A - Calculer le rendement des extraits de chaque
échantillon de miel
Pour calculer le rendement des extraits des échantillons
de miel, nous avons utilisé les équations suivantes
(Hamoudi., 2008)
. Avant séchage :
P0 E1 : Le poids initial de l'extrait de E1 : 90,632g P0E2 :
Le poids initial de l'extrait de E2 : 61 ,852g P0E3 : Le poids initial de
l'extrait de E3 : 65,472g
v' Calculer le rendement des extraits hydroalcoolique
. Après séchage :
Pm E1 : Le poids mesuré de l'extrait de E1 68 ,51g
Pm E2 : Le poids mesuré de l'extrait de E2 :53,310g 10 Pm E3
: Le poids mesuré de l'extrait de E3 :50,80g Rn : Le rendement de
l'extrait hydroalcoolique En
ü Calculer le rendement des extraits
chloroformiques Pm' E1 : Le poids mesuré de l'extrait de E1 :
72 ,632g Pm' E2 : Le poids mesuré de l'extrait de E2 :55,852g Pm' E3 :
Le poids mesuré de l'extrait de E3 :52,172g R'n : Le
rendement de l'extrait chloroformique En
ü Calculer le rendement des extraits de
l'acétate d'éthyle Pm» E1 : Le poids mesuré
de l'extrait de E1 : 78 ,632g
Pm» E2 : Le poids mesuré de l'extrait de E2
:58,352g Pm» E3 : Le poids mesuré de l'extrait de E3 :61,252g
R»n : Le rendement de l'extrait chloroformique En
1' Calculer le rendement des extraits de la phase
aqueuse
Pm''' E1 : Le poids mesuré de l'extrait de E1 : 87,332g
Pm''' E2 : Le poids mesuré de l'extrait de E2 :61,182g
Pm''' E3 : Le poids mesuré de l'extrait de E3 :64,732g R'''n
: Le rendement de l'extrait chloroformique En
L'ensemble de ces calculs est résumé dans le
tableau 3
Tableau 3 : Les extraits obtenus
Extraits
|
Coloration
|
Aspect
|
Rendement
|
Hydroalcoolique
|
E1
|
Jaune foncée
|
Visqueux
|
22%
|
E2
|
Jaune claire
|
Visqueux
|
8%
|
E3
|
Jaune claire
|
Visqueux
|
14%
|
Chloroformique
|
E1
|
Jaune foncée
|
Liquide
|
18%
|
E2
|
Jaune claire
|
Liquide
|
6%
|
E3
|
Jaune claire
|
Liquide
|
13.3%
|
Extrait d'AE
|
E1
|
Transparent
|
Liquide
|
12%
|
E2
|
Transparent
|
Liquide
|
3.5%
|
E3
|
Transparent
|
Liquide
|
4.22%
|
Phase aqueuse
|
E1
|
Transparent
|
Liquide
|
3.3%
|
E2
|
Transparent
|
Liquide
|
0.67%
|
E3
|
Transparent
|
Liquide
|
0.74%
|
B - Activité antibactérienne des
extraits
La détermination de la zone d'inhibition permet une
estimation de degré de la
sensibilité de la souche bactérienne contre les
extraits testés. Si aucune colonie n'est observée dans la zone
d'inhibition, l'effet de l'extrait utilisé est considéré
comme bactéricide. L'apparition tardive d'un tapis
léger de nouvelles colonies indique que de cette extrait est
considéré comme bactériostatique.
Les résultats des tests d'activité
antibactérienne des différents extraits sont illustrés
dans les tableaux (4 - 12) et les photos (1 -
3).
