graines oléagineuses et notre échantillon de pulpe a une valeur nettement supérieure soit 88.4 g/Kg de MS, cette valeur se rapproche plus ou moins des valeur apporté par CHERROUF (1998) soit 60g/Kg de MS, mais relativement faible par rapport au résultat de DEBBOU & CHOUANA (2003) soit 31,20%MS.

Nos résultats révèlent que les feuilles sont trois fois moins riche que la pulpe en MG soit de 3.37% MS à ce moment les feuilles ne peuvent pas être considérées comme une source lipidique en alimentation animale bien quelles soient plus riches que la luzerne (0.7 %MS) (JARRIGE & al, 1995).

Nos résultats n'appellent pas de commentaires particuliers, comparés aux résultats de CHERROUF (1998) la teneur en sucre de la pulpe est assez proche soit 15.32%MS contre 18.5%MS, alors que par rapport aux résultats de DEBBOU & CHOUANA (2003) on se trouve avec des valeurs trois fois plus élevée (49.83%MS),

Les feuilles présentent une valeur faible comparée à la pulpe, cette différence peut être expliquée par l'état physiologique de es feuilles prélevées d'arbres très jeunes en début de leur développement.

On constate que la pulpe présente une valeur comparable à celle de la luzerne (1 9%MS).

Contrairement a ce qu'a été observé pour les composants précédents on distingue une faible teneur en CB soit 8.85%MS par rapport au résultat de CHERROUF (1998) qui est de l'ordre de 12.9% MS et celle obtenue par DEBBOU & CHOUANA (2003), 10.94%MS. Cette différence pourrait s'expliquer par l'état de la maturité de la pulpe et le moment de récolte des fruits.

La faible valeur en CB des feuilles (5.91 %MS) pourrait avoir les mêmes raisons que
pour la faible teneur en ST ; Comparé à la luzerne et aux pailles qui ont respectivement

les valeurs de 33.5%MS et de 41%MS, les sous produits de l'arganier sont considérés comme des aliments très riches en éléments solubles et pauvres en CB.

L'apport d'azote dans les sous produits de l'arganier étudié est considérablement variable, plus élevé dans les feuilles (12.46 % MS) et faible dans la pulpe (4.74 %MS), ce dernier résultat concorde avec celui obtenu par CHERROUF (1998) (5.9%MS) ainsi que celui DEBBOU.B & CHOUANA.T (2003) (5.35%MS).

De point de vue valeur azotée les feuilles de l'arganier se rapprochent à la luzerne (1 6.5%MS), elles sont donc considérés comme une source d'azote non négligeable pour les ruminants des zones sahariennes où les fourrages de qualité font défaut et compléter ainsi des rations à base de paille qui n'apportent que de faibles quantités en azote soit 3.4%MS.

La pulpe est moins riche que les feuilles en azote et selon JARRIGE & al (1995) de très nombreuses protéines se trouvent au niveau de feuilles dont la plupart ayant des activités enzymatiques, les chloroplastes à eux seuls contiennent plus de la moitié des protéines foliaires en plus des protéines membranaires.

Pour une étude comparative entre la composition chimique des feuilles et celle de la pulpe, les résultats sont représentés sous forme d'histogrammes (figure N°06)

Figure 06 : comparaison de la composition chimique des sous produits étudiés.

De point de vue valeur alimentaire, nous constatons que la pulpe est une source énergétique assez intéressante vue sa richesse en MG et en ST comparé aux feuilles qui apportent une quantité considérable en MAT ; l'idéal serait que les animaux consomment les deux produits en même temps pour en faire une ration complète.

Dans le cas du développement de l'extraction de l'huile d'argan la pulpe pourrait être utilise comme concentré pour compléter les rations pauvres en produits rapidement fermentescibles.

Vue la difficulté de la détermination de la digestibilité et de la valeur nutritive due à la faible quantité d'échantillon disponible nous avons jugé intéressant d'utiliser les équations de prévision de l 'INRA en utilisant les résultats de l'analyse fourragère, en effet la valeur énergétique ou azotée d'un aliment dépend avant tous de sa composition chimique et particulièrement sa teneur en MAT.

Les équations que nous avons utilisées sont le fruit d'un très grand nombre de travaux (JARRIGE, 1980 et MORRISON (1976), le choix de ces équations ne rencontre aucun inconvénient vue la faible teneur en CB (SAUVANT, 1981).

En remplaçant dans les équations chaque paramètre par une moyenne rapportée à 100g de MO, les résultats sont répertoriées dan le tableau VI.

