Memoire Online - Impact de la cacaoculture sur la flore et la végétation en zone de forêt dense sémi-décidue: cas du département d'Oumé en Côte d'ivoire

DIPLÔME D'ÉTUDES APPROFONDIES DE BOTANIQUE
Option : ÉCOLOGIE VÉGÉTALE
Par
KONAN Djézou
THÈME

ÉVALUATION DE L'IMPACT DE LA CACAOCULTURE SUR LA FLORE ET LA VÉGÉTATION EN ZONE DE FORÊT DENSE HUMIDE SEMI-DÉCIDUE : CAS DU DÉPARTEMENT D'OUMÉ.

M. N'GUESSAN Kouakou Edouard Maître de Conférences, Université de Cocody-Abidjan Président

M. TRAORÉ Dossahoua Professeur Titulaire, Université de Cocody-Abidjan Directeur

M. KOUAMÉ N'guessan François Maître-Assistant, Université de Cocody-Abidjan Examinateur

Résumé

La pratique de l'agriculture itinérante incontrôlée dans le Centre-Ouest de la Côte d'Ivoire, précisément à Oumé a eu des effets négatifs sur les blocs forestiers qui sont des réserves de ressources génétiques forestières très importantes. Nous assistons impuissamment à la régression des surfaces forestières au profit des plantations de cacaoyers ainsi que la disparition de certaines espèces importantes.

La présente étude effectuée dans cette région avait pour objectif d'évaluer l'impact de la cacaoculture sur la flore et la végétation. Pour atteindre cet objectif, notre étude a porté sur la comparaison de la structure de la végétation des plantations de différentes classes d'âge, des fragments de forêt et des jachères considérées ici comme stade intermédiaire entre les plantations et les fragments forestiers. Nous avons évalué également le potentiel de régénération des espèces ligneuses des milieux anthropisés dans le but d'envisager une reprise de la végétation dans les milieux post-culturaux.

Les résultats obtenus, nous ont permis de comprendre que la cacaoculture entraîne la disparition de certaines espèces naturelles en lieu et place des espèces introduites pour l'alimentation, la médicine et l'artisanat. Les espèces ligneuses sont très rares dans les plantations. Les milieux post-culturaux (jachères) sont colonisés par les espèces de brousses secondaires. L'influence humaine se perçoit également dans les fragments de forêt où la structure de la végétation est plus dense dans la basse strate. Les pratiques agricoles à Oumé constituent donc une menace pour la préservation de la biodiversité forestière.

Mots clés : Évaluation, impact, cacaoculture, flore, végétation, Département d'Oumé.

Abstract

The practice of uncontrolled itinerant agriculture in the central West of Côte d'Ivoire, precisely in Oumé, has negatively affected the forests which are very important reserves of genetic forest resources. Due to the unhampered creation of new cacao plantations forest surfaces continue to decline and certain important species are disappearing.

The present study carried out in this area aimed to evaluate the impact of cacao culture on flora and vegetation. To achieve this objective, our study focused on comparing the vegetation structure of the plantations of various age classes, of forest fragments and of fallows, which were considered here as intermediate stage between plantations and forest fragments. We also evaluated the regeneration potential of woody species in the anthropogenically disturbed areas in order to study the regeneration of the vegetation on the post-cultivation areas.

The achieved results revealed that cacao culture leads to the disappearance of certain natural species and to the presence of species that are introduced for purposes of feeding, medicine and crafts. Yet the woody species are very rare in the plantations. The post-cultivation areas (fallows) are colonized by species of secondary shrubs. Human impact is also notable in the forest fragments where vegetation structure is dense in the bottom stratum. The practice of agriculture in the Oumé region thus threatens the conservation of forest biodiversity.

Key words: Evaluation, impact, cacao culture, flora, vegetation, Department of Oumé.

Dans le cadre de la préparation du mémoire du Diplôme d'Études Approfondies, nous avons bénéficié du soutien matériel et financier du projet BIOTA sur une période d'un an (du 1er Août 2006 au 31 Juillet 2007). Nous tenons à remercier le Professeur Stefan POREMBSKI de l'Université de Rostock qui nous a accepté dans le projet.

La présente étude n'aurait pu être possible sans le concours de plusieurs personnes auxquelles nous voudrions rendre hommage et exprimer nos sincères remerciements. Qu'elles trouvent ici l'expression de nos sincères gratitudes. Nos remerciements vont particulièrement à l'endroit:

- du Professeur N'GUESSAN Kouakou Edouard, Responsable du D.E.A de Botanique, pour nous avoir autorisé notre inscription au D.E.A ;

- du Professeur TRAORE Dossahoua, Directeur de recherche de notre travail. Nous le

remercions pour son soutien et pour ses conseils pendant nos moments difficiles ;

- du Docteur Dethardt GOETZE, qui malgré la distance qui nous sépare, a toujours suivi

- du Docteur KOUAME N'Guessan François, qui au moment où nous nous souscions de trouver un stage, nous a fait confiance en nous intégrant dans le projet BIOTA, Docteur, votre geste nous a permis de bénéficier d'une bourse qui a facilité nos travaux de recherche ; malgré tous les problèmes rencontrés, vous n'aviez cessé de nous donner des conseils ;

- du Docteur KOULIBALY Annick Victoire, pour avoir été toujours à nos côtés, pendant les moments difficiles de nos travaux ; nous vous remercions pour notre formation à la statistique ;

- des Professeurs AKÉ ASSI Laurent et NGUETTA Assanvo Simon Pierre, des

DIAWARA Adama, DA Kouhété Philippe pour leur formation théorique à l'A.E.A ; - des Docteurs IPOU Ipou Joseph et ADOU Yao Yves Constant, pour leurs conseils.

Nos remerciements s'adressent également à Monsieur DOUGOUNÉ Bi Saturnin qui, malgré son calendrier chargé, a accepté de nous aider sur le terrain, pour l'identification des espèces. Nous remercions nos parents, en l'occurrence Monsieur KONAN N'Dri Prosper et le Colonel KONAN N'Goran qui nous ont toujours soutenu et prodigué de sages conseils. Enfin, nos sincères gratitudes aux nombreux anonymes et à tous ceux que nous aurons omis involontairement et qui ont contribué à la réalisation de ce travail. Nous ne saurons terminer sans rendre gloire à Dieu pour ses grâces qui ont marqué notre vie.

II-3-1-6-Classification ascendante des relevés sur la base d'indices de Distance .15

ouvrage dans lequel sont énumérées toutes les espèces végétales d'une région.

Forêt secondaire : se dit d'une formation végétale non originelle, liée à l'action de

Hauteur totale : distance verticale séparant le niveau du sol du sommet de l'arbre

Jachères : se dit d'une plantation abandonnée suite à la mort des pieds de

Similarité : expression de la ressemblance écologique entre des espèces ou des

Souche : partie d'un arbre qui reste enracinée après que l'arbre ait été coupé.

Végétation : ensemble des individus des espèces végétales groupées en quantité

Fig. 4 : Carte de la végétation de la Côte d'Ivoire et localisation de la zone d'étude ...8

Fig. 5 : Installation d'une parcelle de relevé floristique dans une plantation de cacaoyer

Fig. 14 : Distribution des 54 relevés étudiés par Analyse de correspondance 22

Tableau III : Nombre d'individus ligneux à l'hectare par classe de hauteur (m) 24

Tableau IV : Fréquences relatives des espèces dans la régénération des 6 milieux, exprimées en p.c . ...28

INTRODUCTION

La couverture forestière de la Côte d'ivoire dans les années 1900, était de 16 millions d'hectares (CHATELAIN et al., 2004). En 2000, le BNETD (2005), l'a évalué à 6,38 millions d'hectares, composée de 4,2 millions d'hectares de forêts classées constituées par les plantations forestières industrielles et les réserves biologiques de la flore et de 2,18 millions d'hectares d'aires protégées sous forme de Parcs nationaux et de Réserves. Aujourd'hui, la zone forestière est réduite à quelques lambeaux de forêts secondaires, isolés au sein d'une succession de plantations villageoises ou industrielles et de jachères.

L'essor démographique ayant entraîné des besoins alimentaires et économiques plus accrus, la pression sur le patrimoine forestier de la Côte d'Ivoire est devenue très forte. La dégradation de l'environnement forestier et de sa biodiversité a touché toutes les régions de la Côte d'Ivoire, particulièrement celles du Sud-Ouest qui, en 1996, représentaient 91 p.c. des zones forestières du pays (CHATELAIN et al., 2004). La diminution, voire même la disparition des forêts ivoiriennes trouve son origine dans les feux de forêts, l'exploitation abusive et anarchique des ressources foncières et forestières, à savoir l'abattage, l'agriculture itinérante et surtout l'extension de l'agriculture traditionnelle en agriculture industrielle (FAO, 2003). L'agriculture constitue la principale cause de la déforestation en Côte d'ivoire, car les agriculteurs ont recours à un système cultural caractérisé par une pratique agricole sur brûlis, ce qui entraîne une destruction rapide de la biomasse.

Comme dans la plupart des pays, en Afrique de l'Ouest, la Côte d'Ivoire a hérité, de la période coloniale, la création des plantations de cacaoyers dans le Sud-Est et le Centre-Est du pays, qui fut la première boucle de cacao. Dès la fin des années 1950, les plantations de cacaoyers ont été créées dans le Centre-Ouest en drainant les anciens planteurs du Centre-Est et les agriculteurs originaires des savanes baoulé. Quelques années après, cette région devient la deuxième boucle de cacao de la Côte d'Ivoire avant de faire place aujourd'hui au Sud-Ouest forestier après la construction des voies de communication et l'ouverture du port de San-Pédro. Les plantations de cacaoyers occupent 15,62 p.c. de la couverture forestière de la Côte d'Ivoire (MANYONG et al., 1996 ; SONWA et al., 2000, 2001). Leur création à la périphérie des forêts entraîne des répercutions sur le patrimoine forestier.

Aujourd'hui, suite à la destruction du massif forestier de la Côte d'Ivoire, pour la création des plantations de cacaoyers, le projet BIOTA a initié une étude dans le Département d'Oumé, la précédente boucle de cacao. L'objectif principal de cette étude est porté sur

l'évaluation de l'impact de la cacaoculture sur la biodiversité et les ressources naturelles végétales de ce Département.

Le premier objectif spécifique de notre étude s'intéresse à la description de la composition floristique des fragments de forêt et des milieux anthropisés. Cette partie fait l'objet d'un inventaire floristique de ces différents types de végétation afin d'avoir une idée de la diversité végétale actuelle de notre zone d'étude.

Le second objectif porte sur l'analyse de la structure verticale et horizontale de ces différents biotopes. Ce volet nous permettra d'apprécier l'état de dégradation ou de conservation de l'environnement de cette zone.

La connaissance de la dynamique de la régénération, en terme de potentiel de reconstitution de la forêt, reste une information essentielle pour les plans d'aménagement des milieux perturbés (KOULIBALY, 2008). C'est dans cette optique que le troisième objectif traitera la dynamique de la régénération des espèces ligneuses dans les plantations de cacaoyers, des jachères et des îlots forestiers. Cette dernière partie donnera une idée du potentiel de restauration des plantations après leur abandon.

Ce manuscrit est composé de quatre parties essentielles outre l'introduction et la conclusion suivie de perspectives et de recommandations :

- la première partie est consacrée aux généralités sur le milieu d'étude ; - la deuxième traite du matériel et des méthodes ;

CHAPITRE I : GÉNÉRALITÉS SUR LE MILIEU D'ÉTUDE

I-2-1- Climat

La température moyenne annuelle entre 1990 et 2004 du Département d'Oumé, enregistrée à la station de la SODEFOR Téné, est de 26,72 °C avec un minimum de 24,77 °C en Juillet et un maximum de 28,12 °C en Février. La pluviométrie totale annuelle est de 1100.74 mm.

Le climat de ce Département est qualifié par LECOMTE (1990) de type Subéquatorial à pluviométrie bimodale. Le diagramme ombrothermique (fig. 3) présente quatre saisons : une grande saison sèche de Novembre à Février, très marquée en Janvier, suivie d'une longue saison des pluies, allant de Mars en Juin, d'une petite saison sèche s'étendant de Juillet à Août et enfin d'une courte saison des pluies de Septembre à Octobre.

I-2-2- Hydrographie

Oumé appartient au bassin versant du fleuve Bandama situé vers l'Est du Département (GIRARD, 1971), qui en constitue la limite naturelle avec le Département de Toumodi. La région est arrosée par la Téné et la Sangoué, deux affluents du Bandama, eux-mêmes alimentés par de petits cours d'eaux.