Tableau 5 : Résultats de
l'activité antibactérienne de l'extrait chloroformique pour
l'échantillon E1
Les dilutions
|
Le diamètre de disque observé (cm)
|
A
|
0,8
|
0,9
|
B
|
0,8
|
0,8
|
C
|
0,8
|
0,8
|
D
|
1
|
1
|
Tableau 6 : Résultats de
l'activité antibactérienne de l'extrait hydroalcoolique des
trois échantillons étudiés avec la bactérie
Les dilutions (%)
|
Le diamètre de disque observé (cm)
|
A
|
1
|
1
|
B
|
0,6
|
0,6
|
C
|
0,6
|
0,6
|
D
|
1
|
1
|
Tableau 7 : Résultats de
l'activité antibactérienne des extraits chloroformiques des
trois échantillons testés sur la bactérie
Les dilutions (%)
|
p
Le diamètre de disque observé
(cm)
|
E1
|
E2
|
E3
|
D
|
1
|
0,7
|
1
|
C
|
1
|
0,75
|
0 ,8
|
B
|
0,7
|
1
|
0,7
|
A
|
0,6
|
1
|
1
|
Tableau 8 : Résultats de
l'activité antibactérienne de l'extrait de phase aqueuse de E1
et d'acétate d'éthyle de E 3 : étudiés avec la
Les dilutions (%)
|
Le diamètre de disque observé
(cm)
|
E1
|
E2
|
E3
|
D
|
0,9
|
0,6
|
0,9
|
C
|
0,85
|
1
|
0,7
|
B
|
0,7
|
|
0,75
|
A
|
0,9
|
|
|
Tableau 9 : Résultats de
l'activité antibactérienne des extraits chloroformiques des
échantillons E1 et E2 : étudiés avec la
Les dilutions (%)
|
Le diamètre de disque observé
(cm)
|
Phase aqueuse E1
|
Acétate d'éthyle E3
|
D
|
|
0,7
|
C
|
0,7
|
1
|
B
|
0,8
|
0,6
|
A
|
|
1,1
|
Tableau 10 : Résultats de
l'activité antibactérienne des extraits hydroalcooliques des
trois échantillons étudiés
avec la bactérie 7?coli
Les dilutions (%)
|
Le diamètre de disque observé
(cm)
|
E1
|
E2
|
D
|
0,6
|
1
|
C
|
0,7
|
0,75
|
B
|
0,65
|
1,1
|
A
|
|
1,1
|
Tableau 11 : Résultats de
l'activité antibactérienne de l'extrait de phase aqueuse de E1
et d'acétate d'éthyle de E3 :
Le diamètre de disque observé
(cm)
Les dilutions (%)
|
s ec bari E
|
E1
|
E2
|
E3
|
D
|
0,7
|
0,7
|
1
|
C
|
0,9
|
0,6
|
0,7
|
B
|
|
0,6
|
0,6
|
A
|
|
0 ,7
|
0,55
|
Tableau 12 : Résultats de
l'activité antibactérienne de l'extrait chloroformique des
échantillons étudiés avec les 2 bactéries
Les dilutions (%)
|
Le diamètre de disque observé
(cm)
|
Phase aqueuse E1
|
Acétate d'éthyle E2
|
D
|
0,6
|
0,7
|
C
|
|
0,6
|
B
|
|
|
A
|
0,8
|
0,9
|
Les souches étudiées
|
Le diamètre de disque observé
(cm)
|
E1
|
E2
|
E3
|
Staphylococcus aureus
|
1,1
|
1,1
|
1,2
|
E.coli
|
1,2
|
1
|
0,9
|
2
1
E2
3
1
E3
E2
E1
B
C
A
D
Photo N° 1 : Antibiogramme des trois
types de miel étudié avec 1 = E.coli et 2 =
Staphylococcus aureus
C
B
tn D
A
Photo N° 2 : Antibiogramme des 4 dilutions
de l'extrait hydroalcoolique
Photo N° 3 : Antibiogramme des 4
dilutions de l'extrait hydroalcoolique de miel de Batna avec
E.coli
C
B
D
A
C
B
D
A
1 2
Photo N° 4 : Antibiogramme des 4
dilutions de l'extrait de la phase aqueuse de miel de Batna. 1 =
Staphylococcus aureus ; 2 = E.coli
2.2- Discussion
2.2.1- La pureté du miel
La pureté des échantillons de miel
étudiés est confirmée par leur précipitation au
fond des bichers et par le test de flamme à essai, l'inflammation
incontinue est un point commun entre tous les échantillons (Site
1).
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