Comparé aux différents aliments concentrés dont la valeur énergétique varie de 1,17 à 0,16 pour les UFL et de 1,26 à 0,07 pour les UFV la pulpe est considérée comme un aliment de qualité ayant 0,93 UFL et 0,92 UFV.

En vue de développement de la production de l'huile d'argan il serait intéressant d'utiliser ce sous produit comme aliment pour toute type de productions.

Nous avons fait de même pour la prévision de la valeur azotée de la pulpe, on utilisant les équations (VERITE et SAUVANT, 1981).

Les résultats obtenus n'appellent pas de commentaire particulier car comme pour tous les aliments lorsque la teneur en MAT est faible la quantité en MAD l'est aussi, nous constatons une légère surestimation lorsque les équations n'utilisent pas la CB.

Pour prédire la valeur énergétique des feuilles des équations de prévision de

En remplaçant, chacun des paramètres de l'équation par les valeurs moyennes trouvées, les résultats sont répertoriés dans le tableau IIX.

La majorité des foins ont une valeur énergétique située entre 1,03 à 0,16 pour les UFL et de 0,99 à 0,16 pour les UFV donc les feuilles peuvent être considérées comme un bon foin ayant 0,85 UFL et 0,77 UFV.

La richesse des feuilles en MAT et leur faible teneur en CB explique la valeur élevée de la dMO (0.72%), cette valeur est comparable à celles des fourrages de qualité.

Grâce à sa teneur élevé en UFL, les feuilles peuvent être utilisées en alimentation des ruminants en vue de la production laitière dans les régions où pousse l'arganier. 2.2.2 Valeur azotée

Pour la prévision de la valeur azotée des feuilles, nous avons utilisé l'équation suivante :

Ce résultat n'appelle pas de commentaires particulier car il est naturel que la quantité en MAD des feuilles soit élevée soit environ 10g/kg de MO vue leur teneur en MAT qui est supérieur à 13% MO.

Comparée aux valeurs de la table INRA (1988) les feuilles ont la même valeur azotée que la plupart des légumineuses, à cet effet les feuilles de l'arganier peuvent êtres considérer comme une source d'azotée compensant ainsi la rareté des fourrages de qualité dans les zones désertiques.

Les résultats bruts du gaz test sont représentés en annexe (02), le tableau X présente la production moyenne de gaz de 500mg d'échantillon.

Tableau X: Résultats de la fermentation des échantillons [volume de gaz produit (en ml) pendant des intervalles de temps].

Temps	0 - 4	4 -8	8 - 12	12 - 24	24 - 36	36 - 48	48 - 72	72 - 96
	h	h	h	h	h	h	h	h
Ech
Pulpe	136,83	139	98,66	115,5	67,5	42,33	31,33	5,16
Feuille	146,83	147,33	89,5	121,33	90,16	70,83	42	14,83
Blanc	76,5	84	82	79	43	27.5	10	00

L'évolution de la cinétique de la production de gaz durant la fermentation des échantillons est représentée par la figure (07).

Figure 07: Evolution de la production du gaz pendant l'incubation de la pulpe et des feuilles de l'arganier.

La figure montre une production importante de gaz pendant les premières heures d'incubation (140 à 150 ml), ceci est due en grande partie à la composition de jus utilisé pour la fermentation, qui atteint à lui seul environ 80ml, ce dernier doit être très riche en produits solubles (concentré) rapidement fermentescibles, ce qui nous a amené à faire une correction en considérant que le blanc ne produit que très peu ou pas de gaz au cours de l'incubation, les résultats après correction et en comparaison avec deux aliments de valeurs nutritives très distinctes sont représentés dans la figure 08.

Figure 08 : Evolution de la production de gaz des produits de l'arganier après correction.

La dégradation des aliments dans le rumen s'accompagne d'une importante production de gaz, le CO2 (60 à 70 %) qui provient des bicarbonates apportées par la salive et de nombreux processus de fermentation, et du CH4 (25 à 35%) qui provient de la réduction du CO2 par l'hydrogène avec toutefois de fortes variations (JARRIGE, 1980 & JOUANY & al (1995).