(Source : Division Géographique du Ministère des Affaires Étrangères, 2009)

(Source : Bureau National d'Etudes Techniques et de Développement, 2002. Centre de Cartographie et de Télédétection. Projet CIAT-TSBF/GF/2715-02.)

I-2-3- Sol et sous-sol

Le Département est couvert par des sols ferrallitiques moyennement désaturés sous une pluviométrie atténuée (CLEMENT, 1970). On y distingue trois grandes nuances pédologiques selon le relief, avec des différenciations sur des toposéquences (LECOMTE, 1990) :

I-2-4- Végétation

Le Département d'Oumé appartient au Secteur mésophile du Domaine guinéen (MONNIER, 1983). Il marque la transition entre la forêt et la savane où les formations sont représentées par des lambeaux ou des îlots forestiers dont la composition floristique est celle des forêts semi-décidues (Fig. 4), caractérisée par Celtis spp. et Triplochiton scleroxylon (AMAN et al., 1996). Ces forêts, qui répondent à la définition de formations forestières fermées, ont une architecture pluristratifiée et sont caractérisées par la chute quasi simultanée des feuilles des grands arbres (GUILLAUMET et al., 1971). On note très peu d'épiphytes et le sous-bois est constitué de nombreux sous arbrisseaux et d'herbacées.

La végétation actuelle du Département d'Oumé est caractérisée par une anthropisation aiguë.

Elle est constituée de quelques îlots forestiers appauvris, de grandes proportions de jachères à Chromolaena
odorata et de Albizia spp., de cultures pérennes tels que le café, le cacao et de plantations artificielles

d'essences forestières (OIBT, 2004). Ces plantations forestières sont réalisées par la SODEFOR avec les espèces comme Terminalia superba, Tectona grandis, Cedrela odorata, Gmelina arborea, Triplonchiton scleroxylon, Terminalia ivorensis.

I-3- Population riveraine

La population du Département d'Oumé est répartie entre 33 p.c. d'autochtones constitués par les Gagou et les Gouro et 67 p.c. d'allogènes et d'étrangers. Les allogènes, composés de Baoulé, de Malinké et de Sénoufo, viennent des régions des savanes, du Centre

Fig. 4 : Carte de la végétation de la Côte d'Ivoire et localisation de la zone d'étude. (Source : BNETD, 2007)

et du Nord de la Côte d'Ivoire. Les étrangers avec 32 p.c. sont constitués en majorité par les Burkinabé et les Maliens (GNIMA, 2002).

I-4- Activités socio-économiques

L'agriculture est la principale activité dans le Département d'Oumé. Le cacaoyer : Theobroma cacao et le caféier : Coffea canephora, occupent le premier rang dans l'activité économique de la population (GNAHOUA, 1996).

Dans les premières années de plantation, l'agriculteur associe les cacaoyers aux bananiers : Musa paradisiaca, aux ignames : Dioscorea spp. ou au taro : Colocasia esculenta. En plus de ces cultures, les paysans cultivent également le maïs : Zea mays, le riz : Oryza sativa et bien d'autres cultures.

CHAPITRE II : MATÉRIEL ET MÉTHODES D'ÉTUDE

II-1- MATÉRIEL

La collecte des données de terrain a nécessité l'utilisation du matériel suivant :

v' des rubans gradués pour mesurer les parcelles et les circonférences des troncs des ligneux de plus de 2 m de hauteur.

v' des jalons de 2 m, emboîtables, pour la mesure de la hauteur totale des individus ligneux ;

II-2- MÉTHODES DE TERRAIN

II-2-1- Choix des sites

Les sites (tableau I) ont été sélectionnés à partir de la carte établie par le projet CSMBGBD. Nous avons retenu 24 plantations localisées pour la plupart aux abords des îlots forestiers. Dans le but de faire une étude comparative et complémentaire avec les travaux de KOULIBALY (2008) effectués à Lamto, nous avons réparti ces plantations en 4 classes d'âge distribuées comme suit : [1-5 ans] ; [6-10 ans] ; [11-20 ans] (Fig. 5) et [21-40 ans]. Trois jachères ont été étudiées (Fig. 6 et 7). Nous avons retenu enfin 3 fragments de forêt bordés par des plantations de cacaoyers (Fig. 8). À l'issus de nos choix, nous avons procédé finalement à une prospection des sites.

II-2-2- Relevés floristiques itinérants

Cette méthode de relevé botanique a été utilisée par CHEVALIER (1948), AUBREVILLE (1959) et AKE ASSI (1984, 2001, 2002). Elle consiste à parcourir le milieu dans toutes les directions, en notant toutes les espèces de plantes rencontrées (AKE ASSI, 1984). Nous avons adopté cette méthode à l'intérieur des fragments de forêt, des plantations et des jachères dans le but d'établir la liste floristique de la zone d'étude.

II-2-3- Relevés de surfaces

Dans chaque catégorie de végétation, nous avons installé des parcelles de forme rectangulaire de 50 m de longueur et 10 m de largeur, soit une superficie de 500 m². Chaque parcelle est ensuite subdivisée en 5 placettes de 10 m de côté, soit 100 m² de surface où nous avons caractérisé la structure verticale et horizontale des différents types de végétation, en

Fig. 5 : Installation d'une parcelle de relevé Fig. 6 : Jachère à Chromoleana odorata dans la

floristique dans une plantation de cacaoyers de 18 région d'Oumé. (Photo Konan Djézou, Mai 2008).

mesurant la hauteur totale et la circonférence du tronc de tous les individus de plus de 2 m de hauteur (Fig. 9). Pour les espèces inférieures à 2 m de hauteur, on ne note que leur présence pour établir la liste floristique de la zone d'étude.

Nous avons choisi la placette centrale (Fig. 10), où nous avons compté tous les individus dans le but d'évaluer la densité des espèces ligneuses inférieures à 2 m de hauteur dans les fragments forestiers et les milieux agroforêts.

II-3- MÉTHODES D'ANALYSE

II-3-1- Analyses floristiques

II-3-1-1- Richesse floristique

La richesse floristique est définie par AKE ASSI (1984) comme le nombre d'espèces recensées à l'intérieur des limites d'un territoire, compte tenu de sa surface. Elle désigne donc le nombre de taxons qui se trouvent dans ce milieu, sans juger de leur fréquence, ni de leur abondance, ni même de la taille et de la productivité des espèces rencontrées (KOUAME, 1998). La richesse floristique a permis de faire une étude comparative des fragments de forêt et des milieux anthropisés.

II-3-1-2- Diversité générique

La diversité générique, au sein d'une famille donnée, est le rapport du nombre total des espèces par celui des genres (AKÉ ASSI, 1984). Il se calcule selon la formule suivante : Ig = G / E avec Ig l'indice de diversité générique, G le nombre total de genres et E celui des espèces. Cet indice permet d'apprécier la diversité floristique de chaque milieu. Selon AKÉ ASSI (1984), plus Ig est faible, plus la flore est diversifiée ; mais lorsque Ig est élevé la flore est moins diversifiée. La valeur seuil en dessous de laquelle l'indice est qualifié de faible est 4 (AKÉ ASSI, 1998).

II-3-1-3- Répartition des types biologiques

Les types biologiques sont un système de classification des végétaux initié par RAUNKIAER (1934), afin d'organiser tous les végétaux selon le positionnement des organes de survie de la plante durant la période défavorable. Nous nous sommes basés sur cette classification pour caractériser la flore des 6 milieux inventoriés en différents groupes qui sont : les mégaphanérophytes, les mésophanérophytes, les microphanérophytes, les nanophanérophytes, les thérophytes, les chaméphytes, les géophytes à tubercule, les géophytes à rhizome, les géophytes à bulbe et les hémicryptophytes.

II-3-1-4- Analyse de correspondance (AC).

Dans l'objectif de comparer les 54 relevés des fragments de forêt et des milieux anthropisés sur la base de leur composition floristique, nous avons opté pour l'analyse de correspondance qui est une technique d'analyse indirecte de gradient traitant des données floristiques indépendamment des variables environnementales (LLOYD et al., 1994). Elle produit une représentation graphique étalant dans un plan les relevés floristiques sur deux axes. Dans notre étude nous avons utilisé cette analyse pour la distribution spatiale des 54 relevés des fragments de forêt, des jachères et des plantations en fonction des paramètres floristiques et environnementaux. L'analyse de correspondance a été menée avec le logiciel CANOCO version 4.5.

II-3-1-5- Coefficient de similitude

Le coefficient de similitude permet d'apprécier le degré de ressemblance des listes d'espèces des différents milieux inventoriés pris deux à deux. Ce coefficient ne tient pas compte de l'effectif des espèces rencontrées, mais plutôt de la présence ou de l'absence des espèces. Parmi diverses formules valables les unes que les autres (GOUNOT, 1969), nous avons retenu celle proposée par SØRENSEN (1948). En effet, si nous désignons par A et B les nombres respectifs d'espèces des deux listes I et II et par C, le nombre d'espèces communes aux deux listes. SØRENSEN (1948) a défini ce coefficient comme suit :

Cs = [(2C) x (A+B)] x 100. Deux milieux comparés sont proches sur le plan de la composition floristique, si le coefficient de similitude est supérieur ou égal à 50 p.c.

II-3-1-6-Classification ascendante des relevés sur la base d'indices de distance

La classification ascendante est une méthode qui groupe des objets semblables dans des catégories respectives. Plusieurs méthodes de regroupement existent pour la construction d'un dendrogramme de ressemblance entre relevés floristiques. Pour la distribution de nos différents milieux, nous avons utilisé la classification ascendante sur la base d'indices de distance euclidienne avec le logiciel XLSTAT version 12.0.

II-3-2- Analyses structurales

II-3-2-1-Distribution des classes de hauteur et de circonférence

La hauteur totale et la circonférence du tronc des ligneux sont des paramètres importants à mesurer ou à estimer en vue de déterminer le degré de perturbation indiqué par une strate inférieure dense, ou de protection avec une strate supérieure dense des formations

végétales. Dans le but de caractériser les strates des fragments de forêt, des jachères et des plantations, nous avons effectué des mesures structurales au sein de ces milieux. Nous avons comparé les strates des fragments forestiers à celles des milieux anthropisés afin de détecter l'évolution de la végétation ligneuse dans les milieux anthropisés. Les données ont été regroupées dans 5 classes de hauteur et de circonférence. Les classes de hauteur retenues sont : [2-4 m] ; ] 4-8 m] ; ]8-12 m] ; ]12-20 m] ; [> 20 m] et celles des circonférences sont réparties comme suit : [0-5 cm] ; ]5-10 cm] ; ]10-20 cm] ; ]20-40 cm] et [> 40 cm].

II-3-2-2- Boîte à moustaches

La boîte à moustaches est une invention de TUKEY (1977) pour représenter schématiquement la distribution d'une variable. Cette représentation graphique résume la dispersion d'une série de données à partir de 5 valeurs : le minimum, les 3 quartiles Q1, Q2 (médiane), Q3 et le maximum. Les boîtes à moustaches servent principalement à comparer un même caractère dans des populations de tailles différentes. Elles sont utilisées dans ce mémoire pour détecter si l'âge est un facteur significatif du changement des paramètres structuraux durant les années de plantation. Nous avons appliqué le test de TUKEY pour détecter les différences significatives entre les fragments de forêt, des jachères et des plantations de différentes classes d'âge avec une erreur de 5 p.c. (p < 0.05). Cette analyse a été effectuée avec le logiciel SPSS version 16.0.

II-3-3- Fréquence spécifique (Fs)

La fréquence spécifique d'une espèce est le nombre de points où cette espèce a été rencontrée (LAMOTTE, 1962). Elle exprime la présence ou l'absence de l'espèce. Dans le cas de notre étude, la fréquence spécifique d'une espèce est le rapport entre le nombre de placettes dans lesquelles l'espèce est présente et le nombre total de placettes de chaque unité de végétation à savoir les fragments de forêt, les jachères et les plantations. La fréquence spécifique a été adoptée dans le but de détecter les espèces rares ou abondantes dans la recolonisation des différents milieux inventoriés. Elle a permis également de faire ressortir la préférence des espèces dans la régénération des différents milieux en suivant un gradient allant des fragments de forêt aux jachères, en transitant par les plantations de différentes classes d'âge.

