DEUXIEME CHAPITRE : MATERIEL ET METHODES
2.1. Matériel
Le matériel biologique de cette étude est
constitué de 43 spécimens de Casinycteris argynnis que nous avons
capturés dans la localité de KISESA (P.K 25 route UBUNDU).
2.2. Méthodes
2.2.1. Capture
La seule technique de capture était l'utilisation des
filets japonais. A chaque endroit de piégeage, les hautes herbes sont
dégagées à l'aide d'une machette : ceci permet
l'installation du filet. Ce dernier est fixé sur deux perches
piquées solidement au sol et tendu dans différents biotopes,
à des endroits stratégiques (couloirs) ou à
côtés des arbres fruitiers auxquels nous avons aussi
installé à coté des vielles maisons
abandonnée ; ou nous avions soupçonnée les visites ou
les déplacements des chiroptères.
Les filets de mailles deux fois deux un et des longueurs
différentes, étaient installés le soir et relevés
une fois par jour, toujours le matin à partir de 6 heures 00' pour le
filet qui se trouvait au niveau de jachère.
L'individu capturé, était soigneusement
enlevée du filet du coté où l'animal était entre de
manière à éviter la déchirure du filet.
2.2.2. Mensurations ou laboratoire et conservation
Les Chiroptères capturés, étaient
amenés au laboratoire dans des petits sachets, ensuite où ils
faisaient l'objet de différentes mesures biométrique prises
à l'aide des matériels suivants :
Ø La balance PESOLA au gramme près pour le poids
corporel ;
Ø Le pied à coulisse de marque MITUTOYO à
0,05 mm près pour les longueurs de l'avant bras, de l'oreille et de
pied ;
Ø Le mètre ruban pour l'envergure.
Une fois toutes les mesures prises, nous effectuons le
prélèvement de divers organes (foie, coeur, poumon,
musèles) qui étaient mis dans les tube d'Ependorff contenant de
l'alcool à 70 % ceci pour permettre l'étude ultérieure sur
l'ADN moléculaire.
Identification de l'espèce
étudiée
L'identification de notre spécimen s'est basée
sur celle de HAYMAN et all. (1966 et 1972), THOMAS, (1910) et de SCHOUTEDEN H.,
(1948). Cette espèce est décrite comme suit :
· Tête ronde présentant un museau court
· Tache blanche au dessus des paupières entre les
yeux et au niveau des joues
· Palais court et non prolongé au delà des
molaire c'est-à-dire pas de palais post dentaire.
2.2.3. Mensurations externes
Les mensurations externes que nous avons
considérées dans ce travail sont la longueur de l'avant bras
(LAB), la longueur de l'oreille (LO), la longueur du pied (LP), l'envergure de
l'aile (ENV) et le poids corporel (Pds). Ces mesures ont été
utilisées dans la classification des chiroptères par HAYMAN et Al
(Op cit).
Préparation des crânes
Pour préparer nos crânes, nous nous sommes
inspirés de la méthode utilisée par NGONGO (1978) que nous
avons complétés par d'autres étapes. Les
différentes étapes successives de cette préparation se
présentent de la manière suivante :
a) Déformolisation des crânes
Les spécimens fixés préalablement dans le
formol à 4 % sont placés sous un courant continu de robinet afin
d'obtenir le ramollissement de la chair et des parties osseuse.
La durée d'immersion ne dépasse pas trois jours
sans peine de voir les os se fragment.
b) Prélèvement du crâne
Après son ramollissement, la peau est soigneusement
enlevée du crâne. Une incision de la peau, au niveau des joues
jusqu'au cou à l'aide d'une lame bistouri, permet de détacher du
crâne. Le crâne ainsi ôté est séparé du
reste du corps en coupant au niveau de l'atlas et de l'axis.
c) Ramollissement de la chair dans l'eau et
étiquetage
La chair des crânes ainsi prélevée a
été putréfiée dans les boîtes de tomate
contenant l'eau de robinet. L'immersion a durée jusqu'à 45 jours
parce que le matériel était longtemps conserve dans le formol et
nous renouvelions l'eau chaque deux jours. Ce qui ne permettait pas le
développement des micro-organismes pour une bonne décomposition.
Enfin, nous y ajoutons dans chaque boite l'étiquette
partant un numéro d'enregistrement de spécimen qui est repris
dans notre cahier de terrain ou sont mentionnés les noms
spécifiques et les sexes.
d) Premier nettoyage et rinçage
Cette phase constitue la tâche la plus difficile et qui
demande beaucoup d'attention. Elle consiste à débarrasser les
lambeaux de chair et les yeux sans endommager les os.
A cet effet, nous avons utilisé une pince et une lame
bistouri.
L'usage d'une aiguille et seringue s'avère
indispensable pour évacuer la cervelle à travers le trou
occipital en secouant le crâne. Le nettoyage et le rinçage se font
simultanément.
e) Séchage et deuxième
nettoyage
Le crâne est séché au soleil deux jours
durant un retournant de manière que les rayons solaire
pénètrent bien le crâne dans la partie basale, en haut,
frontale en bas et vice versa.
Après ce séchage, il arrive qu'on retrouve sur
le crâne des restes des fibres et des ligaments durs qui ont
résisté au nettoyage à l'eau. Il convient donc de les
débarrasser du crâne à l'aide de bistouri.
f) Blanchissage des crânes
Pour que les crânes ne gardent pas une coloration sombre
à cause de la graisse, on les plonge durant 24 heures dons une solution
d'eau oxygénée à 30 % de concentration. Ce liquide oxydant
et corrosif à la propriété de détacher les petits
lambeaux de chair restant et de blanchir les os. Mais cette opération
n'a pas été faite par manque de ce liquide (eau
oxygénée).
g) Conservation
Les crânes préparés, sont gardés
dans des flacons en plastique transparent où sont placés quelques
fragments de naphtalène. Chaque crâne porte l'étiquette qui
reprend le numéro d'enregistrement sur terrain.
Mensuration
Les mesures étaient prises sur les crânes des
spécimens adultes et jeunes adultes. Sur chaque crâne, 17 mesures
ont été effectuées à l'aide du pied à
coulisse de marque MITUTOYO à 0,01 mm près que nous associons les
mesures morphométriques, de l'avant-bras, de l'oreille, de pied,
l'envergure et le poids.
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