Les résultats de NOURA(2001) pour les pailles et de GETACHEW & al (2004) pour le foin de luzerne montrent que l'évolution de la production de gaz suit une progression linéaire où les courbes représentent trois parties distinctes :

-Une partie de démarrage où les valeurs initiales sont relativement faibles bien que la luzerne démarre avec une production de 27 ml par rapport à une valeur relativement nulle pour les pailles;

-Après un séjour en contact de la flore ruminale, la production augmente progressivement jusqu'à une valeur optimale ; atteinte après 12h pour le foin de luzerne et 48h pour la paille;

Pour l'évolution de la production de gaz de nos échantillons, nous observons une allure tout à fait différente, où on distingue quartes parties:

Fraction A : son intervalle se situe entre 0 et 8h pour la pulpe alors que pour les feuilles c'est entre 0 à 12h, la production de gaz démarre avec une production maximale puis diminue, la fermentation des feuilles est plus importante (70ml) par rapport à celle de la pulpe (60ml), cela peut être argumenté par la présence des éléments rapidement fermentescibles (ST, MG et MAT) par rapport à la paille et le foin de luzerne, la différence entre les feuilles et la pulpe peut être expliquée par la teneur élevée en MAT des feuilles.

Fraction B : limitée entre 8 -12h, se caractérise par une production constante alors que pour les feuilles, l'évolution se stabilise entre 12 et 24h. Cet état peut être expliqué par la résistance des particules insolubles à l'attaque microbienne et le temps d'adhésion sur les parois.

Fraction C : cette troisième partie se limite dans l'intervalle de [12 _ 48h] pour la pulpe où on observe une diminution très nette de la production de gaz, ce qui reflète l'activité microbienne qui devient de plus en plus faible en conséquence de l'épuisement rapide de la MO ; pour les feuilles l'intervalle se situe entre [12 _ 36h] et contrairement à la pulpe on observe un rebondissement de la courbe due à sa richesse en azote.

Fraction D : à partir de 36h, on constate une diminution progressive du volume de gaz produit, expliquée également par la diminution de l'activité microbienne et la solubilisation complète de la MO contenues dans les feuilles;

La pulpe, riche en MG et en CB, permet durant cette phase une augmentation de la production de gaz qui dure environ 12h, suivie d'une diminution ayant les mêmes raisons que pour les feuilles.

Par comparaison de la cinétique de production de gaz entre nos échantillons et celle de la paille ou de foin de luzerne, la différence réside dans le temps de latence très important pour ces derniers soient respectivement plus de 48h et plus de 12h. Cette différence s'explique par la teneur de ces derniers en CB soit respectivement 41 .7%MS 33.5%MS contre 8.85%MS et 5.91%MS pour la pulpe et les feuilles ; en effet la teneur en CB conditionne la vitesse de la production de gaz et la fermentation des produits solubles.

CONCLUSION ET PERSPECTIVE

Au terme de ce modeste travail et à partir des résultats trouvés on conclu que :

La composition chimique montre la richesse de la pulpe d'arganier en éléments solubles, dont elle renferme environ 1 5,5%MS de glucides, 9%MS de lipides et 5%MS de l'azote, tandis que les feuilles sont trois fois moins riche que la pulpe en MG soit environ 3,5%MS et faible en ST soit 2,5%MS, mais riche en MAT qui représente 12,5%MS. La teneur en CB est très faible d'environ 9%MS pour la pulpe et 6%MS pour les feuilles.

De point de vue valeur énergétique et azotée, la pulpe est considérée comme un aliment de qualité ayant 0,93 UFL ou 0,92 UFV malgré sa pauvreté en MAD qui représente environ 4%MO. Les feuilles apparaissent comme un bon foin ayant environ 0,9 UFL, 0,8 U FV et 10 %MAD :

La fermentation de la pulpe et des feuilles donne une production rapide et importante de gaz, à partir de ce résultat on conclu que ces aliments sont très solubles et rapidement fermentescibles.

* Une analyse approfondie qui portera sur plus des paramètres et réalisera des analyses plus précises et plus différentielles, nous citerons dans ce contexte, le dosage des acides aminés essentiels, des vitamines et des facteurs antinutritionnels (tanins, alcaloïdes, saponines) pour une estimation plus précise de l'énergie nette.

* Un essai sur animaux et détermination de l'ingestibilité et de la digestibilité in

L'Algérie n'a pas le choix quant à la récupération des sous produits, tant que la production fourragère n'a pas eu une véritable exécution, et bien que le pays se prêt bien à la culture d'arganier, et dans un prochain avenir, on y développera l'extraction de l'huile d'argan, ce jour là l'utilisation en alimentation animale de ses sous produits aura une extension importante.

LES REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES

ADEM. R, FERRAH A. 2002. Les ressources fourragères en Algérie. [ www.gredaal.com] consulté le : 11/06/2009.

AMRANI. O. 2006. Valeur nutritive du chardon marie silybum marianum(l)Gaerthen « Tawra ». Thèse magister Agro. univ BATNA. 81 p.