CHAPITRE III : RÉSULTATS

III-1- Composition floristique

III-1-1-Richesse floristique

La synthèse de la flore issue de l'inventaire itinérant et des relevés de surfaces a donné une liste de 387 espèces végétales distribuées dans 86 familles (Annexe). Dans les fragments de forêt nous avons dénombré 224 espèces réparties entre 64 familles dominées par les Rubiaceae. Les jachères ont une richesse floristique de 143 espèces réparties entre 47 familles plus représentées en Euphorbiaceae. Les plantations de 21 à 40 ans renferment 130 espèces réparties entre 53 familles dominées par les Euphorbiaceae (Fig. 11). Les plantations de 11 à 20 ans ont donné 124 espèces réparties entre 49 familles avec une prédominance des Euphorbiaceae. La richesse floristique des plantations de 6 à 10 ans est de 114 espèces réparties entre 50 familles, où les Euphorbiaceae renferment plus d'espèces. Enfin, dans les plantations de 1 à 5 ans, nous avons dénombré 214 espèces réparties entre 69 familles dont les Poaceae sont les plus abondantes. Certaines espèces se retrouvent aussi bien dans les fragments de forêt que dans les jachères et les plantations à savoir Antiaris toxicaria var. africana, Albizia adianthifolia, Albizia zygia, Allophyllus africanus, Baphia nitida, Blighia sapida, Blighia unijugata, Celtis mildbraedii, Cola gigantea, Deinbollia pinnata, Ficus exasperata, Ficus mucuso, Funtumia africana, Lecaniodiscus cupanioides, Pterygota macrocarpa et Trichilia heudelotii (Annexe). Les espèces ligneuses les plus abondantes dans les plantations de 1 à 5 ans sont par ordre d'importance : Millettia zechiana, Mansonia altissima, Albizia zygia et Nesogordonia papaverifera. Dans les plantations de 6 à 10 ans, le nombre de ligneux est moins abondant. Les plantations de 11 à 20 ans se distinguent des autres milieux avec une Mangifera indica comme espèce dominante. Celles de 21 à 40 ans se caractérisent avec Ficus exasperata. Les espèces comme Millettia zechiana, Trichilia heudelotii, Albizia zygia, Ficus exasperata, Mallotus oppositifolius et Albizia adianthifolia sont bien représentées dans les jachères.

L'indice de diversité générique des fragments de forêt est de 1,2 contre 1,1 pour les plantations et les jachères. On constate que, malgré la richesse de la flore des fragments forestiers, elle n'est pas plus diversifiée que celle des milieux anthropisés.

Légende: PL.1-5 = plantations de 1 à 5 ans PL.6-10 = plantations de 6 à 10 ans PL.11-20 = plantations de 11 à 20 ans PL.21-40 = plantations de 21 à 40 ans

III-1-2-Influence de la densité des cacaoyers sur la richesse floristique des plantations

L'influence de la densité des cacaoyers sur le nombre d'espèces dans les plantations se définie en trois phases (figure 12). La première phase part de la première à la cinquième année de plantation, où la courbe de la densité des cacaoyers est inférieure à celle du nombre d'espèces. Nous assistons par la suite à la diminution du nombre d'espèces pendant que la densité des cacaoyers augmente considérablement. L'augmentation de la densité des cacaoyers dans les plantations de 1 à 5 ans s'explique par une intensification du nombre de pieds de cacaoyers au début de la création des plantations, dont la réussite se fait de manière progressive. Nous avons également des apports extérieurs des fèves de cacao par les animaux tels que les rats et les écureuils.

La deuxième phase s'étend entre les plantations de 6 à 10 ans avec la densité des cacaoyers atteignant un maximum de 227 indiv./ha et le nombre d'espèces un minimum de 114 espèces/ha.

Enfin la troisième phase débute dans les plantations de 11 à 20 ans et se prolonge dans les jachères. La densité des cacaoyers diminue fortement jusqu'à une valeur très faible de 26 indiv./ha dans les jachères dont l'âge est au-delà de 40 ans. Quant au nombre d'espèces, on assiste à une augmentation progressive, au fur et à mesure que les plantations prennent de l'âge. La diminution du nombre de pieds de cacaoyers dans les plantations jeunes et âgées est due à un élagage effectué par les paysans pour favoriser le grossissement de certains pieds afin d'accroître la production. La mort d'un nombre important de pieds de cacaoyers dans les plantations âgées, entraîne une très faible densité dans les jachères.

III-1-3- Répartition des types biologiques.

La figure 13 montre la répartition des types biologiques dans les fragments de forêt et des milieux anthropisés. La flore des fragments de forêt, des jachères et des plantations de cacaoyers inventoriée, est dominée par les microphanérophytes arbustifs. Les fragments de forêt renferment 32 p.c. de microphanérophytes arbustifs, 18,22 p.c de mésophanérophytes et 14, 22 p.c. de mégaphanérophytes arborescents. Les thérophytes sont absentes dans ce milieu.

Dans les jachères, la proportion des microphanérophytes arbustifs est presque similaire aux fragments de forêt avec 30,21 p.c. Les mésophanérophytes et les mégaphanérophytes arborescents occupent une place importante avec des proportions respectives de 14,38 p.c et 10,79 p.c. Les plantations de 21 à 40 ans sont caractérisées par les mégaphanérophytes arborescents avec une proportion de 8,48 p.c. À l'intérieur des plantations de 11 à 20 ans, on

Fig. 12 : Relation entre la densité des cacaoyers et la richesse floristique des plantations de cacaoyers

observe une proportion importante de nanophanérophytes avec 16,66 p.c. Les mégaphanérophytes arborescents se font rares avec 4,76 p.c. de représentativité. Les plantations de 1 à 5 ans et de 6 à 10 ans ont les mêmes caractéristiques que les plantations de 11 à 20 ans, avec une proportion élevée de nanophanérophytes et de mésophanérophytes.

III-1-4-Distribution spatiale des relevés

L'analyse de correspondance des 54 relevés des 6 milieux étudiés, a fait ressortir 5 groupes suivant les deux premiers axes (Figure 14). L'axe 1 traduit un gradient de perturbation de la flore sous l'influence des pratiques culturales. Ce gradient part des milieux les moins perturbés du côté négatif de l'axe 1 vers les milieux les plus perturbés du côté positif. La partie négative de l'axe 1, correspondant aux milieux les moins perturbés, est constituée des relevés des fragments de forêt distribués en deux groupes, I et II et des relevés des plantations de 1 an. Le groupe I renferme les relevés des fragments de forêt 2 et 3, le groupe II les relevés du fragment de forêt 1et le groupe 3 celles des plantations de 1 an. Dans la partie positive, traduisant les milieux les plus perturbés, on ne rencontre que les relevés des milieux anthropisés : les jachères et les plantations. Ces milieux sont repartis en deux groupes, III et IV. Le groupe III est constitué de tous les relevés des jachères et le groupe IV les relevés des plantations. La dissimilarité de la composition floristique entre les fragments de forêt et les milieux sous influence de la cacaoculture se démontre avec l'axe 1. Les relevés des plantations de 1 an du côté négatif, proche des fragments forestiers, montre qu'au début de la création des plantations, les paysans conservent l'écosystème forestier pour protéger les jeunes plants de cacaoyers contre les rayonnements solaires. Les relevés des jachères se situent entre les parties positive et négative de l'axe 1. Cela traduit une évolution des milieux pos-culturaux vers des formations de forêts secondaires. La séparation des relevés des 3 fragments de forêt en 2 groupes, des jachères et des plantations peut s'expliquer par l'axe 2. La composition floristique est le paramètre qui caractérise l'axe 2. Cet axe traduit un gradient de ressemblance floristique entre les différents groupes. Ce gradient part des milieux floristiquement différents du côté négatif, constitué du fragment forestier 1 et des plantations de plus de 1 an vers les milieux floristiquement presque semblables du côté positif, renfermant les fragments de forêt 2 et 3, les plantations de 1 an et les jachères.

Ce gradient de ressemblance floristique se justifie avec la matrice de similarité entre les 5 groupes (tableau II). Nous observons des coefficients de similitude élevés entre les fragments de forêt 2 et 3 avec les plantations de 1 an et les jachères respectivement 56,2 p.c.

R1-R9 : relevés des plantations de 1 à 5 ans R10-R18 : relevés des plantations de 6 à 10 ans R19-R27 : relevés des plantations de 11 à 20 ans R28-R36 : relevés des plantations de 21 à 40 ans R37-R45 : relevés des Jachères

Fig. 14 : Distribution des 54 relevés étudiés par Analyse de Correspondance

et 51 p.c., puis faible avec le fragment forestier 1 et les plantations de plus de 1 an avec 48,6 p.c. et 46,2.

La classification ascendante des 5 milieux basée sur la présence ou l'absence des espèces, confirme la distribution de similarité des 5 groupes suivant l'axe 2 (Fig. 15). Ainsi en fonction du degré de ressemblance floristique, on remarque que la première division sépare les plantations de plus de 1 an et les jachères des plantations de 1 an et des fragments forestiers. Les plantations de plus de 1 an sont les plus distantes des fragments forestiers. Cette observation montre que la flore des plantations âgées est très perturbée suite aux actions mécaniques et chimiques des paysans pendant plusieurs années. Les plantations de 1 an se séparent au deuxième niveau de division avec les fragments de forêt 2 et 3 du fragment forestier 1, et se situent entre les deux groupes de fragments de forêt. Cela signifie que la flore des plantations très jeunes est moins perturbée, à tel enseigne que leur composition floristique est presque similaire à celle des fragments de forêt.

III-2- STRUCTURE DE LA VÉGÉTATION

III-2-1-Distribution des classes de hauteur

La stratification de la végétation des fragments de forêt, des jachères et des plantations autre que les cacaoyers montre une densité importante de ligneux à l'intérieur des fragments de forêt dans toutes les strates par rapport aux milieux anthropisés (tableau III). Les plantations de 1 à 5 ans et les jachères se distinguent des autres plantations avec un nombre élevé de ligneux dans les strates de 2 à 12 m de hauteur.

Les plantations de 1 à 5 ans sont dominées par les arbrisseaux et les arbustes avec respectivement 18 et 30 indiv./ha. Cela traduit que, lors de la mise en place des plantations de cacaoyers, les paysans détruisent les arbres et ne laissent que les arbustes. Les espèces dominantes dans ces strates sont Millettia zechiana, 15 indiv./ha et Ficus exasperata, 13 indiv./ha. À l'intérieur des plantations âgées, les ligneux se font rares dans toutes les strates. Les quelques espèces naturelles rencontrées sont Irvingia gabonensis et Ricinodendron heudelotii. Les plantations de 6 à 10 ans sont pratiquement dépourvues des ligneux naturels.

La structure des jachères est plus représentée par les arbres de petites tailles de 8 à 12 m de hauteur avec 77 indiv./ha, dominée par Spondias mombin, Alstonia boonei et Antiaris toxicaria var. africana. Les arbrisseaux et les arbustes sont également nombreuses, caractérisés par Trichilia heudelotii, Millettia zechiana et Mallotus oppositifolius.

Fig. 15 : Classification hiérarchique des 6 milieux inventoriés basée sur l'indice Distances de liaisons euclidiennes.

Tableau III : Nombre d'individus ligneux à l'hectare par classe de hauteur (m)

La flore ligneuse des fragments de forêt est caractérisée par une forte densité d'arbrisseaux de 161 indiv./ha et d'arbustes de 100 indiv./ha. Ils sont dominés par Nesogordonia papaverifera avec 149 indiv./ha suivie de Funtumia africana avec 148 indiv./ ha. et de Millettia zechiana, 115 indiv./ha. Dans la strate de plus de 12 m de hauteur, on rencontre quelques pieds de Nesogordonia papaverifera, de Antiaris toxicaria var. africana, de Pycnanthus angolensis, de Trichilia heudelotii et de Trichilia prieureana.

III-2-2- Distribution des classes de circonférence

L'analyse de variance avec le test de TUKEY montre une différence significative entre les fragments de forêt et les milieux anthropisés dans toutes les classes de circonférence avec p = 0,001.

La structure des fragments forestiers est caractérisée par les individus de petites circonférences de 1 à 10 cm, qualifiés de classe de régénération (Fig. 16 et 17). Nous remarquons une forte densité d'individus ligneux avec une valeur moyenne de 1000 indiv./ha dans la classe de 5 à 10 cm par rapport aux autres classes. Cette observation démontre que les fragments forestiers perturbés sont en pleine reconstitution dominée par Nesogordonia papaverifera, Funtumia africana, de Trichilia heudelotii et Trichilia prieureana, avec une densité comprise entre 55 et 91 indiv/ha.

L'analyse des milieux anthropisés montre une différence significative entre les jachères et les plantations à p = 0,0037 dans la classe des individus de 1 à 10 cm de circonférence (Fig. 16 et 17). Ces individus de régénération sont presque inexistants dans les plantations. Ils réapparaissent dans les milieux post-culturaux (jachères) avec une valeur moyenne de 200 indiv./ha représentés en grand nombre par Millettia zechiana.

La différence entre les plantations se situe au niveau des classes de circonférence moyennes de 10 à 40 cm, où nous observons une différence significative de 0,0038 entre les plantations très jeunes de 1 à 5 ans et les plantations de 6 à 40 ans (Fig. 18 et 20). À l'intérieur des plantations de 1 à 5 ans, nous dénombrons dans cette classe 200 indiv./ha en moyenne, dominés par Millettia zechiana, Mansonia altissima, Nesogordonia papaverifera, Antiaris toxicara var. africana et Cola gigantea. Ce qui traduit que dans les premières années de plantation, les paysans coupent les individus de petites circonférences au profit des moyens. Dans la classe des individus de plus de 40 cm de circonférences au sein des milieux anthropisés, seules les plantations de plus de 20 ans renferment en moyenne 100 indiv./ha. Les espèces les plus abondantes sont Spondias mombin, Mangifera indica et Ficus exasperata.

Fig. 16 : Classe de circonférence de 1 à 5 cm Fig. 17 : Classe de circonférence de 5 à 10 cm

Fig. 18 : Classe de circonférence de 10 à 20 cm Fig. 19 : Classe de circonférence de 20 à 40 cm

L'observation de toutes les classes de circonférence montre que les plantations de 6 à 10 ans sont les milieux où l'activité agricole se ressent le plus. Nous n'observons presque pas d'individus ligneux dans ces milieux

III-3- RÉGÉNÉRATION LIGNEUSE

L'étude de la régénération avec la fréquence spécifique a fait ressortir 4 catégories d'espèces : les catégories C1, , C3 et C4 (tableau IV).

La catégorie C1 est constituée des espèces non sensibles à la cacaoculture, qui régénèrent aussi bien dans les fragments forestiers que dans les milieux sous influence agricole. Les espèces les plus fréquentes dans cette catégorie sont Antiaris toxicaria var. africana, Albizia adianthifolia, Ficus exasperata et Millettia zechiana.

La catégorie renferme les espèces sensibles à la cacaoculture. Elles sont présentes dans les fragments de forêt, rares dans les plantations et réapparaissent dans les jachères après le passage des paysans. Ces espèces sont pour la plupart Cola gigantea, Sterculia rhinopetala, Trichilia heudelotii, et Trichilia prieuriana.

La troisième catégorie, C3 est caractérisée par les espèces très sensibles et influencées par les paysans. Les plus remarquables sont Nesogordonia papaverifera, Mansonia altissima et Leptonychia pubescens. Présentes dans les fragments forestiers, elles sont absentes dans les milieux anthropisés. Selon les paysans, ils empêchent la régénération des espèces d'exploitation forestière telles que Nesogordonia papaverifera et Mansonia altissima, pour échapper à la destruction de leurs plantations par les exploitants forestiers.

Enfin la quatrième catégorie, C4 renferme les espèces des milieux post-culturaux telles que Ficus exasperata, Ficus sur, Morinda lucida et Rauvolfia vomitoria avec une faible fréquence de 22 p.c. Les paysans utilisent le plus souvent ces espèces dans la médecine traditionnelle.

Tableau IV : Fréquences relatives des espèces dans la régénération des 6 milieux,


Espèces Biotopes	Forêts	PL.1-5	PL.6-10	PL.11-20	PL.21-40	Jachères
Albizia adianthifolia	89	55	11	55	33	55
Albizia zygia	55	44	33	22	22	22
Antiaris toxicaria var. africana	89	44	67	55	55	100
Blighia unijugata	67	33	33	22	11	22
Deinbollia pinnata	67	67	33	44	11	22
Ficus exasperata	22	78	78	67	55	33
Mallotus oppositifolius	11	22	22	22	44	100
Millettia zechiana	33	67	33	44	22	78
Blighia sapida	44	33	11	-	-	11
Celtis zenkeri	22	-	-	-	-	22
Cola gigantea	67	11	-	-	-	33
Holarrhena floribunda	22	-	-	-	11	22
Spondias mombin	11	11	-	67	33	67
Sterculia rhinopetala	67	-	-	-	-	11
Trichilia heudelotii	55	11	-	11	33	67
Trichilia prieuriana	55	-	-	-	-	11
Cedrela odorata	22	-	-	-	-	-
Cola reticulata	22	-	-	-	-	-
Diospyros canaliculata	22	-	-	-	-	-
Funtumia africana	33	11	-	-	-	-
Lankesteria brevior	33	11	-	-	-	-
Leptonychia pubescens	67	11	-	-	-	-
Mansonia altissima	67	11	-	-	-	-
Monodora tenuifolia	22	11	-	-	-	-
Nesogordonia papaverifera	100	33	11	-	-	-
Strombosia pustulata	22	-	-	-	-	-
Tetrapleura tetraptera	22	-	-	-	-	-
Ficus sur	-	-	22	11	11	11
Ficus thonningii	-	-	-	-	-	11
Morinda lucida	-	22	-	-	-	22
Pterygota macrocarpa	-	-	-	-	-	11
Rauvolvia vomitoria	-	11	-	-	11	22
Rothmannia longiflora	-	-	-	-	-	11
Spathodea campanulata	-	-	-	-	-	11
Tragia chevalleri	-	-	-	-	-	11

CHAPITRE IV : DISCUSSION

L'étude de la distribution des espèces végétales au sein des fragments forestiers, des jachères et des plantations de cacaoyers a fait ressortir 387 espèces dans notre zone d'étude. Il y a 5 ans, l'OIBT (2004) évaluait la flore de la même zone à 367 espèces, soit une marge de 20 espèces. La présence des espèces caractéristiques des zones forestières : Triplochiton scleroxylon, Mansonia altissima et des zones de savane : Borassus aethiopum et Imperata cylindrica (DEVINEAU, 1984) dans les milieux anthropisés et dans les fragments forestiers, justifie la situation à cheval du Département d'Oumé sur la zone forestière et la zone savanicole. Les fragments forestiers sont dominés par les Rubiaceae, tandis que les plantations et les jachères montrent une flore plus représentée en Euphorbiaceae. Le nombre d'espèces des Euphorbiaceae devient de plus en plus important dans les plantations au fur et à mesure que celles-ci vieillissent. Cette observation est conforme à celle de VROH BI (2008) dans les plantations de bananier dans la région de Dabou. Ces résultats montrent que les Euphorbiaceae s'adaptent le plus aux milieux anthropisés.

Dans le Département d'Oumé tout comme à Monogaga dans le Département de SanPédro (ADOU YAO et N'GUESSAN, 2006) et à Lamto (KOULIBALY, 2008), les paysans dans les premières années de plantation, laissent un nombre important d'arbustes de 10 à 40 cm de circonférence après le défrichement de la forêt. C'est ce qui traduit le nombre élevé d'espèces dans les plantations très jeunes de 1an. Les paysans appliquent cette technique culturale pour protéger les jeunes plants de cacaoyers contre les rayonnements solaires.

Dans les plantations de Lamto, le nombre des espèces augmente de la première à la troisième année de plantation puis se stabilise (KOULIBALY, 2008). Cette observation est contraire aux plantations d'Oumé où le nombre d'espèces diminue de la première à la cinquième année. Cela est dû à un entretien régulier des plantations et à une intensification des pieds de cacaoyers.

L'influence de la cacaoculture se ressent le plus dans les plantations âgées où nous constatons une diminution du nombre d'espèces ligneuses à partir de la sixième année de plantation. Cela s'explique par la coupe de certaines espèces naturelles dans le but de réduire la compétition nutritionnelle avec les cacaoyers et augmenter la production de leurs plantations. Les paysans ne protègent que les espèces naturelles à vertus alimentaires : Spondias mombin, Ricinodendron heudelotii, Irvingia gabonensis et médicinales : Alstonia boonei, Rauvolfia vomitoria, Morinda lucida. Cette pratique agricole est totalement opposée à celle employée au Cameroun où les paysans maintiennent les cacaoyers sous des ligneux dans

toutes les classes d'âge de plantation (SONWA et al., 2000). L'absence des activités humaines dans les jachères favorise l'augmentation progressive du nombre des espèces.

Les types biologiques nous ont permis de constater la dégradation des fragments de forêt et des milieux anthropisés à travers la dominance des microphanérophytes arbustifs dans les fragments de forêt, les jachères et les plantations. KOKOU et CABALLE (2002 ; 2005) ont fait la même observation dans les îlots forestiers et les jachères au Togo. L'étude de la structure verticale et horizontale de la végétation de ces milieux confirme leur perturbation. La strate des fragments de forêt est constituée principalement d'arbrisseaux et d'arbustes de petites circonférences, ce qui entraîne une basse strate fermée. Cette observation est contraire aux forêts tropicales avec une basse strate dégagée (BAMBA, 2004). Les forts recouvrements de la basse strate des fragments forestiers du Département d'Oumé traduisent une dégradation sous l'influence des actions humaines. La même configuration structurale s'observe dans les jachères dominées par les arbustes et les petits arbres, traduisant un peuplement perturbé en pleine reconstitution. Contrairement aux fragments forestiers et aux jachères, et à l'exception des plantations de 1 à 5 ans, l'activité agricole fait son effet sur la flore naturelle dans les plantations jeunes et âgées de 6 à 40 ans. Il n'existe pratiquement pas d'espèces ligneuses dans ces plantations.

L'analyse de correspondance et la classification ascendante nous ont permis de constater une différence entre la composition floristique des fragments forestiers et les milieux sous influence agricole qui sont les plantations âgées et les jachères. La composition floristique des plantations de 1 à 5 ans est presque similaire aux fragments de forêt ; cela indique une conservation de l'écosystème forestier dans les premières années de plantation. Par contre cet écosystème est plus dégradé dans les plantations de 6 à 20 ans.

Au niveau de la régénération, nous observons la perturbation des fragments forestiers où la recolonisation est très importante, dominée par les espèces de lumière telles que Nesogordonia papaverifera, Antiaris toxicaria var. africana, Albizia adianthifolia. Les jachères ayant pendant longtemps subies les effets de l'agriculture, favorisent l'implantation des espèces de forêt secondaire du type semi-décidue dont les plus abondantes sont Antiaris toxicaria var. africana et Mallotus oppositifolius avec une fréquence de 100 p.c. La régénération amorcée dans les plantations de 1 à 5 ans est très tôt freinée dans les plantations de 6 à 40 ans sous l'influence des actions mécaniques des paysans (coupes, déracinements) plus accentuées et de la fermeture de la canopée des cacaoyers.

Pour échapper à la destruction de leurs plantations par les exploitants forestiers, les paysans empêchent la régénération des espèces d'exploitations forestières, telles que

Nesogordonia papaverifera et Mansonia altissima. Cela entraîne l'absence de ces espèces dans les milieux post-culturaux.

CONCLUSION

La présente étude a permis de suivre et de comprendre l'impact de la création des plantations de cacaoyers sur la flore et la végétation dans le Département d'Oumé. Les techniques culturales basées sur le défrichement, l'abattage et les cultures sur brûlis, causent principalement la dégradation de la biodiversité de l'écosystème forestier original. Dans les plantations très jeunes de 1 à 5 ans, la diversité floristique reste relativement élevée. Lorsque les plantations vieillissent, cette diversité baisse de façon drastique suite à des destructions massives des ressources naturelles. Nos résultats confirment donc bien que lorsque l'agriculture se pratique de façon traditionnelle, c'est-à-dire à la machette et à la daba, elle maintient de la diversité dans les premières années de plantation.

Les pratiques culturales utilisées dans les plantations n'offrent pas de place pour la conservation de la biodiversité dans les milieux post-culturaux. Les différentes méthodes utilisées pour l'inventaire ont montré que, le cortège floristique des jachères s'est appauvri par rapport aux milieux naturels. Nous avons recensé dans les jachères 143 espèces contre 224 dans les fragments forestiers soit une perte de 91 espèces.