ANDERIEU. J. DEMARQUILLY. C. 1981. Panorama des méthodes de prévision de la digestibilité et de la valeur énergétique des fourrages, prévision de la valeur nutritve des aliments des ruminants, Ed INRA publication, paris, pp41-56

ANONYME. 1995. les produits de l'arganier. Al biruniya, Rev. Mar.Pharm, tome 11 n°02pp: 120-126.

ANONYME. 2006. L'Arganier, l'huile d'Argan et ses produits dérivés. Rapport de la coopérative Tidzi Rabat le: 1-13/01/2006.

AUFRERE. J.1 982, Etude de la prévision de la digestibilité des fourrages par une méthode enzymatique. Ann. Zootech.1982 ,31 (2), 111-130.

BACI. L. 1995. Les contraintes au développement du secteur des fruits et légumes en Algérie. Options Méditerranéennes, Série B / 14, 265-277.

BENCHARCHALI. M.1994.contribution a l'étude de quelques sous -produits agroindustriels. Thèse magister agronomie univ Blida 107p.

BENDAANOUN, 1998. L'arganier une espèce fruitière forestière à usage multiple. Ed pierre Mardaga Belgique 11 p.

BENHAMMOU. B. 2007. Problématique de la conservation et du développement de l'arganeraie. Colloque international Rabat : 27-28 avril 2007.

BENZYAN.M. 1995. Le rôle de l'arganier socio-economique et environnemental de l'arganier. Ministère de l'agriculture. RABAT, 21p.

BOUDJELTIA. F. 1997. Essai de prévision de la valeur alimentaire du sous produit de la transformation de la tomate industrielle par des équations d'INRA. Thèse Ing Agro INES Chlef. 74p.

BOUDOUMA. D, 2005. Introduction du son de blé dur dans 'alimentation de dindonneaux en croissance. Sixièmes Journées de la Recherche Avicole. S^t Malo : 30 et 31 mars 2005. pp282-286.

CHEHMA. A. et LONGO.H.F.2001. Valorisation des Sous-produits du Palmier Dattier en Vue de leur Utilisation en Alimentation du Bétail. Rev. Energ. Ren. : Production et Valorisation - Biomasse, 02 : 59-64.

CHENOST. M, 1991. Utilisation digestive des pailles. Options Méditerranéennes - Série Séminaires N° 16 : 67-72.

CHERROUF. Z, GUILLAUME.D.1998. Ethnoeconomical, ethnomedical,and phytochemical study of argania spinosa (l) skeels. ELSEIVER 11: 42-52

CHERROUF.Z, GUILLAUME. D. 2007. Huile d'argan une production devenue adulte. Les technologies de laboratoire n°6 Septembre - Octobre 2007.

CHERROUF.Z. 2001 .Valorisation de l'arganier : résultats et perspectives. Actes du 5e colloque produits naturels d'origine végétale (Québec 7-9 août 2001). Université du Québec, Chicoutimi, Québec pp : 261-270.

CHERROUF.Z, 1995, Valorisation des sous produits de l'arganier. Actes des Journées d'étude sur l'Arganier. Essaouira : 29-30 Septembre, in [ http://users.casanet.net.ma/arganier/journees_etude/valprodo.htm] consulté le : 17/06/2009 CHERROUF. Z. 2002L'huile d'argan, une prodigieuse vitalité née au bord du désert. Espérance Médicale Tome 9 N° 87.

CIRAD-EMVT. Mars 2003. Techniques d'analyses des aliments pour animaux. Ed campus international de Baillarguet. Montpellier pp : 10-17. 81p

CNA. 2008. Synthèse conclusive et recommandations des travaux. Quatrièmes journées d'études Parlementaires Sur La défense nationale « La défense économique », Alger : 07-08 juin 2008. 09p.

DACCORD. R. 1999: Digestion chez les ruminants et digestibilité des fourrages in INWETHZ, le 13 mai 2005.

DALILA. B. 2008.L'OAIC instruit d'importer 300 000 tonnes d'orge. LE MAGHREB le 15/08/2008 p7.

DAVID. L. 2004. Argan oil: Implications as a Geographical Indication. TED Case Studies: An Online Journal [ http://www .american.edu/TED/class/al l.htm], consulté le: 25/04/2009.

DEBBOU. B, CHOUANA.T. 2003. Extraction et caractérisation biochimique de l'huile d'argan (Argania spi noza L. Skeels). Thèse Ing Technologie alimentaire INA. 83p.

DIRK. E. 1998, Argan (Argania spinosa) in the New Crops LISTSERV 10: pp12-15.

EL AICH. A, EL ASSOULI. N, FATHI. A, MORAND-FEHR, BOURBOUZE.A. 2007. Ingestive behavior of goats grazi ng in the South western Argan (Argania spinosa) forest of Morocco. Small Ruminant Research 70: 248-256.