Les activités agricoles transforment la composition floristique des fragments forestiers ; la preuve en est que les Rubiaceae et les Apocynaceae dominantes dans ces fragments forestiers se font rares dans les milieux anthropisés. Ce sont plutôt les Euphorbiaceae et les Poaceae qui caractérisent les plantations et les jachères. Les arbres étant en grande majorité détruits par les paysans, la végétation est marquée par la prédominance de la strate arbustive. L'importance des espèces de brousse secondaire dans les jachères : Ficus exasperata, Albizia zygia, Albizia adianthifolia, traduit une forme de reconstitution progressive vers des forêts secondaires

L'influence humaine s'observe également dans les fragments de forêt par la présence de Ricinodendron heudelotii, de Spondias mombin et de Elaeis guineensis qui sont toutes des espèces de milieu secondaire. L'étude de la dynamique structurale des peuplements confirme bien la perturbation de ces îlots forestiers avec une structure plus représentée en strate arbustive. Ceci correspond à une basse strate fermée, donc en pleine reconstitution selon HIEN (1998).

Les coupes et les déracinements réguliers effectués dans les plantations agissent négativement sur la flore de cette localité. Ainsi pour répondre à toutes nos questions de recherche, il serait intéressant d'étendre cette étude dans toute la région d'Oumé. D'autres études plus approfondies pourraient porter sur une évaluation du potentiel germinatif des

semences dans le sol des plantations ; puis également sur une comparaison quantitative des semences du sol et des rejets de souches et de racines dans la recolonisation des jachères.

Fort de toutes les conséquences de la perturbation du milieu naturel sous l'influence de la cacaoculture, il serait toutefois souhaitable de formuler quelques recommandations allant dans le sens de la protection et de la conservation de la biodiversité de ce Département. Sur ce, nous nous adressons :

> à la SODEFOR et au Ministère de l'environnement d'encourager les paysans à préserver les espèces d'exploitations forestiers dans les plantations, et de se procurer des quelques îlots forestiers ruraux encore existants pour une gestion plus durable.

> Aux législateurs de voter des lois strictes interdisant aux exploitants forestiers l'abatage des ligneux dans les plantations.

> Aux institutions de recherche d'approfondir des études associant la conservation de la biodiversité et de la sécurisation des ressources naturelles, à l'augmentation de la production des plantations des paysans.

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SHNELL R., 1971. La phytogéographie des pays tropicaux : les milieux, les groupements végétaux. Gauthier-Villars, Paris 447 p.

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SONWA D.J., WEISE S. F. , NDOYE O. & JANSSENS M. J.J., 2003. Dacryodes edulis, a neglected non-timber forest species for the agroforestry system of West and Central Africa. Forest trees and livelihoods, 12: pp. 41-45.

SONWA D.J., WEISE S.F., TCHATAT M., NKONGMENECK A.B., ADESINA A., NDOYE O. & GOCKOWSKI J., 2000. Les agroforêts cacao : espace intégrant développement de la cacaoculture, gestion et conservation des ressources forestières au Sud-Cameroun. Paper presented at the second Pan African Symposium on The sustainable use of Natural resources in Africa. Ouagadougou, Burkina Faso, pp. 24-27 . July 2000.

SONWA D.J., WEISE S. F., TCHATAT M., NKONGMENECK B.A., ADESINA A.A., NDOYE O. & GOCKWOSKI J., 2001. The role of cocoa agroforests in rural and community forestry in southern Cameroon. RDFN Paper. 25 : pp. 1 - 10.

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ANNEXE 1 : Flore des fragments forestiers et des milieux anthropisés dans la région d'Oumé.

N° Espèces	Familles	Types biomorph.	Forêts	Jachères.	Plant.
1 Abrus precatorius L.	Fabaceae	Lmp	-	-	x
2 Acacia pennata (L.) Willd.	Mimosaceae	LmP	x	x	x
3 Acalypha ciliata Forsk.	Euphorbiaceae	np	x	x	x
4 Adansonia digitata L.	Bombacaceae	MP	-	-	x
5 Adenia lobata (Jacq.) Engl.	Passifloraceae	mp	x	x	x
6 Adiantum vogelii Mett. ex Keys.	Adiantaceae	Th	-	-	x
7 Aframomum sceptrum (Oliv. & Hanb.) K.Schum.	Zingiberaceae	np	x	-	-
8 Afzelia bella Harms	Caesalpiniaceae	mP	x	-	-
9 Agelaea trifolia (Lam) Gilg	Connaraceae	Lmp	x	-	-
10 Ageratum conyzoides L.	Asteraceae	Th	-	-	x
11 Aidia genipiflora (DC.) Dandy	Rubiaceae	mp	x	-	x
12 Alafia whytei Stapf	Apocynaceae	Lmp	x	-	x
13 Albizia adianthifolia (Schum.) W. F. Wight	Mimosaceae	mP	x	x	x
14 Albizia ferruginea (Guil. & Perr.) Benth.	Mimosaceae	mP	x	x	x
15 Albizia zygia (DC.)J. F. Macbr.	Mimosaceae	mP	x	x	x
16 Alchornea cordifolia (Schum. & Thonn.) Mull. Arg.	Euphorbiaceae	mp	x	x	x
17 Allophylus africanus P. Beauv.	Sapindaceae	mp	x	x	x
18 Alstonia boonei De Wild.	Apocynaceae	MP	x	x	-
19 Amorphophallus johnsonii N.E. Br.	Araceae	Gt	x	-	-
20 Amphimas pterocarpoides Harms	Fabaceae	mP	x	x	x
21 Ananas comosus Mill	Bromeliaceae	Gr	-	x	x
22 Anchomanes difformis (Bl.) Engl. var. difformis	Araceae	Gt	x	-	x
23 Aneilema beniniensis (P. Beauv.) Kunth	Commelinaceae	Ch	x	x	x
24 Annickia polycarpa Setten & Maas	Annonaceae	mp	x	-	x
25 Antiaris toxicaria var africana (Engl) C. C; Berg	Moraceae	mP	x	x	x
26 Antrocaryon micraster (Pierre) A.Chev. & Guill.	Anacardiaceae	MP	x	-	-
27 Aphania senegalensis (Poir.) Radlk.	Sapindaceae	mp	x	-	-
28 Aristolochia abyssinica L.	Aristolochiaceae	Lmp	x	-	-
29 Aristolochia macrophylla L.	Aristolochiaceae	Lmp	x	-	-
30 Artabotrys insignis Engl. & Diels	Annonaceae	Lmp	x	-	-
31 Artabotrys jollyanus Pierre ex Engl. E Diels	Annonaceae	Lmp	-	-	x
32 Asystasia gangetica (L.) T. Anderson	Acanthaceae	np	-	x	x
33 Atroxima liberica Stapf.	Polygalaceae	np	-	-	x
34 Azadirachta indica A.Juss.	Meliaceae	mP	-	x	-
35 Baissea multiflora A. DC.	Apocynaceae	LmP	-	-	x
36 Baissea zygodioides (K.Schum.) Stapf.	Apocynaceae	Lmp	-	x	-
37 Baphia bancoensis Aubrév.	Fabaceae	mp	x	x	x
38 Baphia nitida Lodd.	Fabaceae	mp	x	x	x
39 Belonophora hypoglauca (Hiern) A.Chev.	Rubiaceae	mp	x	-	-
40 Bequaertia mucronata (Exell) R. Wilczek	Hippocrateaceae	Lmp	x	-	-
41 Bersama abyssinica Fresen	Melianthaceae	mp	x	-	-
42 Bidens pilosa L.	Asteraceae	Th	-	-	x
43 Blighia sapida Koenig	Sapindaceae	mP	x	x	x
44 Blighia unijugata Bak.	Sapindaceae	mP	x	x	x
45 Blighia welwitschii (Hiern) Radlk.	Sapindaceae	mP	x	-	x
46 Boerhavia diffusa L.	Nyctaginaceae	np	-	-	x
47 Bombax buonopozense P. Beauv.	Bombacaceae	MP	x	x	x
48 Borassus aethiopum Mart.	Arecaceae	MP	x	-	-

Légende : X : présence dans le milieu correspondant - : absence dans le milieu correspondant

N°	Espèces	Familles
49	Brachiaria deflexa (Schum.) Robyns	Poaceae
50	Brachiaria lata (Schum.) C.E. Hubb.	Poaceae
51	Bridelia grandis Hutch.	Euphorbiaceae
52	Bridelia micrantha (Hochst.) Baill	Euphorbiaceae
53	Bryophyllum pinnatum (Lam.) Oken	Crassulaceae
54	Buchholzia coriacea Engl.	Capparidaceae
55	Bussea occidentalis Hutch.	Caesalpiniaceae
56	Caloncoba echinata (Oliv.) Gilg	Flacourtiaceae
57	Caloncoba gilgiana (Sprague) Gilg.	Flacourtiaceae
58	Campylospermum flavum Sch. & Thonn. ex Stapf	Ochnaceae
59	Canthium venezyssima Gaertn.	Rubiaceae
60	Capsicum annuum L.	Solanaceae
61	Capsicum frutescensL.	Solanaceae
62	Carica papaya L.	Caricaceae
63	Carpolobia lutea G.Don	Polygalaceae
64	Cassia siamea (Lam) H.S. Irwin &B arneby	Caesalpiniaceae
65	Cassia hirsuta L.	Caesalpiniaceae
66	Cedrela odorata L.	Meliaceae
67	Ceiba pentandra (L.) Gaertn.	Bombacaceae
68	Celosia trigyna L.	Amaranthaceae
69	Celtis adolfi-friderici Engl.	Ulmaceae
70	Celtis mildbraedii Engl.	Ulmaceae
71	Celtis philippensis Blanco	Ulmaceae
72	Celtis zenkeri Engl.	Ulmaceae
73	Centrosema pubescens Benth	Fabaceae
74	Chaetachme aristata E. Mey. Ex Planch	Ulmaceae
75	Chassalia kolly Benth	Rubiaceae
76	Chromolaena odorata (L.) King & H. Rob.	Asteraceae
77	Chrysophyllum giganteum A. Chev.	Sapotaceae
78	Chrysophyllum perpulchrum Hutch. & Dalz.	Sapotaceae
79	Chrysophyllum pruniforme Pierre & Engl.	Sapotaceae
80	Chrysophyllum welwitschii Engl	Sapotaceae
81	Chytranthus carneus Radlk.	Sapotaceae
82	Chytranthus talbotii (Baker) Keay	Sapotaceae
83	Cissus aralioides (Welw. Ex Bak.) Planch.	Vitaceae
84	Cissus producta Afzel.	Vitaceae
85	Cissus quadrangularis L	Vitaceae
86	Cissus rotundifolia (Forssk.) Vahl	Vitaceae
87	Citrus reticulata L.	Rutaceae
88	Citrus sinensis (L.) Osb.	Rutaceae
89	Clerodendrum buchholzii Henriq.	Verbenaceae
90	Clerodendrum volubile P. Beauv	Verbenaceae
91	Cnestis ferruginea Vahl ex DC.	Connaraceae
92	Coccinea batteri (Hook. F.) Keay	Curcubitaceae
93	Coffea ebracteolata (Hiern) brenan	Rubiaceae
94	Coffea liberica Bull. ex Hiern	Rubiaceae
95	Cola caricaefolia (G. Don) K. Schum.	Sterculiaceae
96	Cola gigantea A. Chev.	Sterculiaceae
97	Cola heterophylla (P.Beauv.) Scott & Endl. A.	Sterculiaceae
98	Cola nitida (Vent.) Schott & Endl.	Sterculiaceae
99	Cola reticulata K.Schum.	Sterculiaceae