JARRIGE. R. 1980. Chemical method for predicting the energy and protein value of forager. Ann. Zootech, 29: 299-323.

GAUTIER. A, RENAULT. P, PELLERIN. F. 1991. Fiche technique d'analyse bromatologique. Société d'édition d'enseignement supérieur 5^eme édition. Paris. GETACHEW. G, EDWARD J. D, ROBINSON P. H. 2004.In vitro gas production provides effective method for assessing ruminant feeds. California agriculture, vol 58, N°1p 54-58.

GILLES. P, FLORENCE. H, CHARROUF. Z. 2007. Activité cosmétologique de l'huile d'argan et des dérivés de l'arganier. Colloque international Rabat : 27-28 avril 2007. KHAZAAL. K. 1995. The in vitro gas production technique. Ed the international feed resources unit, Aberdeen, Scotland, UK. 6p.

LECOQ. R. 1 965.Manuel d'analyses alimentaires tome II. Ed Dion Paris pp161 6-1621

LOUSSERT, R.; BROUSSE, G. 1978. L'olivier. Editions GP Maisonneuve et Larose. 464p. LUIS B. R, STEÄPHANE. Q, PATRICK. P, CHERROUF.Z. 2005. Colorimetric Evaluation of Phenolic Content and GC-MS Characterization of Phenolic Composition of Alimentary and Cosmetic Argan Oil and Press Cake J. Agric. Food Chem 53: 9122- 9127. LOWE.SE, THEODORO.M.K, TRINCI. A. P. J, HESPELL. R. B. 1985. Growth of anaerobic rumen fungi on defined and semi defined media lacking rumen fluid. J. GEN. Microbial 131: 2225_2229.

0 f $0 (' uif . 2008. Tipaza : Les champs de tomates détruits par un parasite. ELWATAN p12 le: 19/08/2008.

M'HIRIT. O, BENZYANE. M, BENCHEKROUNE. F, ELYOUSFI. S. M et MABJEESH. S. J., COHEN.M et ARIELI.A. 2000. In Vitro Methods for Measuring the Dry Matter Digestibility of Ruminant Feedstuffs: Comparison of Methods and Inoculums Source. Journal of Dairy Science. Vol. 83, N° 10: 2289-2294.

MADANI .T, MOUFFOK. C, FRIOUI.M. 2004. Effet du niveau de concentré dans la ration sur la rentabilité de la production laitière en situation semi-aride algérienne. Renc. Rech. Ruminants., 11, p244.

MANGNIER. L.1990. utilisation des sous produits de la vigne dans l'alimentation animale. Thèse magister INA El-Harrach.73p.

McDOUGALL. E. I. 1947. Studies on Ruminant Saliva. BIO CHEMICAL JOURNAL vol 43, n° 01: 99-109.

MILAGH.M. 2007. L'arbre vert du désert menacé. El Watan : Jeudi 23 août 2007 p21. MORAND-FEHR, R.1981 .les lipides dans les aliments concentrés pour ruminants : in prévision de la valeur nutritive des aliments des ruminants. Ed. INRA publications, Versailles. pp: 297-305.

MORRISON. I. M, 1976. New laboratory methods for predicting what the nutritive value of forage crops. World Rev Animal Prod. 12: 75-80.

MORSLI. A. 1999. Etude de la vitro propagation de l'arganier (Argania spinosa L. skeels) vis-à-vis le microbouturage. Thèse magister INA El Harrach 68p.

NEDJRAOUI, D. 2001 .profil fourrager. Ministère de l'agriculture et du développement rural de l'Algérie. p 36.

NIELSEN. S. S. 1997.Food Analysis Laboratory Manual. Edition Kluwer Academic Plenum Publishers. New York. USA.

NOURA. 2001. Etude de la valeur alimentaire de onze pailles de blé récoltés et traités en Algérie : essai de prévision par la méthode de gaz test. Thèse Magister INA El Harrach 59p. PAMUNGKAS. D, SEVILLA C.C. 2005.The in sacco feed dry matter degradability of inoculated sheep's rumen derived from rumen content of goat. Seminar nasional teknologi peternakan dan veteriner, pp467- 472.

RADI.N. 2003. L'arganier : arbre du sud-ouest marocain, en péril, à protéger. Thèse doctorat. Pharmacie. Univ de NANTES, 59p.

RAHMANI. M. 2005. Composition chimique de l'huile d'Argan « vierge ». Cahiers Agricultures, 14 (5) : 461-465.

RENE. S. 1991. Problèmes généraux de l'utilisation des sous-produits agro-industriels en alimentation animale dans la région méditerranéenne. Options Méditerranéennes - Série séminaires 16 : 75-79.

ROUCHOU, N. 2009. L'évaluation des performances techno-économiques de la production laitière dans quelques exploitations dans la wilaya d'AIN DEFLA. Thèse Ing Agro.UHBC Chlef. 75p

ROUINA.A.D. 1986. Intérêts des sous produits de l'oléiculture en alimentation animale. Ed OPU Alger, 55 p.

SADDEK. A, MOHAMED. S, LYAMINE. M, ALI. T. 2008. Etude de la Complémentation des Pailles Traitées à L'ammoniac (PNH3) avec les pulpes de tomates en vue de réduire la dépendance alimentaire des ruminants domestiques en Algérie. European Journal of Scientific Research vol 22 N° 02 pp: 168-176.

SAUVANT.D, 1981. Valeur énergétique des concentrés in prévision de la valeur nutritive des aliments des ruminants. Ed. INRA publications, Versailles. pp :238-258.

SOOFI R., FAHEY G. C, BERGER L. L ET HINDS F. C. 1982. Digestibilities and Nutrient Intakes by Sheep Fed Mixtures of Soybean Stover and Alfalfa. J Anim Sci 54:841 - 848.

TISSERAND. J. L. 1991 Présentation des Tables de la valeur alimentaire pour les ruminants des fourrages et sous-produits d'origine méditerranéenne. Options Méditerranéennes - Série Séminaires N°16: 23-25.

TRIKI. S, CHABACA. R, BENMESSAOUD. N, FRIOUI. M, TIKIALINE. H.2008. Diversité des systèmes d'élevage ovin et stratégie d'amélioration de l'alimentation par l'utilisation des sous produits agricoles et agro-alimentaires in [ http://www.ina.dz] consulté le 17/06/2009.

VERITE. R ET SAUVANT. D.1981. valeur azotée des concentrés in prévision de la valeur nutritive des aliments des ruminants. Ed. INRA publications, Versailles. pp :279-296.

ZAIDI. F, HASSISSENE. N, BOUBEKEUR. N, BOUAICHE. A , BOUABDELLAH. A, GRONGNET. J F, BELLAL. M. M ET YOUYOU. A. 2007. Etude in vitro de facteurs limitant la valeur nutritive du grignon d'olive: effets des matières grasses et des métabolites secondaires. Lives tock Research for Rural Development, 20 (3) in [ http://www.lrrd.org], consulté le 07/05/2009.

Les éléments	pour1000ml	pour 1500ml	pour 2000ml
KCl	0.6g	0.9g	1 .2g
NaCl	0.6g	0.9g	1.2g
MgSo4	0.5g	0.75g	1g
NH4Cl	0.6g	0.9g	1.2g
CaCl2	0.1g	0.15g	0.2g
Solution d'oligo-éléments	10ml	15ml	20ml
Résazurine a 0.1%	1ml	1.5ml	2ml
Eau distillée	960ml	1440ml	1920ml
PH 7.5 avec KoH 1M
KH2Po4	0.68g 0.3	1.02g	1.36g
Na2Co3	0.4g	0.6g	0.8g
Porter à ébullition puis laissé refroidir (couvrir de papier aluminium)
Mettre sous CO2 et attendre que cela refroidisse
NaHCo3	6g	9g	12g
Cystéine HCL	1g	1 .5g	2g
Placer le milieu sous courant de CO2 jusqu'à sa décoloration

Fig 06 : Extraction de MG par soxhlet (01) et évaporation du solvant par rotavapor(02).

Figure 07: Dosage de l'azote par minéralisation(01), et distillation par BUCHI (02).

Les méthodes de dosage de la MS, M M , MG, CB sont tirées d'une publication de : CI RA D-EMVT, Mars 2003.

Dans une capsule en porcelaine séchée et tarée au préalable, introduire 2 à 5 grammes de l'échantillon à analyser. Porter la capsule dans une étuve à air réglée à 105°c #177;2°c, laisser durant 24 heures.

Refroidir au déssiateur, peser, remettre 1 heure, 3heures à l'étuve et procéder à une nouvelle pesée. Jusqu'à un poids constant.

Porter au four à moufle la capsule plus le résidu qui a servi à la détermination de la MS.

Chauffer progressivement afin d'obtenir une carbonisation sans inflammation de la masse :

L'incinération doit être poursuivie jusqu'à combustion totale de charbon formé et obtention d'un résidu blanc ou gris clair. Refroidir au déssiateur la capsule contenant le résidu de l'incinération, et peser.