N° Espèces	Familles	Types biomorph.	Forêts	Jachères.	Plant.
100 Colocasia esculenta Schott.	Araceae	np	-	x	x
101 Combretum glutinosum Perr. ex DC	Combretaceae	Lmp	-	x	-
102 Combretum grandiflorum G. Don	Combretaceae	Lmp	x	-	-
103 Combretum paniculatum Vent.	Combretaceae	Lmp	-	x	x
104 Combretum racemosum P. Beauv.	Combretaceae	Lmp	-	x	x
105 Commelina benghalensis L.	Commelinaceae	Ch	-	x	x
106 Conyza floribunda Kunth	Asteraceae	Th	-	-	x
107 Conyza sumatrensis (Retz.)E.Walker	Asteraceae	Th	-	-	x
108 Cordia platythyrsa Bak.	Boraginaceae	MP	x	-	x
109 Cordia vignei Hutch. & Dalziel	Boraginaceae	mp	-	-	-
110 Corynanthe pachyceras K. Schum.	Rubiaceae	mP	x	-	x
111 Costus afer Ker-Gawl.	Zingiberaceae	np	x	-	x
112 Crescentia cujete L.	Bignoniaceae	np	-	-	x
113 Crossostemma laurifolium Planch. ex benth.	Passifloraceae	Lmp	-	-	x
114 Croton hirtus L'Hérit.	Euphorbiaceae	Th	-	x	x
115 Culcasia barombensis Welw. ex Schott.	Araceae	LmP	x	-	-
116 Cyathula prostrata (L.) Blum.	Amaranthaceae	Th	-	x	x
117 Cyperus rotundus L.	Cyperaceae	Gr	-	-	x
118 Dalbergia oblongifolia G. Don	Fabaceae	Lmp	x	-	x
119 Dalbergia saxatilis Hook. f.	Fabaceae	Lmp	-	-	x
120 Dalbergiella welwitschii (Baker)Baker f.	Fabaceae	mp	x	x	x
121 Daniellia oliveri (Rolfe) Hutch. & Dalziel	Caesalpiniaceae	mP	-	-	x
122 Daniellia thurifera Benn.	Caesalpiniaceae	mP	x	-	-
123 Deinbollia grandifolia Hook. f.	Sapindaceae	mp	-	-	x
124 Deinbollia pinnata (Poir.) Schum. & Thonn	Sapindaceae	np	x	x	x
125 Desmodium adscendens (SW.) DC.	Fabaceae	Ch	x	x	x
126 Desmodium gangeticum (L.) DC.	Fabaceae	np	-	-	x
127 Desmodium triflorum (L.) DC.	Fabaceae	Ch	-	-	-
128 Desmodium velutinum (Willd) DC.	Fabaceae	np	-	-	x
129 Desplatsia chrysochlamys (Mildbr. & Burr.) Mildbr.	Tiliaceae	mp	-	-	x
130 Desplatsia dewevrei (De Wild.& Th.Durand) Burret	Tiliaceae	mp	x	-	-
131 Detarium senegalense J. F. Gmel.	Caesalpiniaceae	mP	-	-	x
132 Dialium dinklagei Harms	Caesalpiniaceae	mp	x	-	-
133 Dichapetalum madagascariense Poir.	Dichapetalaceae	Lmp	x	-	-
134 Dichapetalum toxicarium (G.Don) Baill.	Dichapetalaceae	Lmp	x	-	-
135 Dictyandra arborescens Hook. f.	Rubiaceae	mp	x	-	x
136 Digitaria horizontalis Willd.	Poaceae	Th	-	-	x
137 Dioclea reflexa Hook. f.	Fabaceae	mP	-	-	x
138 Diodia rubricosa Hiern.	Rubiaceae	Ch	-	-	x
139 Dioscorea alata L.	Dioscoreaceae	Gt	-	-	x
140 Dioscorea bulbifera (A.Chev.) Summerh.	Dioscoreaceae	Gt	-	-	x
141 Dioscorea cayenensis Lam.	Dioscoreaceae	Gt	-	-	x
142 Dioscorea minutiflora Engl.	Dioscoreaceae	Gt	x	x	x
143 Diospyros canaliculata De Wild.	Ebenaceae	mp	x	-	-
144 Diospyros ferrea (Willd.) Bakh.	Ebenaceae	mp	x	-	-
145 Diospyros monbuttensis Gurke	Ebenaceae	mp	x	-	x
146 Diospyros soubreana F. White	Ebenaceae	mp	x	-	-
147 Diospyros vignei F. White	Ebenaceae	mP	x	-	x
148 Diospyros viridicans Hiern	Ebenaceae	mP	x	-	x
149 Discoglypremna caloneura (Pax) Prain	Euphorbiaceae	mP	x	-	-
150 Distemonanthus benthamianus Baill.	Caesalpiniaceae	MP	x	-	-
151 Dorstenia kameruniana Engl.	Moraceae	np	x	-	-

N° Espèces		Familles	Types biomorph.		Forêts	Jachères	Plant.
307 Ritchiea capparoides (Andr.) Britten		Capparidaceae	Lmp		-	-	x
308 Rothmannia longiflora Salisb.		Rubiaceae	mp		x	x	x
309 Rottboellia exaltata L.f.		Poaceae	Th		-	x	x
310 Rourea coccinea (Schum.) Benth.		Connaraceae	Lmp		x	x	x
311 Ruthalicia longipes (Hook. F.) Jeffrey		Curcubitaceae	Lmp		-	x	x
312 Rytigynia canthioides (Benth.) Robyns		Rubiaceae	mp		x	-	-
313 Salacia baumannii Loes		Hippocrateaceae	Lmp		-	-	v
314 Salacia erecta (G.Don) Walp.		Hippocrateaceae	Lmp		-	-	x
315 Salacia nitida (Benth.) N.E.Br.		Hippocrateaceae	Lmp		x	-	x
316 Samanea dinklagei (Harms) Keay.		Mimosaceae	mP		x	-	-
317 Sansevieria liberica Ger. & Labr		Agavaceae	Gr		-	-	-
318 Sarcophrynium brachystachyum (Benth.) K. Schum.		Marantaceae	np		x	-	-
319 Scottellia klaineana Pierre		Flacourtiaceae	MP		x	x	-
320 Secamone afzelii (Schultes) K. Schum.		Asclepiadaceae	Lmp		x	x	x
321 Setaria barbata (Lam.) Kunth		Poaceae	Th		-	-	x
322 Sida acuta Brurm. f.		Malvaceae	np		-	x	x
323 Smeathmannia pubescens Soland. ex R. Br.		Passifloraceae	mp		x	-	x
324 Solanum americanum Mill.		Solanaceae	hnp		-	-	x
325 Solanum anomalum Thonn.		Solanaceae	mp		-	-	x
326 Solanum erianthum D. Don		Solanaceae	mp		x	x	X
327 Solanum rugosum Dunal		Solanaceae	mp		-	-	x
328 Solanum torvum Sw.		Solanaceae	np		-	-	x
329 Sorghum arundinaceum (Desv.) Stapf		Poaceae	Th		-	x	x
330 Spathodea campanulata P. Beauv.		Bignoniaceae	mp		x	x	x
331 Sphenocentrum jollyanum Pierre		Menispermaceae	np		x	x	x
332 Spigelia anthelmia L.		Loganiaceae	Th		-	-	x
333 Spondianthus preussii Engl.		Euphorbiaceae	mP		-	-	x
334 Spondias mombin L.		Anacardiaceae	mp		x	x	x
335 Sporobolus pyramidalis P. Beauv.		Poaceae	Th		-	-	x
336 Sterculia rhinopetala K. Schum.		Sterculiaceae	MP		x	x	x
337 Sterculia tragacantha Lindl.		Sterculiaceae	mP		x	x	x
338 Streblus usambasrensis (Engl.) Berg		Moraceae	np		x	-	-
339 Streptogyna crinita P.Beauv.		Poaceae	Gr		x	-	x
340 Strombosia pustulata Olv. (Léonard) villers		Olacaceae	mp		x	-	-
341 Strophanthus gratus (Hook.) Franch.		Apocynaceae	Lmp		-	-	x
342 Strophanthus hispidus DC.		Apocynaceae	Lmp		-	-	x
343 Strychnos afzelii Gilg		Loganiaceae	LMP		x	-	x
344 Strychnos johnsonii Huntch. & M. B. Moss		Loganiaceae	LmP		x	-	-
345 Synedrella nodiflora Gaertn.		Asteraceae	Th		-	x	x
346 Tabernaemontana crassa Benth.		Apocynaceae	mp		-	x	-
347 Talinum triangulare (Jacq.) Willd.		Portulacaceae	Th		-	x	x
348 Tamarindus indica L.		Caesalpiniaceae	mp		-	-	x
349 Teclea verdoorniana Exell & Mendoçon		Rutaceae	mp		x	-	-
350 Tectona grandis L. F.		Verbenaceae	mp		-	-	x
351 Terminalia ivorensis A. Chev.		Combretaceae	MP		-	-	-
352 Terminalia superba Engl. & Diels		Combretaceae	MP		x	x	x
353 Tetracera alnifolia Willd.		Dilleniaceae	LmP		-	x	-
354 Tetrapleura tetraptera (Schum. & Thonn.) Taub		Mimosaceae	mP		x	x	-
355 Thalia welwitschii (L.) Ridl.		Marantaceae	np		-	-	x
356 Thaumatococcus danielii (Bennet) Benth.		Marantaceae	Gr		x	-	x
357 Theobroma cacao L.		Sterculiaceae	mp		-	x	x
N° Espèces	Familles			Types biomorph.	Forêts	Jachères	Plant.
358 Thonningia sanguinea Vahl	Balanophoraceae			Gb	-	x	-
359 Tiliacora dinklagei Engl.	Menispermaceae			LMP	x	-	x
360 Tragia chevalleri Beille	Euphorbiaceae			Lnp	-	-	x
361 Treculia africana Decne	Moraceae			mP	x	-	x
362 Trema orientalis (L.) Blume	Ulmaceae			mp	x	x	x
363 Trichilia heudelotii Planch. ex. Oliv.	Meliaceae			mp	x	x	x
364 Trichilia martineaui Aubrév. & Pellegr.	Meliaceae			MP	x	-	-
365 Trichilia prieureana A. Juss.	Meliaceae			mp	x	x	x
366 Triclisia dictyophylla Diels	Menispermaceae			LmP	-	-	x
367 Triclisia subcordata Oliv.	Menispermaceae			mp	-	-	x
368 Tridax procumbens L.	Asteraceae			Ch	-	-	x
369 Trilepisium madagascariensis DC.	Moraceae			mP	x	-	x
370 Triplochiton scleroxylon n K. Schum.	Sterculiaceae			MP	x	-	x
371 Turraea heterophylla J. Sm.	Meliaceae			np	x	x	x
372 Urera occidentalis Letouzey	Urticaceae			Lnp	x	-	-
373 Uvaria afzelii Sc.Elliot	Annonaceae			Lmp	x	-	-
374 Uvariodendron occidentale Le Thomas	Annonaceae			mp	x	-	-
375 Uvariopsis congensis Robyns & Ghesq.	Urticaceae			mp	x	-	-
376 Ventilago africana Exell	Rhamnaceae			LMP	x	-	x
377 Vitex fosteri C. H. Wright	Verbenaceae			mp	-	-	x
378 Vitex grandifolia Gurke	Verbenaceae			mp	-	-	x
379 Vitex rivularis Gurke	Verbenaceae			mp	x	-	-
380 Wissadula amplissima (L.) R. E. Fries	Malvaceae			np	x	-	-
381 Xylopia aethiopica (Dun.) A. Rich.	Annonaceae			mP	-	-	-
382 Xylopia parvifolia (A. Rich.) Benth.	Urticaceae			mp	x	-	-
383 Xylopia villosa Chipp	Annonaceae			mP	x	-	x
384 Zanthoxylum gilletii (De Wild.) P.G. Waterman	Rutaceae			mP	x	-	-
385 Zanthoxylum parvifolium A. Chev. ex Keay	Rutaceae			mp	x	-	-
386 Zanthoxylum rubescens Hook.f.	Rutaceae			mp	x	-	-
387 Zanthoxylum zantoxyloides (Lam.) Zep. & Timber	Rutaceae			mP	-	-	x

ANNEXE 2 : INDEX ALPHABÉTIQUE DES TAXONS CITÉS

Taxons

Abrus precatorius L. (Fabaceae)

Acacia pennata (L.) Willd. (Mimosaceae)

Acalypha ciliata Forsk. (Euphobiaceae)

Adansonia digitata L. (Bombacaceae)

Adenia lobata (Jacq.) Engl. (Passifloraceae)

Adiantum vogelii Mett. ex Keys. (Adiantaceae)

Aframomum sceptrum (Oliv. & Hanb.) K.Schum (Zingiberaceae)

Afzelia bella Harms (Caesalpiniaceae)

Agelaea trifolia (Lam) Gilg (Connaraceae)

Ageratum conizoides L. (Asteraceae)

Aidia genipiflora (DC.) Dandy (Rubiaceae)

Alafia whytei Stapf (Apocynaceae)

Albizia adianthifolia (Schum.) W. F. Wight (Mimosaceae)

Albizia ferruginea (Guil. & Perr.) Benth. (Mimosaceae)

Albizia zygia (DC.)J. F. Macbr. (Mimosaceae)

Alchornea cordifolia (Schum. & Thonn.) Mull. Arg. (Euphorbiaceae)

Allophylus africanus P. Beauv. (Sapindaceae)

Alstonia boonei De Wild. (Apocynaceae)