Peser 3 à 5 grammes de l'échantillon à analyser, mettre dans une cartouche de

soxhlet. Peser le ballon de soxhlet sec (ballon de 250 ml). Placer la cartouche dans un dans l'extracteur de soxhlet, monter le ballon sur l'extracteur, monter lui-même par un réfrigérant. Verser 1 volume et ¹/2 de solvant dans l'extracteur.

Extraire pendant 6 à 8 heures. A la fin de l'extraction, siphonner le solvant restant dans l'extracteur dans le ballon.

Faire évaporer à l'aide d'un rotavapor rotatif jusqu'à sec (la température d'évaporation varie selon le solvant utilisé).placer le ballon et le résidu à l'étuve à 102°c

Hydrolyse acide: introduire 1 à 2 grammes de l'échantillon dans un ballon de 750 ml. Ajouter 200 ml d'acide sulfurique à 12,5 g/l , préalablement porté à l'ébullition. Adapter le réfrigérant, porter rapidement à l'ébullition. Maintenir celle-ci exactement pendant 30 minutes en agitant le ballon, toutes les 5 minutes, par mouvement rotatoire de façon à remettre en contact avec le liquide les particules collées sur la paroi du ballon. Laisser décanter quelques minutes.

Transvaser quantitativement le liquide dans des tubes à centrifuger en évitant d'entrainer la fraction insoluble. Centrifuger jusqu'à ce que le liquide surnageant le culot soit parfaitement clair. Eliminer la solution par décantation sans entrainer la fraction

insoluble. Laver le résidu du ballon et celui des tubes avec de l'eau distillée bouillante en s'aidant de la centrifugation jusqu'ace que l'eau de lavage soit neutre.

Hydrolyse alcaline : introduire les résidus insolubles des tubes dans le ballon qui a

servi à effectuer l'hydrolyse acide. Ajouter 200 ml de soude 12,5 g/l, préalablement porté à l'ébullition. Faire bouillir durant 30 minutes avec agitation toutes les 5 minutes.

Ensuite filtrer sur creuset en silice, préalablement pesée. Lavé avec de l'eau distillée bouillante. Passer le creuset + résidu à l'étuve à 105°c jusqu'à poids constant, effectuer les pesées après refroidissement au déssiateur, puis incinérer au four à moufle à 400^°c durant 5 heures, refroidir et peser à nouveau.

Minéralisation : introduire 0,5 à 2 grammes de l'échantillon dans un matras sec. Ajouter 2 grammes de catalyseur (250 g de K2SO4 ; 250 g de Cu SO4 et 5 g de Se), et 20 ml H2SO4 pur (d = 1,84). Porter le matras sur le support d'attaque et poursuivre le chauffage jusqu'à décoloration du liquide ou l'obtention d'une coloration verte stable.

Laisser refroidir, puis ajouter peu à peu, avec précaution l'eau distillée jusqu'a 200 ml, en refroidissant sous un courant d'eau. Laisser refroidir complètement.

Distillation : transvaser 10 à 50 ml du contenu du matras dans l'appareil distillatoire (Büchi) avec quelques gouttes de phénolphtaléine. Dans un bécher destiné à recueillir le distillat, introduire 20 ml de l'indicateur composé de :

Verser lentement dans le matras de Büchi lessive de soude (d = 1,33) jusqu'à apparition d'une couleur rose, mettre l'appareil en marche jusqu'à obtention d'un volume de 100 ml au moins.

Titrer par l'acide sulfurique N/20 ou N/50 jusqu'à virage de couleur. 1 ml d'_H2SO4 à 1N correspond 0,014 g d'N.

Peser 10 grammes de l'échantillon dans un bécher de 500 ml et additionner 400 ml d'eau distillée, et 3 grammes de l'acétate de sodium pour neutraliser l'acidité. Porter à ébullition en agitant, pendant 30 mn.

Transvaser, après ébullition la solution dans une fiole de 1 litre. Additionner des petites quantités d'acétate de plomb à 10% tout en agitant jusqu'apparition d'un précipité qui se dépose au fond de la fiole. Ensuite ajouter l'eau distillée dans la fiole jusqu'à trait de jauge, et procéder à la filtration.

Additionner au filtrat une petite quantité d'oxalate de potassium ou carbonate de sodium déshydraté pour précipiter l'acétate de plomb. Filtrer la solution pour éliminer le plomb précipité.

Vérifier la présence de plomb dans la solution en ajoutant une petite quantité d'oxalate de potassium à une partie de solution contenue dans un tube à essai. Si le précipité apparait, continuez à ajouter l'oxalate de potassium jusqu'à la disparition de tous les ions de plomb.