Amorphophallus johnsonii N.E. Br. (Araceae)

Amphimas pterocarpoides Harms (Fabaceae)

Ananas comosus Mill (Bromeliaceae)

Anchomanes difformis (Bl.) Engl. (Asteraceae)

Anchomanes welwitschii Rendle (Araceae)

Aneilema beniniensis (P. Beauv.) Kunth (Commelinaceae)

Annickia polycarpa Setten & Maas (Annonaceae)

Antiaris toxicaria var africana (Engl) C. C; Berg (Moraceae)

Antrocaryon micraster (Pierre) A.Chev. & Guill. (Anacardiaceae)

Aphania senegalensis (Poir.) Radlk. (Sapindaceae)

Aristolochia abyssinica L. (Aristolochiaceae)

Aristolochia macrophylla L. (Aristolochiaceae)

Artabotrys insignis Engl. & Diels (Annonaceae)

Artabotrys jollyanus Pierre ex Engl. E Diels (Annonaceae)

Asystasia gangetica (L.) T. Anderson (Acanthaceae)

Atroxima liberica Stapf. (Polygaceae)

Azadirachta indica A.Juss. (Meliaceae)

Baissea multiflora A. DC. (Apocynaceae)

Baissea zygodioides (K.Schum.) Stapf. (Apocynaceae)

Baphia bancoensis Aubrév. (Fabaceae)

Baphia nitida Lodd. (Fabaceae)

Belonophora hypoglauca (Hiern) A.Chev. (Rubiaceae)

Bequaertia mucronata (Exell) R. Wilczek (Hippocrateaceae)

Bersama abyssinica Fresen (Melianthaceae)

Bidens pilosa L. (Asteraceae)

Blighia sapida Koenig (Sapindaceae)

Blighia unijugata Bak. (Sapindaceae)

Blighia welwitschii (Hiern) Radlk. (Sapindaceae)

Boerhavia diffusa L. (Nyctaginaceae)

Bombax buonopozense P. Beauv. (Bombacaceae)

Borassus aethiopum Mart. (Araceae)

17,

23,

27,

25,

28,

27,

30, 17, 23, 28,

17,

12,

Pages

37 37 37 37 37 37 37 37 37 37 37 37

32, 37

28, 37 15 , 37 17, 37

29, 37 37 37 37 37 37 37 37

30, 37 37 37 37 37 37 37 37 37 37

37
37
37
17, 37
37
37
37
37
28, 37
28, 37
37
37
28, 37
28, 38

Taxons

Brachiaria deflexa (Schum.) Robyns (Poaceae)

Brachiaria lata (Schum.) C.E. Hubb. (Poaceae)

Bridelia grandis Hutch. (Euphorbiaceae)

Bridelia micrantha (Hochst.) Baill (Euphorbiaceae)

Bryophyllum pinnatum (Lam.) Oken (Crassulaceae)

Buchholzia coriacea Engl. (Capparidaceae)

Bussea occidentalis Hutch. (Caesalpiniaceae)

Caloncoba echinata (Oliv.) Gilg (Flacourtiaceae)

Caloncoba gilgiana (Sprague) Gilg. (Flacourtiaceae)

Campylospermum flavum Sch. & Thonn. ex Stapf (Ochnaceae)

Canthium venezyssima Gaertn. (Rubiaceae)

Capsicum annuum L. (Solanaceae)

Capsicum frutescens L. (Solanaceae)

Carica papaya L. (Caricaceae)

Carpolobia lutea G.Don (Polygalaceae)

Cassia hirsuta L. (Caesalpiniaceae)

Cassia siamea (Lam) H.S. Irwin &B arneby (Caeslpiniaceae)

Cedrela odorata L. (Meliaceae)

Ceiba pentandra (L.) Gaertn. (Bombacaceae)

Celosia trigyna L. (Amaranthaceae)

Celtis adolfi-friderici Engl. (Ulmaceae)

Celtis mildbraedii Engl. (Ulmaceae)

Celtis philippensis Blanco (Ulmaceae)

Celtis zenkeri Engl. (Ulmaceae)

Centrosema pubescens Benth (Fabaceae)

Chaetachme aristata E. Mey. ex Planch (Ulmaceae)

Chassalia kolly Benth (Rubiaceae)

Chromolaena odorata (L.)King & H. Rob. (Asteraceae)

Chrysophyllum giganteum A. Chev. (Sapotaceae)

Chrysophyllum perpulchrum Hutch. & Dalz. (Sapotaceae)

Chrysophyllum pruniforme Pierre & Engl. (Sapotaceae)

Chrysophyllum welwitschii Engl.(Sapotaceae)

Chytranthus carneus Radlk. (Sapindaceae)

Chytranthus talbotii (Baker) Keay (Sapindaceae)

Cissus aralioides Welw. ex Bak.) Planch. (Vitaceae)

Cissus producta Afzel. (Vitaceae)

Cissus quadrangularis L. (Vitaceae)

Cissus roduntifolia (Forssk.) Vahl (Vitaceae)

Citrus reticulata L. (Rutaceae)

Citrus sinensis (L.) Osb. (Rutaceae)

Clerodendrum buchholzii Henriq.(Verbenaceae)

Clerodendrum volubile P. Beauv (Verbenaceae)

Cnestis ferruginea Vahl ex DC. (Connaraceae)

Coccinea barteri (Hook. f.) Keay (Curcubitaceae)

Coffea canephora A. Froehner (Rutaceae)

Coffea ebracteolata (Hiern) brenan (Rubiaceae)

Coffea liberica Bull. ex Hiern (Rubiaceae)

Cola caricaefolia (G. Don) K. Schum. (Sterculiaceae)

Cola gigantea A. Chev. (Sterculiaceae)

Cola heterophylla (P.Beauv.) Scott & Endl. A. (Sterculiaceae)

Cola nitida (Vent.) Schott & Endl. (Sterculiaceae)

Cola reticulata K.Schum. (Sterculiaceae)

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Taxons

Colocasia esculenta Schott. (Araceae)

Combretum glutinosum Perr. ex DC (Combretaceae)

Combretum grandiflorum G. Don (Combretaceae)

Combretum paniculatum Vent. (Combretaceae)

Combretum racemosum P. Beauv. (Combretaceae)

Commelina benghalensis L. (Commelinaceae)

Conyza floribunda Kunth (Asteraceae)

Conyza sumatrensis (Retz.) E.Walker (Asteraceae)

Cordia platythyrsa Bak. (Boraginaceae)

Cordia vignei Hutch. & Dalziel (Boraginaceae)

Corynanthe pachyceras K. Schum. (Rubiaceae)

Costus afer Ker-Gawl. (Zingiberaceae)

Crescentia cujete L. (Bignoniaceae)

Crossostemma laurifolium Planch. ex benth. (Passifloraceae)

Croton hirtus L'Hérit. (Euphorbiaceae)

Culcasia barombensis N. E. Br.( (Araceae)

Cyathula prostrata (L.) Blum. (Amaranthaceae)

Cyperus rotundus L. (Cyperaceae)

Dalbergia oblongifolia G. Don (Fabaceae)

Dalbergia saxatilis Hook. f. (Fabaceae)

Dalbergiella welwitschii (Baker)Baker f. (Fabaceae)

Daniellia oliveri (Rolfe) Hutch. & Dalziel (Caesalpiniaceae)

Daniellia thurifera Benn. (Caesalpiniaceae)

Deinbollia grandifolia Hook. f. (Sapindaceae)

Deinbollia pinnata (Poir.) Schum. & Thonn (Sapindaceae)

Desmodium adscendens (SW.) DC. (Fabaceae)

Desmodium gangeticum (L.) DC. (Fabaceae)

Desmodium triflorum (L.) DC. (Fabaceae)

Desmodium velutinum (Willd) DC. (Fabaceae)

Desplatsia chrysochlamys (Mildbr. & Burr.) Mildbr. (Tiliaceae)

Desplatsia dewevrei (De Wild.& Th.Durand) Burret (Tiliaceae)

Detarium senegalense J. F. Gmel. (Caesalpiniaceae)

Dialium dinklagei Harms (Caesalpiniaceae)

Dichapetalum madagascariense Poir. (Dichapetalaceae)

Dichapetalum toxicarium (G.Don) Baill. (Dichapetalaceae)

Dictyandra arborescens Hook. f. (Rubiaceae)

Digitaria horizontalis Willd. (Poaceae)

Dioclea reflexa Hook. f. (Fabaceae)

Diodia rubricosa Hiern. (Rubiaceae)

Dioscorea alata L. (Dioscoreaceae)

Dioscorea bulbifera (A.Chev.) Summerh. (Dioscoreaceae)

Dioscorea cayenensis Lam. (Dioscoreaceae)

Dioscorea minutiflora Engl. (Dioscoreaceae)

Diospyros canaliculata De Wild. (Ebenaceae)

Diospyros ferrea (Willd.) Bakh. (Ebenaceae)

Diospyros monbuttensis Gurke (Ebenaceae)

Diospyros soubreana F. white (Ebenaceae)

Diospyros vignei F. White (Ebenaceae)

Diospyros viridicans Hiern (Ebenaceae)

Discoglypremna caloneura (Pax) Prain (Euphorbiaceae)

Distemonanthus benthamianus Baill. (Caesalpiniaceae)

Dorstenia kameruniana Engl. (Moraceae)

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Taxons

Dracaena mannii Bak. (Dracaenaceae)

Dracaena ovata Ker-Grawl. (Dracaenaceae)

Drypetes chevalieri Beille (Euphorbiaceae)

Drypetes gilgiana (Pax) pax & Hoffm. (Euphorbiaceae)

Duboscia viridiflora (K. Schum.) Mildbr. (Tiliaceae)

Elaeis guineensis Jacq. (Arecaceae)

Elaeophorbia grandifolia (Haw.) Croizat (Euphorbiaceae)

Emilia sonchifolia (L.) DC. (Asteraceae)

Englerophytum oblanceolatum (S.Moore) (Sapotaceae)

Entandrophragma angolensis (Welw.) C. DC. (Meliaceae)

Entandrophragma candollei Harms (Meliaceae)

Entandrophragma cylindricum (Sprague) Sprague (Meliaceae)

Eragrostis tenella (L.) Roem. & Schult. (Poaceae)

Eribroma oblongum (Mast.) Pierre ex Germain (Sterculiaceae)

Erythrina mildbraedii Harms (Fabaceae)

Erythroxylum mannii Oliv. (Erythroxylaceae)

Euadenia trifoliolata (Schum. & Thonn.) Oliv (Capparidaceae)

Eugenia salacioides Laws. ex Hutch. & Dalz (Myrtaceae)

Euphorbia heterophylla L. (Euphorbiaceae)

Euphorbia hirta L. (Euphorbiaceae)

Ficus bongouanouensis Warb. (Moraceae)

Ficus exasperata Vahl (Moraceae)

Ficus recurvata De Wild. (Moraceae)

Ficus mucuso Ficalho (Moraceae)

Ficus sagittifolia Warb. ex Milbr. Et Burret (Moraceae)

Ficus sur Forssk. (Moraceae)

Ficus thonningii Blume (Moraceae)

Flabellaria paniculata Cav. (Malpighiaceae)

Funtumia africana (Benth.)Stapf (Apocynaceae)

Garcinia afzelii Engl. (Clusiaceae)

Garcinia kola Heckel (Clusiaceae)

Geophila obvallata (Schum.)F.Didr. (Rubiaceae)

Gloriosa superba L. (Liliaceae)

Glyphaea brevis (Spring.) Monachino (Tiliaceae)

Gmelina arborea Roxb (Verbenaceae)

Grewia carpinifolia Juss. (Tiliaceae)

Griffonia simplicifolia (Vahl ex DC.) Baill. (Caesalpiniaceae)

Guarea cedrata (A. Chev.) Pellegr. (Meliaceae)

Guibourtia ehie (A. Chev.) Léonard (Caesalpiniaceae)

Harrisonia abyssinica Oliv. (Simaroubaceae)

Hippocratea myriantha Oliv. (Hippocrateaceae)

Holarrhena floribunda (G. Don) Dur & Schinz (Apocynaceae)

Holoptelea grandis (Hutch.) Mildbr. (Ulmaceae)

Homalium molle Stapf (Flacourtiaceae)

Hoslundia opposita Vahl (Lamiaceae)

Hugonia afzelii R. Br. ex Planchon (Linaceae)

Hugonia planchonii Hook.f. (Linaceae)

Hunteria eburnea Pichon (Apocynaceae)