Prendre 5 ml du filtrat, les faire diluer dans 50 ml de l'eau distillée, et à partir de cette solution prendre 1 ml et faire introduire dans un tube à essai, ajouter 1 ml de la solution de phénol à 5%, agiter énergiquement puis verser 5 ml de l'acide sulfurique concentré, agiter, laisser refroidir à l'obscurité pendant 30mn, lire la densité optique à 490 nm.

Préparer une série de tubes à essai dans lesquels on verse 0 ,1 m.....0,9 ml à partir de la solution fille (4/50).

Compléter les tubes à 1 ml avec de l'eau distillée, ajouter 1 ml de phénol 5 % à

tous les tubes à essai ; et agiter. Verser 5 ml de l'acide sulfurique dans chaque tube,

laisser refroidir dans la température de la salle pendant 30 mn, et à l'obscurité. Lire la densité optique à 490 nm.

Tubes	0	1	2	3	4	5	6	7	8	9
S. de glucose (ml)	0	0,1	0,2	0,3	0,4	0,5	0,6	0,7	0,8	0,9
Eau distillée (ml)	1	0,9	0,8	0,7	0,6	0,5	0,4	0,3	0,2	0,1
Phénol (ml)	1	1	1	1	1	1	1	1	1	1
AC.	5	5	5	5	5	5	5	5	5	5
Sulfurique(ml)
Concentration ug/2ml	0	8	16	24	32	40	48	56	64	72

N°	P0.Ech	_P24h.^Ech	_P24h+3h.^Ech	_P24h+3h+1h. Ech	MS (%)	P _four. Ech	MM (%) MS
01	2.24	2.00	2.91	1.91	85.41	0.18	9.42
02	3.00	2.60	2.57	2.56	85.41	0.25	9.76
03	2.74	2.40	2.33	2.33	85.40	0.22	9.44
04	3.22	2.95	2.76	2.75	85.42	0.28	10.18
05	3.08	2.75	2.64	2.63	85.40	0.27	10.26
06	2.08	1.90	1.77	1.77	85.42	0.16	9.03
07	1.93	1.69	1.65	1.64	85.39	0.14	8.53
08	2.19	1.89	1.88	1.87	85.43	0.17	9.09
09	2.54	2.23	2.19	2.16	85.41	0.19	8.79
10	2.59	2.30	2.20	2.21	85.42	0.22	9.95
MOY	-	-	-	-	85.41	-	9.44

N°	P0.Ech	_P24h.^Ech	_P24h+3h.^Ech	_P24h+3h+1h. Ech	MS (%)	P _four. Ech	MM (%) MS
01	1.500	1.289	1.285	1.283	85.53	0.10	7.79
02	1.500	1.290	1.285	1.284	85.60	0.10	7.79
03	1.500	1.289	1.284	1.283	85.53	0.10	7.79
04	1.500	1.290	1.284	1.285	85.66	0.10	7.79
05	1.500	1.285	1.283	1.282	85.46	0.10	7.79
06	1.000	0.859	0.858	0.856	85.16	0.07	8.17
07	1.000	0.858	0.857	0.857	85.70	0.07	8.17
08	1.000	0.861	0.855	0.855	85.50	0.07	9.41
09	1.000	0.860	0.853	0.853	85.30	0.08	8.17
10	1.000	0.865	0.861	0.859	85.90	0.07	8.17
MOY	-	-	-	-	85. 56	-	8.07

P24h+3h. Ech: poids de l'échantillon après 24h + 3h de séchage à l'étuve(g). P24h+3h+1h. Ech: poids de l'échantillon après 24h + 3h + 1h de séchage à l'étuve(g). P _four. Ech : poids de l'échantillon après incinération au four(g).

Tableau IVX : Résultats des différents essais de fermentation de la pulpe et des feuilles.

Temps Ech	0 - 4 h	4 -8 h	8 - 12 h	12 - 24 h	24 - 36 h	36 - 48 h	48 - 72 h	72 - 96 h
Blanc 1	73	85	40	86	36	15	00	00
F 1	145	147	82	125	83	59	32	18
F 2	140	143	80	126	85	57	34	16
F 3	147	142	82	125	82	60	32	19
P 1	133	135	93	126	62	31	22	07
P 2	137	139	99	120	60	28	19	05
P 3	141	142	94	123	61	29	21	05
Blanc 2	80	83	50	72	50	40	20	00
F 1	150	151	105	118	99	83	50	10
F 2	151	151	95	116	96	84	53	12
F 3	153	150	93	118	96	82	51	14
P 1	137	139	103	108	75	55	41	03
P 2	135	138	102	108	73	55	42	04