Hypselodelphys violacea (Ridl.) Milne-Redh (Marantaceae)

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Taxons

Idertia morsonii (Hutch. & Dalziel) Farron (Ochnaceae)

Imperata cylindrica (L.) Raeusch. (Poaceae)

Iodes liberica Stapf. (Icacinaceae)

Ipomoea batatas (L.) Lam (Convolvulaceae)

Ipomoea mauritiana Jacq. (Convolvulaceae)

Irvingia gabonensis (O'Rorke) Baill. (Irvingiaceae)

Isolona campanulata Engl. & Diels (Annonaceae)

Keetia venosa (Oliv.) Bridson (Rubiaceae)

Khaya ivorensis A. Chev. (Meliaceae)

Kigelia africana (Lam.) Benth. (Bignoniaceae)

Klainedoxa gabonensis Pierre ex Engl. (Irvingiaceae)

Landolphia hirsuta (Hua) Pichon (Apocynaceae)

Landolphia incerta (Schumann) Persoon (Apocynaceae)

Landolphia mannii (Stapf.) Pierre (Apocynaceae)

Lankesteria brevior C. B. Cl. (Acanthaceae)

Lannea nigritana (Sc. Elliot) Keay (Anacardiaceae)

Lannea welwitschii (Hiern) Engl. (Anacardiaceae)

Lantana camara L. (Verbenaceae)

Laportea aestuans (L.)Chew (Urticaceae)

Lasiodiscus fasciculiflorus Engl. (Rhamnaceae)

Lecaniodiscus cupanioides Planch (Sapindaceae)

Leptaspis cochleata Thwaites (Poaceae)

Leptoderris brachyptera (Benth.) Dunn (Fabaceae)

Leptonychia pubescens Keay (Sterculiaceae)

Lindackeria dentata (Oliv.) Gilg (Flacourtiaceae)

Lomariopsis guineensis (Underw.)Alston (Lomariopsidaceae)

Majidea fosteri (Sprague) Radlk. (Sapindaceae)

Mallotus oppositifolius (Geisel.) Mull. Arg. (Euphorbiaceae)

Mangifera indica L. (Anacardiaceae)

Manihot esculenta Crantz (Euphorbiaceae)

Manihot glaziovii Mull.Arg.(Euphorbiaceae)

Manilkara obovata Aubrev. (Sapotaceae)

Mansonia altissima (A. Chev) A. Chev (Sterculiaceae)

Marantochloa leucantha (K.Schum.)Milne-Redh (Marantaceae)

Mareya micrantha (Benth.) Muell. Arg. (Euphorbiaceae)

Margaritaria discoidea (Baill.) Webster (Euphorbiaceae)

Memecylon memecyloides L. (Melastomataceae)

Mezoneuron benthamianum Baill. (Caesalpiniaceae)

Microdesmis keayana Léonard (Pandaceae)

Milicia excelsa (Welw.) C. C Berg (Moraceae)

Millettia lane-poolei Dunn (Fabaceae)

Millettia zechiana Harms (Fabaceae)

Momordica charantia L. (Curcubitaceae)

Momordica cissoides Benth. (Curcubitaceae)

Momordica grandifolia L. (Curcubitaceae)

Monodora tenuifolia Benth. (Annonaceae)

Morinda longiflora G.Don (Rubiaceae)

Morinda lucida Benth. (Rubiaceae)

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Taxons

Morinda morindoides (Bak.)Milne-Redh. (Rubiaceae)

Morus mesozygia Stapf ( Moraceae)

Motandra guineensis (Thonn.) A.DC. (Apocynaceae)

Mucuna cordata Adans (Fabaceae)

Mucuna pruriens (L.) DC. (Fabaceae)

Musa paradisiaca L. (Musaceae)

Mussaenda erythrophylla Schunach. & Thonn. (Rubiaceae)

Myrianthus arboreus P. Beauv. (Moraceae)

Napoleonaea vogelii (Hook. f.) Planch. (Lecythidaceae)

Nephrolepis biserrata (Sw.) Schott (Davalliaceae)

Nesogordonia papaverifera (A. Chev.) R Capuron (Sterculiaceae)

Neuropeltis acuminata (P.Beauv.) Benth. (Convolvulaceae)

Neuropeltis prevosteoides Mangenot (Convolvulaceae)

Newbouldia laevis (P. Beauv.) Seem. (Bignoniaceae)

Octhocosmus africanus Hook.f. (Ixonanthaceae)

Olax gambecola Baill. (Olacaceae)

Olyra latifolia L. (Poaceae)

Oncinotis pontyi Dubard (Apocynaceae)

Ongokea gore (Hua) Pierre (Olacaceae)

Oplismenus burmannii (Retz.) P. Beauv. (Poaceae)

Oplismenus hirtellus (L.) P. Beauv. (Poaceae)

Oricia suavuolens (Engl.) Verdoorn (Rutaceae)

Oryza sativa L. (Poaceae)

Oxyanthus pallidus Hiern (Rubiaceae)

Oxyanthus subpunctatus (Hiern) Keay (Rubiaceae)

Oxyanthus unilocularis Hiern (Rubiaceae)

Panicum maximum Jacq. (Poaceae)

Parinari excelsa Sabine (Chrysobalanaceae)

Paspalum conjugatum Berg. (Poaceae)

Paspalum laeve Michx (Poaceae)

Passiflora foetida L. (Passifloraceae)

Paullinia pinnata L. (Sapindaceae)

Pavetta corymbosa (DC.)F.N.Williams (Rubiaceae)

Penianthus zenkeri Hutch & Dalziel (Menispermaceae)

Pergularia daemia (Forssk.) Chiov. (Asclepiadaceae)

Persea americana Mill. (Lauraceae)

Periploca nigrescens Afzel. (Apocynaceae)

Phyllanthus amarus Schum. & Thonn. (Euphorbiaceae)

Phyllanthus muellerianus (O. Ktze.) Exell (Euphorbiaceae)

Phyllanthus niruroides Muell. Arg. (Euphorbiaceae)

Physalis micrantha Link. (Solanaceae)

Piptadenistrum africanum (Hook. f.) Brenan (Mimosaceae)

Polyalthia oliveri Engl. (Annonaceae)

Pouteria altissima (A. Chev.) Baehni (Sapotaceae)

Pouzolzia guineensis Benth (Urticaceae)

Pseudospondias microcarpa (A.Rich.) Engl (Anacardiaceae)

Psidium guajava L. (Myrtaceae)

Psychotria psychotrioides (DC.) Rogerty (Rubiaceae)

Psydrax subcordata (DC.) Bridson (Rubiaceae)

Pterygota macrocarpa Schumann (Sterculiaceae)

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Taxons

Pycnanthus angolensis Warb. (Myristicaceae)

Pyrenacantha cordicula Villiers (Icacinaceae)

Rauvolfia vomitoria Afzel. (Apocynaceae)

Rhigiocarya racemifera Miers (Menispermaceae)

Ricinodendron heudelotii (Baill.) Pierre ex Heckel (Euphorbiaceae)

Rinorea ilicifolia (Oliv.) O. Kuntze. (Violaceae)

Rinorea oblongifolia (C. H. Wright) Chipp (Violaceae)

Rinorea subintegrifolia (P. Beauv.) O. Kuntze. (Violaceae)

Ritchiea capparoides (Andr.) Britten (Capparidaceae)

Rothmannia longiflora Salisb. (Rubiaceae)

Rottboellia cochinchinensis (Lour.) W.D. Clayton (Poaceae)

Rourea coccinea (Schum.) Benth. (Connaraceae)

Ruthalicia longipes (Hook. F.) Jeffrey (Curcubitaceae)

Rytigynia canthioides (Benth.) Robyns (Rubiaceae)

Salacia baumannii Loes (Hippocrateaceae)

Salacia erecta (G.Don) Walp. (Hippocrateaceae)

Salacia nitida (Benth.) N.E.Br. (Hippocrateaceae)

Samanea dinklagei (DC.) Merr. (Mimosaceae)

Sansevieria liberica Ger. & Labr (Agavaceae)

Sarcophrynium brachystachyum (Benth.) K. Schum. (Marantaceae)

Scottellia klaineana Pierre (Flacourtiaceae)

Secamone afzelii (Schultes) K. Schum. (Asclepiadaceae)

Setaria barbata (Lam.) Kunth (Poaceae)

Sida acuta Brurm. f. (Malvaceae)

Smeathmannia pubescens Soland. Ex R. Br. (Passifloraceae)

Solanum americanum Mill. (Solanaceae)

Solanum anomalum Thonn. (Solanaceae)

Solanum erianthum D. Don (Solanaceae)

Solanum rugosum Dunal (Solanaceae)

Solanum torvum Sw. (Solanaceae)

Sorghum arundinaceum (Desv.) Stapf (Poaceae)

Spathodea campanulata P. Beauv. (Bignoniaceae)

Sphenocentrum jollyanum Pierre (Menispermaceae)

Spigelia anthelmia L. (Loganiaceae)

Spondianthus preussii subsp. preussii Engl. (Euphorbiaceae)

Spondias mombin L. (Anacardiaceae)

Sporobolus pyramidalis P. Beauv. (Poaceae)

Sterculia rhinopetala K. Schum. (Sterculiaceae)

Sterculia tragacantha Lindl. (Sterculiaceae)

Streblus usambarensis (Engl.) Berg (Moraceae)

Streptogyna crinita P.Beauv. (Poaceae)

Strombosia pustulata Olv. var. lucida (Léonard) Villers (Olacaceae)

Strophanthus gratus (Hook.) Franch. (Apocynaceae)

Strophanthus hispidus DC. (Apocynaceae)

Strychnos afzelii Gilg (Loganiaceae)

Strychnos johnsonii Huntch. & M. B. Moss (Loganiaceae)

Synedrella nodiflora Gaertn. (Asteraceae)

Tabernaemontana crassa Benth. (Apocynaceae)

Talinum triangulare (Jacq.) Willd. (Portulacaceae)

Tamarindus indica L. (Caesalpiniaceae)

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Taxons

Teclea verdoorniana Exell & Mendoçon (Rutaceae)

Tectona grandis L. F. (Verbenaceae)

Terminalia ivorensis A. Chev. (Combretaceae)

Terminalia superba Engl. & Diels (Combretacae)

Tetracera alnifolia Willd. (Dilleniaceae)

Tetrapleura tetraptera (Schum. & Thonn.) Taub (Mimosaceae)

Thalia welwitschii (L.) Ridl. (Marantaceae)

Thaumatococcus danielii (Bennet) Benth. (Marantaceae)

Theobroma cacao L. (Sterculiaceae)

Thonningia sanguinea Vahl (Balanophoraceae)

Tiliacora dinklagei Engl. (Menispermaceae)

Tragia chevalleri Beille (Euphorbiaceae)

Treculia africana Decne (Moraceae)

Trema orientalis (L.) Blume (Ulmaceae)

Trichilia heudelotii Planch. ex. Oliv. (Meliaceae)

Trichilia martineaui Aubrév. & Pellegr. (Meliaceae)

Trichilia prieureana A. Juss. (Meliaceae)

Triclisia dictyophylla Diels (Menispermaceae)

Triclisia subcordata Oliv. (Menispermaceae)

Tridax procumbens L. (Asteraceae)

Trilepisium madagascariensis DC. (Moraceae)

Triplochiton scleroxsylon K. Schum. (Sterculiaceae)

Turraea heterophylla J. Sm. (Meliaceae)

Urera occidentalis Letouzey (Urticaceae)

Uvaria afzelii Sc.Elliot (Annonaceae)

Uvariodendron mirabile Engl. & Diels (Annonaceae)

Uvariopsis guineensis Keay (Annonaceae)

Ventilago africana Exell (Rhamnaceae)

Vitex fosteri C. H. Wright (Verbenaceae)

Vitex grandifolia Gurke (Verbenaceae)

Vitex rivularis Gurke (Verbenaceae)

Wissadula amplissima (L.) R. E. Fries (Malvaceae)

Xylopia aethiopica (Dun.) A. Rich. (Annonaceae)

Xylopia parvifolia (A. Rich.) Benth. (Annonaceae)

Xylopia villosa Chipp (Annonaceae)

Zanthoxylum gilletii (De Wild.) P.G. Waterman (Rutaceae)

Zanthoxylum parvifolium A. Chev. ex Keay (Rutaceae)

Zanthoxylum rubescens Hook.f. (Rutaceae)

Zanthoxylum zantoxyloides (Lam.) Zepernick & Timber (Rutaceae)

Zea mays L. (Poaceae)

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